628
Copyright © 2016 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815
서 론
넙치
(Paralichthys olivaceus)
는한국,
일본및중국을포함하 는동북아지방및중남미에서양식대상종으로각광받고있으 며,
우리나라는2004
년부터국립수산과학원육종연구센터에 서선발육종기법을통하여생산한‘
킹넙치(KingNupchi)’
를어 민에게보급하고있다(NFRDI, 2013).
넙치는성장이빠르고맛이좋은장점을가지고있으나비브 리오병
,
에드워드병등세균성질병과함께특히,
스쿠티카섬모 충(Philasterides dicentrarchi)
감염에매우취약하고(Jin et al.,
2003),
동절기에 성장이느려지며저염분도의해수에서 종묘생산및사육이어려운문제점을지니고있다
(Do et al., 2014).
강도다리
(Platichthys stellatus)
는가자미목(Pleuronectiformes),
가자미과(Pleuronectidae)
에속하는저서성어류로,
한국을비롯한일본
,
오호츠크해,
베링해에서캘리포니아만에이르는북 태평양의전해역에광범위하게분포한다(Lim et al., 2007).
이 들은성장이넙치에비해느린단점을지니고있으나,
냉수성어 종으로강한내병성및광염성등의특징을가지고있어우리나라에서 양식생산량이점차증가되고있다
(Kim, 2012; Do
et al., 2014).
어류에서잡종유도는우량형질을가진두종간교배를통해 단기간내최소한의노력으로산업성획득형질인잡종강세를 얻기위해시도된다
(Kim et al., 1995).
이에따라국립수산과학 원에서는환경변화에강하고성장이빠른품종을개발하기위해넙치와강도다리두종간의잡종을유도하여특허
(Korean
intellectual property office, 2006))
를출원한바있으나,
이들잡종은부화율이대조군에비해
20.0%
정도로보고된바있다(Do et al. 2014).
그러나이러한잡종의낮은생존율은잡종3
배넙치(Paralichthys olivaceus)와 강도다리(Platichthys stellatus)간 유도된 잡종 3배체의 난발생
정효선·고민균·이효빈·김동수
1*
부경대학교 수산생물학과, 1부경대학교 해양바이오신소재학과
Development of Allotriploid Embryos from
Female Olive Flounder Paralichthys olivaceus Crossed with Male Starry Flounder Platichthys stellatus
Hyo Sun Jung, Min Gyun Ko, Hyo Bin Lee and Dong Soo Kim
1
*Department of Fisheries Biology, Pukyong National University, Busan 48513, Korea
1
Department of Marine Bio-Materials & Aquaculture, Pukyong National University, Busan 48513, Korea
We investigated the characteristics and rate of development of allotriploid embryos derived from a cross between female olive flounder Paralichthys olivaceus and male starry flounder Platichthys stellatus . The allotriploidy was induced by cold shocking fertilized eggs three minutes post-fertilization at 3°C for 45 minutes. The average cellular DNA content of the allotriploid embryos was 2.06±0.03 pg/cell, which is equal to the sum of the cellular DNA content of a diploid olive flounder (1.42 pg/cell) and a haploid starry flounder (0.66 pg/haploid cell). The first cleavage, mid- blastula, gastrula and Kupffer's vesicle appearance stages of the allotriploid eggs began at 1.5, 8, 13 and 26 hours after cold shocking at 18°C, respectively. The developmental rate of allotriploid eggs was equivalent to that of diploid and triploid olive flounder eggs at 10, 14 and 18°C. However, the hatching times of allotriploid eggs, 7 h at 10°C, 5 h at 14°C and 4 h at 18°C, were earlier than those of diploid and triploid olive flounder.
Key words: Embryonic development, Allotriploid, Olive flounder
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2016.0628 Korean J Fish Aquat Sci 49(5) 628-634, October 2016
Received 30 June 2016; Revised 19 October 2016; Accepted 25 October 2016
*Corresponding author: Tel: +82. 51. 629. 5914 Fax: +82. 51. 629. 5908
E-mail address: [email protected]
체의유도에의해회복되는경향을보이는것으로보고되고있 다
(Piferrer et al., 2009).
