Kor J Fish Aquat Sci 46(6),819-826,2013
한수지 46(6), 819-826, 2013Original Article
819
Original Article
서 론
스트레스는생물체의항상성이내인성또는외인성자극에의 해위협받는상태이며
,
스트레스반응이란개체가이러한자극 을극복하는전략으로알려져있다(Chrousos and Gold, 1992).
양식행위에서스트레스반응을유발하는요인으로는수질악화
(
저산소등),
핸들링,
수송,
감금,
선별,
화학약품등이있다(Bar- ton and Iwama, 1991; Davis, 2006).
어류가스트레스유발요인 에노출되는동안3
차의반응으로분류되는생화학적및생리학 적변화를연속적으로겪게된다(Wendelaar Bonga, 1997). 1
차 반응은신경내분비반응으로교감신경활성,
카테콜아민분비 그리고,
시상하부-
뇌하수체-
신장축(hypothalamus–pituitary–
interrenal axis)
활성에따른코티졸분비가이에속한다. 2
차반응으로는물
-
미네랄의불균형과글루코스와같은에너지동원 이수반된다.
일반적으로혈장코티졸과글루코스의상승수준 은스트레스유발요인노출에따른지표와스트레스유발요인 강도율지수로유용하게사용된다. 3
차반응은스트레스유발요 인이오랫동안지속적으로발생할경우와어체가항상성을회 복하지못할때발생하며,
이러한경우에는면역시스템,
번식기 능,
성장에부정적인영향을미친다(Barton and Iwama, 1991;
Wendelaar Bonga, 1997; Iwama et al., 2006).
스트레스유발요 인에따른어체의행동,
생리학적반응은실질적으로어종과스 트레스유발요인형태에따라달라진다는것이여러연구에서 보고된바있다(Barton and Iwama, 1991; Iwama et al., 2006).
빈산소는 정상적인산소보다 현저하게낮은 산소를포함하 는있는경우를말하는것으로
,
빈산소의수괴형성은조류소Article history;
Received 14 October 2013; Revised 25 November 2013; Accepted 11 December 2013
*Corresponding author: Tel: +82. 51. 720. 2436 Fax: +82. 51. 720. 2439 E-mail address: [email protected]
Kor J Fish Aquat Sci 46(6) 819-826, December 2013 http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2013.0819 pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815
ⓒ The Korean Society of Fishereis and Aquatic Science. All rights reserved
저산소 노출에 따른 감성돔(Acanthopagrus schlegelii)의 생리학적 스트레스 반응
민병화·박미선
*·명정인·황형규
국립수산과학원 전략양식연구소 양식관리과
Physiological Stress Responses in Black Seabream Acanthopagrus schlegelii Subjected to Acute Hypoxia
Byung Hwa Min, Mi Seon Park*, Jeong-In Myeong and Hyung Kyu Hwang
Aquaculture Management Division, National Fisheries Research & Development Institute, Busan 619-705 Korea
The black seabream Acanthopagrus schlegelii is an important species for aquaculture in Korea. There are, however, no reports on the physiological responses to hypoxia in this species. The objective of this study was to evaluate the effects of acute hypoxia on the physiological stress responses (plasma cortisol as the primary response, and plasma glucose, hematocrit (Ht), hemoglobin (Hb), sodium, chloride, osmolality, AST, ALT and total protein as the secondary responses) of the fish. The experimental fish were exposed to 0.5 ppm dissolved oxygen (DO) in the seawater via two methods (progressive stepwise decline (Exp.Ⅰ), and direct decline (Exp.Ⅱ)). A highly significant increase was detected in plasma cortisol levels due to the hypoxia treatments, and fish in Exp.Ⅰ had hormone levels that were significantly higher than the fish in Exp.Ⅱ. For plasma glucose, there was no significant dif- ference between the Exp.Ⅰ fish and the control fish, whereas Exp.Ⅱ fish showed significantly higher plasma glucose levels than Exp.Ⅰ fish and control fish. Ht values increased in both hypoxia treatments; however, Hb concentrations increased only in Exp.Ⅰ.
Although plasma chloride levels were unaffected by acute hypoxia, plasma sodium and osmolality levels increased in Exp.Ⅰ.
Progressive hypoxia (Exp.Ⅰ fish) increased plasma AST, ALT and total protein. These results suggest that the value and direction of changes to the investigated parameters can be used to determine the resistance of black seabream to acute hypoxia
Key words: Black seabream (Acanthopagrus schlegelii), Hypoxia, Stress response, Cortisol, Glucose
민병화
ㆍ
박미선ㆍ
명정인ㆍ
황형규820
통이원활하지못하고
,
연안이부영양화되어수중에축적된유 기물이많은곳에서여름철수온이상승할때발생할수있다(NFRDI, 2009).
자연환경에서는유영생물이이러한빈산소수괴로부터도피할수있으나
,
가두리및수하식양식방법에따 른양식생물은빈산소수괴에대한피해가불가피하다.
또한어 류의육상수조식양식시공급수펌핑및산소공급장치에문제 가발생될경우급격한저산소현상이나타나며,
이는양식어 류의뇌,
간,
근육의에너지대사에장애를유발함으로써어류 폐사에직접적으로영향을미친다(van Raaij et al., 1994; Lays et al., 2009).
급격한저산소