이에본연구에서는두종간잡종
3
배체의양식대상종으로써 가능성을알아보고자넙치암컷과강도다리수컷을이용하여 잡종3
배체를유도하였고이들의난발생을넙치의2
배체및3
배체와비교분석하였다.
재료 및 방법
실험어
본연구에대조군으로사용된넙치
2
배체와3
배체는국립수산 과학원육종연구센터에서선발육종기법을통하여생산된킹넙 치(KingNupchi)
의난과자성발생성2
배체킹넙치수컷의정자 를사용하였다.
잡종3
배체유도에사용된강도다리정자는거 제도의민간양식장과부산시남천동의수산시장에서구입한어 체중400-600 g
의강도다리를동센터에서1
년간사육한후이 중6
마리를선별하여이들의정자를사용하였다.
배수체 유도 및 분석
넙치의
3
배체및잡종3
배체유도에사용된난과정자는1
회 처리시암컷6
미로부터복부압박법으로확보된난중난질이우 수한4
미의난과자성발생성2
배체킹넙치수컷및강도다리수 컷3
미로부터채정한정자를모두섞어수정에사용하였으며, 3
반복으로실험을수행하였다.
제2
극체방출억제를위해Kim et al. (1994)
방법에의거하여수정3
분후3℃
의온도조건하에 서45
분간저온처리를하였다.
배수체 분석은유세포 분석기
(flow cytometry)
를 이용하여DNA
함량을측정하였다.
각 실험군의단일세포(single cell)
를확보하기위해부화자어3
미를균질기(homogenizer)
로조 직을파쇄한뒤nucleic extraction buffer (CyStain DNA 2 step;
Partec Co., Münster, Germany)
에서반응을수행하였고, DNA staining buffer (CyStain DNA 2 step; Partec Co., Münster, Germany)
로염색하였다.
염색된시료들은PA II flow cytom- etry (Partec Co., Münster, Germany)
를이용하여DNA
함량을 분석하였다.
유도된넙치3
배체및잡종3
배체의DNA
함량을 측정하기위해서넙치2
배체부화자어및성체강도다리의꼬리 지느러미를대조군으로사용하였다.
난발생 관찰
잡종
3
배체의난발생은18±1℃
의수온에서발생을유도하였고
,
해부현미경(AZ100; Nikon Co., Japan)
과이에부착된디 지털카메라(DS-Ril; Nikon Co., Tokyo, Japan)
를이용하여관 찰과촬영을하였다. Kimmel et al. (1995)
및Jung et al. (2015)
의난발생단계를기준으로관찰하였으며,
저온처리가끝난시 기를0
시(time 0)
로하여수정란의90%
이상이동일한단계에 도달하는시기를기준으로각발생단계별소요시간과특징을기록하였다
.
수온별넙치2
배체, 3
배체및잡종3
배체의수온별 난발생속도를조사하기위해각실험군의수정란들을10, 14
및18℃
의부화조에서발생을유도하였다.
결 과
배수체 분석
넙치
2
배체(0.71 pg/haploid cell; Animal genome size data-
base, 2016)
부화자어를대조군으로사용하여강도다리꼬리지느러미
,
넙치3
배체부화자어및넙치와강도다리잡종3
배체부 화자어의DNA
함량을분석한결과는Fig. 1
과같다.
강도다리 꼬리지느러미의DNA
함량은1.32±0.06 pg/cell,
넙치3
배체 부화자어는2.14±0.03 pg/cell
이었으며,
넙치와강도다리잡종3
배체부화자어는2.06±0.01 pg/cell
으로나타났다.
잡종 3배체 난발생 및 자어 발달
잡종
3
배체의난발생과정은Fig. 2
와같다.
수정란은구형이 며분리부성란으로난황과난막은무색투명하였다.
저온처리 후1.5
시간에첫 번째난할(cleavage)
이이루어져 배반(blas-
todisc)
의중앙부위가수직으로이등분되어2
세포기가되었고(Fig. 2b),
난할이계속되어2
시간후4
세포기(Fig. 2c), 2.5
시간 후8
세포기(Fig. 2d), 3.3
시간후16
세포기(Fig. 2e)
가되었다.
계속적인난할이일어나저온처리후8
시간에높고두꺼운형태 의배반엽(blastoderm)
을형성하는포배기중기(mid-blastula)
가되었다(Fig. 2f).
저온처리후12
시간에난황세포가돔형태 가되고배반엽이얇아지기시작하였고(Fig. 2g), 13
시간에배 환(germ ring)
이형성되었으며(Fig. 2h), 14
시간에배방패(em- bryonic shield)
가형성되었다(Fig. 2i).
배반엽이식물극방향으 로계속확장되어저온처리후18
시간에60%
피포(epiboly)
가 형성되었고(Fig. 2k), 22
시간에90%
피포가형성되었다(Fig.
2l). Kupffer’s vesicle
은저온처리후26
시간부터작은크기로 관찰되기시작하여30
시간에최대크기로발생하였고, 35-36
시간에소멸되었으며(Fig. 2m-2o), Kupffer’s vesicle
이소멸된 후꼬리가형성되기시작하여저온처리후53
시간에부화하기 시작하였다(Fig. 2p, 2q).
잡종
3
배체부화자어의형태적특징을관찰하기위해넙치3
배체부화자어와비교한결과,
잡종3
배체는넙치3
배체와동 일하게입과항문은열려있지않았고,
막지느러미(primordial
finfold)
의위쪽과아래쪽에색소포(chromatophores)
가관찰되 었다(Fig. 2q, 2t).
잡종3
배체자어의미부중앙부막지느러미 내색소포는점차발달하여부화1
일째색소포는그크기및수 가증가하였고(Fig. 2r),
부화2
일째막지느러미의색소포는더 넒은부위까지분화되어색소포띠를형성하는것으로관찰되 었다(Fig. 2s).
넙치3
배체자어역시발생이진행될수록미부중 앙부의막지느러미내색소포가발달하여색소포의분포가넓 어지면서색소포띠를형성하였으나(Fig. 2u, 2v),
이는잡종3
배체의색소포분포부위에비해좁은것으로관찰되었으며
,
그 크기및진하기역시작고엹
은것으로관찰되었다. 수온별 난발생
잡종
3
배체와넙치2
배체및3
배체의수온별난발생은Table 1
과같다.
잡종
3
배체의경우,
첫번째난할이이루어지는2
세포기까지10℃
는저온처리후4
시간, 14℃
는2
시간, 18℃
는1.5
시간이소 요되었고,
포배기중기까지10℃
는저온처리후15
시간, 14℃
는
10
시간, 18℃
는8
시간이소요되었다.
배반엽이난황을감싸 는낭배기의경우10℃
는저온처리후34
시간, 14℃
는17
시간, 18℃
는13
시간에시작되었으며, Kupffer’s vesicle
의형성및소 멸은10℃
는저온처리후69
시간및98
시간, 14℃
는35
시간및53
시간, 18℃
는26
시간및36
시간에관찰되었다.
넙치3
배체와2
배체또한3
가지의각온도조건에서잡종3
배체와동일한시 기에난할,
포배기,
낭배기, Kupffer’s vesicle
형성및소멸의발 생이관찰되었다.
잡종
3
배체의최초부화는10℃
는저온처리후114
시간, 14℃
는
75
시간, 18℃
는53
시간에시작되었다.
그러나넙치2
배체와3
배체는잡종3
배체보다각온도조건에따라최소2
시간에서최대
7
시간늦게부화하기시작하여, 10℃
는121
시간, 14℃
는80
시간, 18℃
는55
시간에최초의부화가관찰되었다.
고 찰
생물은고유한
DNA
양을가지고있어이를측정함으로써단시간에종고유의특성을분석하는데유용하게사용될수있다
(Byrappa, 2003).
일반적으로3
배체는모계2n DNA
함량과부 계n DNA
함량을가지게된다(He et al., 2013).
본연구에서도 잡종3
배체는넙치2n DNA
함량과강도다리n DNA
함량을가 지고있는것으로확인되었으며,
넙치3
배체는넙치n DNA
함량의약
3
배의DNA
함량을가지고있는것으로확인되었다.
저온처리후잡종
3
배체수정란을18±1℃
수온에서난발생을유도관찰한결과
, 1.5
시간후에난할기(cleavage period)
가 시작되어8
시간후에중기포배기(mid-blastula period), 13
시간 후에낭배기(gastrula period), 26
시간후에Kupffer’s vesicle
이 형성되는것으로관찰되었다(Fig 2a-2p).
이들난할기에서분할 기에이르는잡종3
배체의난발생은넙치3
배체와유사한형태 로발생이진행되었으며,
그발생시간또한동일한것으로확인되었다
(Table 1).
강도다리와넙치잡종은부화시기를제외한난발생시기가모계로사용된넙치와동일하게나타나는것 으로보고된바있어
(Do et al., 2014),
모계로사용된넙치형질 의영향으로넙치3
배체와잡종3
배체가동일한시기에발생하 는것으로보여진다.
잡종
3
배체난발생과정중초기난할기에이형적으로할구(blastomere)
가형성되어3
세포기가관찰되었다.
그러나이는You et al. (2001)
와Zhu et al. (2006)
가넙치3
배체의초기난할 기에3
세포기또는5
세포기의이형적할구가형성되는개체가 있음을보고한바있어,
본연구에서관찰된이형적인난할현상 은잡종유도에의한결과가아닌3
배체유도과정에서확인될 수있는기형적발생인것으로판단된다.
잡종
3
배체는넙치3
배체와유사한형태및속도로난발생이 진행되었으나,
부화시간및부화자어의형태에서차이가나는 Fig. 1. Flow cytometric histograms of DNA contents of diploid (a)and triploid(c) of olive flounder Paralichthys olivaceus and hybrid (b) and allotriploid (d) of female olive flounder and male starry flounder Platichthys stellatus.
것으로확인되었다
(Table 1, Fig. 2).
넙치3
배체는18±1℃
수 온에서55
시간째에최초부화가시작되었으나,
잡종3
배체는53
시간째에최초의부화가관찰되어잡종3
배체의부화가2
시간이빠른것으로확인되었다
(Table 1).
이는동일수온조건에 Fig. 2. External morphology of the egg development stages (a-p) of the allotriploid of female olive flounder Paralichthys olivaceus and male starry flounder Platichthys stellatus, and yolk-sac larvae of the allotriploid (q-s) and triploid olive flounder (t-v). a: Blastodisc formed. b: 2 cell stage, 1.5 h. c: 4 cell stage, 2.0 h. d: 8 cell stage, 2.5 h. e: 16 cell stage, 3.3 h. f: midblastrula stage, 8 h. g: 30% epliboly stage, 12 h. h:germ ring stage, 13 h. i: embryonic shield stage, 14 h. j: 40-45% epiboly stage, 16 h. k: 60% epiboly stage, 18 h. l: 90-95% epiboly stage, 22 h. m: Kupffer's vesicle appearance, 26 h. n: Kupffer's vesicle stage, 30 h. o: Kupffer's vesicle disappearance, 35-36 h. p: pre-hatching, 53 h.
q: hatched larva of allotriploid. r: yolk-sac larva of allotriploid, 1 day after hatching. s: yolk-sac larva of allotriploid, 2 days after hatching.
t: hatched larva of triploid. u: yolk-sac larva of triploid, 1 day after hatching. v: yolk-sac larva of triploid, 2 days after hatching. Arrows:
chromatophores. All scale bars indicate 200 μm.
서강도다리가넙치보다부화시기가빠른것으로보고된바있 어
(Do et al., 2014),
잡종3
배체는강도다리형질의영향으로넙 치3
배체보다이른시간에부화한것으로판단된다.
잡종
3
배체와넙치3
배체부화자어는막지느러미내색소포 의위치및분포범위에서뚜렷한차이가나는것으로관찰되었 다.
잡종3
배체와넙치3
배체부화자어모두미부중앙부막지 느러미위쪽과아래쪽에색소포띠가관찰되었으나,
잡종3
배 체가넙치3
배체에비하여분포범위가넓고진한것으로확인 되었다(Fig. 2q-2v). Byun et al. (2007)
은강도다리자어의색 소포가별모양및나뭇가지모양으로생성되어점차몸의전면 에발달한다고보고한바있다.
이에잡종3
배체와넙치3
배체 의색소포분포차이는부계로사용된강도다리의영향에기인 한것으로보여진다.
어류의발생에서수온은성장및생존에영향을미치는중요 한요인중하나로각어종은생태적인특징에따라적정수온을 가지게되며
,
적정수온범위내에서수온이높아질수록발생속도는빨라지게된다
(Rana, 1990).
강도다리는냉수성어종으로적정수온은
13-18℃
이고(NFRDI, 2009),
넙치는온수성어종 으로적정수온은10-24℃
인(NFRDI, 2006)
것으로보고되고 있다.
이에잡종3
배체의적정수온범위및수온별난발생속도 를확인하고자대조군으로넙치2
배체와3
배체를사용하여10, 14
및18℃
에서발생을비교하였다.
그결과3
가지수온모두 에서잡종3
배체는정상적으로발생하는것으로확인되었고, 18℃
발생결과와동일하게잡종3
배체는10℃
와14℃
에서도 난할기,
포배기,
낭배기및분할기에이르는난발생단계에서넙 치2
배체및3
배체와동일한속도로발생하는것으로관찰되었 다.
그러나You et al. (2001)
은넙치2
배체의발생이난할기에3
배체보다조금빠른것으로확인되나,
발생이진행될수록동일 한속도로발생되며동일한시기에부화한다고보고한바있다.
이는
3
배체의발생을저온처리전수정시기부터관찰하여초 기난할기에3
배체가2
배체보다발생이느리게관찰된것으로 서저온처리직후를발생시작시점으로관찰한본연구와는발 생관찰시작시점차이에의해동일한관찰결과를다르게분석 한것으로판단된다.
그러나무지개송어3
배체를비롯한어류 에서유도된3
배체난은일반적으로2
배체에비하여발생이빠 르게진행되어부화시간이단축되는것으로이미보고된바있 다(Thorgaard, 1986).
잡종
3
배체의부화는18℃
발생에서관찰된것과동일하게10℃
및14℃
에서도넙치3
배체보다5
시간및2
시간빨리부 화하는것으로관찰되어,
수온이낮을수록그부화시간의차이 가커지는것으로확인되었다(Table 1).
강도다리는10.5℃
에 서수정후110
시간에최초의부화되는것으로보고된바있고(Orcutt, 1950),
본연구결과에서10℃
에서넙치2
배체가수정121
시간후에부화되는것으로확인됨으로써,
잡종3
배체는친 어로사용된강도다리와넙치의중간형질을띄게되어10℃
에 서114
시간에부화한것으로판단된다.
일반적으로잡종의형질은대부분친어로사용된두종의중 간형질을나타내는것으로보고되고있다
(Garrett, 2005). Ya- mashita et al. (2014)
는강도다리와 돌가자미(Kareius bicol-
oratus)
의잡종유도시두종의중간형질을나타내는것으로확인한바있으며
, Do et al.(2014)
는넙치와강도다리잡종또한 친어로사용된두종의중간형질을나타낸다고보고한바있다.
반면에잡종3
배체는친어로사용된두종의중간형질을나타 내지만모계의형질이더많이나타나는것으로보고되고있다. Hu et al. (2012)
는M. amblycephala
와Xenocypris davidi
의 잡종3
배체를유도한결과두종의중간형질을가지지만모계 의특징에가까운것으로보고한바있고, Park (1992)
는미꾸리(Misgurnus anguillicaudatus)
와미꾸라지(M. mizolepis)
잡종 Table 1. Embryonic development of diploid olive flounder Paralichthys olivaceus, triploid olive flounder and allotriploid of female starry flounder Platichthys stellatus and male starry flounder at different water temperaturesExperimental Fish
Water temperature
(℃)
Development stages
Cleavage blastula Gastrula Segmentation
hatching 2 cell 8 cell 32 cell Mid-blastula Germring 80-90%
epiboly Kupffer's vesicle
apearance Kupffer's vesicle disapearance Diploid
10 4 h 6 h 9 h 15 h 34 h 52 h 69 h 98 h 121 h
14 2 h 4 h 6 h 10 h 17 h 27 h 35 h 53 h 80 h
18 1.5 h 2.5 h 4 h 8 h 13 h 21 h 26 h 36 h 55 h
Triploid
10 4 h 6 h 9 h 15 h 34 h 52 h 69 h 98 h 121 h
14 2 h 4 h 6 h 10 h 17 h 27 h 35 h 53 h 80 h
18 1.5 h 2.5 h 4 h 8 h 13 h 21 h 26 h 36 h 55 h
Allotriploid
10 4 h 6 h 9 h 15 h 34 h 52 h 69 h 98 h 114 h
14 2 h 4 h 6 h 10 h 17 h 27 h 35 h 53 h 75 h
18 1.5 h 2.5 h 4 h 8 h 13 h 21 h 26 h 36 h 53 h
3
배체는모계로사용된미꾸리에가까운중간형질을가지는것 으로보고한바있다.
본연구의넙치와강도다리잡종3
배체는 수정란은모계로사용된넙치의형태를가지지만,
부화자어는 부계로사용된강도다리에가까운중간형질을나타내는것으로 확인되었다.
또한난발생속도의경우넙치와동일한난발생속 도를가지는것으로나타났으나,
최초부화시간은강도다리와 넙치의중간형질을나타내는것으로확인되었다.
이에잡종3
배체는넙치와강도다리의중간형질을띄는것으로확인되지 만,
기존보고와동일하게모계에가까운중간형질을가지는지 여부를확인하기위해서는자치어의성장및성체의형태및습 성에대한추가적인연구가필요할것으로보인다.
넙치와강도다리잡종
3
배체의정상적인발생및생존가능성 은확인되었으나산업적가능성을판단하기위해서는성장력,
생식력,
성비및친어로사용된두종의우량형질획득유무분 석등에대한추가적인연구가필요하며,
잡종3
배체의생산력 증대를위해연중산란이가능한넙치와달리3
월-6
월까지만확 보가능한강도다리정자의냉동보존등의연구가추가적으로 이루어져야할것이다.
사 사
본 연구는 농림축산식품부
·
해양수산부·
농촌진흥청·
산림청의지원과제수출용킹넙치배수체종자개발
(
과제번호213004-
04-4-SB220)
에의해수행되었습니다.
References
Korean intellectual property office. 2006. Hybridized species of olive flounder and starry flounder, and process for preparing the same. 10-2006-0105252.
Animal Genome Size Database, 2016. Vertebrates-Fishes hap- loid C-value. Retrieved from http://www.genomesize.com on June 21.
Byrappa V. 2003. Evolution and diversity of fish genomes. Curr Opin Genet Dev 13, 588-592. http://dx.doi.org/10.1016/j.
gde.2003.09.001.
Do YH, Min BH, Choi ML and Lim HG. 2014. Developmen- tal Speed of hybrid fertilized egg between olive flounder
Paralichthys olivaceus female and starry flounder Platich- thys stellatus male at different water temperatures and lar-
val growth. Kor J Fish Aquat Sci 47,630-636. http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2014.0630.
Garrett DL. 2005. A new intergeneric hybrid flatfish (Pleuro- nectiformes: Pleuronectidae) from Puget Sound and adja- cent waters. Copeia 2005, 673–677. http://www.jstor.org/
stable/4098578.
He W, Xie L, Li T, Liu S, Xiao J, Hu J, Wang J, Qin Q and Liu Y. 2013. The formation of diploid and triploid hybrids of female grass carp × male blunt snout bream and their 5S rDNA analysis. BMC Genet 14,110-119. http://dx.doi.
org/10.1186/1471-2156-14-110.
Hu J, Liu S, Xiao J, Zhou Y, You C, He W, Zhao R, Song C and Liu Y. 2012. Characteristics of diploid and triploid hybrids derived from female Megalobrama amblycephala Yih×male
Xenocypris davidi Bleeker. Aquaculture 364-365, 157-164.
http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2012.08.025.
Jin CN, Lee CH, Oh SP, Jung YU, Song CB, Lee J and Heo MS.
2003. Infection route of scuticociliates in the juvenile of the cultured flounder, Paralichthys olivaceus. J Fish Pathol 16, 13-21.
Jung HS, Kim YK, Kim HC, Noh JK, Lee JH and Kim DS.
2015. Embryonic Development of Haploid Olive Flounder Paralichthys olivaceus. Korean J Fish Aquat Sci 48,696- 703. http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2015.0696
Kim DS, Jeong CH, Lee YD and RHO S. 1994. Triploid induc- tion in olive flounder, Paralichthys olivaceus. J Aquaculture 7, 55-61.
Kim DS, Nam YK and Park IS. 1995. Survival and karyological analysis of reciprocal diploid and triploid hybrids between mud loach (Misgurnus mizolepis) and cyprinid loach (Mis-
gurnus anguillicaudatus). Aquaculture 135, 257-265. http://
dx.doi.org/10.1016/0044-8486(95)01031-9.
Kim PK. 2012. Growth performance and digestive character- istics of starry flounder Platichthys stellatus on the moist and extruded pellets. Korean J Fish Aquat Sci 45, 679-685.
http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2012.0679.
Kimmel CB, Ballard WW, Kimmel SR, Ullmann B and Schil- ling TF. 1995. Stages of embryonic development of the ze- brafish. Dev Dyn 203, 253-310. http://dx.doi.org/10.1002/
aja.1002030302.
Lim HK, Byun SG, Lee HJ, Park SU, Kim YC, Han HK, Min BH and Lee BY. 2007. Sexual maturity and reproductive cy- cle of starry flounder Platichthys stellatus cultured in indoor tank. J Aquaculture 20, 212-218.
NFRDI (National Fisheries Research and Development Insti- tute). 2006. Standard Manual of Olive Flounder Culture. 14, 1-192.
NFRDI (National Fisheries Research and Development Insti- tute). 2008. Manual of starry flounder culture. 11, 1-105..
NFRDI (National Fisheries Research and Development Insti- tute). 2013. Olive flounder Paralichthys olivaceus Golden Seed project report. Golden Seed project report, 24-36, 1-533.
Orcutt HG. 1950. Embryological Development. In: The life history of the starry flounder,: Platichthys stellatus (Pallas).
California State Print Office. Sacramento, California, 26-33.
Park IS. 1992. Induced haybrid and allotriploid Misgurnus an-
guillicaudatus and M. mizolepis (Teleostomi: Cobitidae).
PH. D. Thesis, Pukyong national university, Busan, Korea.
Piferrer F, Beaumont A, Falguière JC, Flajšhans M, Haffray P and Colombo L. 2009. Polyploid fish and shellfish: Production, biology and applications to aquaculture for performance im-
provement and genetic containment. Aquaculture 293, 125- 156. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.04.036.
Rana HJ. 1990. Influence of incubation temperature on Oreo-
chromis niloticus egg and fry I. gross embryology, tem-
perature tolerance and rates of embryonic development.Aquaculture 87, 165-181. http://dx.doi.org/10.1016/0044- 8486(90)90273-P.
Thorgaard GH. 1986. Ploidy manipulation and performance.
Aquaculture 57, 57-64. http://dx.doi.org/10.1016/0044- 8486(86)90180-8.
Yamashita YT, Aritaki M, Kurita Y and Tanaka M. 2014. Early growth and development of reciprocal hybrids of the star- ry flounder Platichthys stellatus and stone flounder Ka-
reius bicoloratus. J Fish Biol 84, 1503-1518. http://dx.doi.
org/10.1111/jfb.12376.
You F, Liu J, Wang XC, Xu YL, Huang RD and Zhang PJ. 2001.
Study on embryonic development and early growth of trip- loid and gynogenetic diploid lefteyed flounder, Paralichthys
olivaceus (T. et S.). Chin J Oceanol Limnol 19, 147-151.
http://dx.doi.org/10.1007/BF02863039.
Zhu XP, You F, Zhang PJ, Xu YL and Xu JH. 2006. Effects of cold shock on microtubule organization and cell cycle in gynogenetically activated eggs of olive flounder (Paralich-
thys olivaceus). Mar Biotechnol 8, 312-318. http://dx.doi.
org/10.1007/s10126-006-5128-3.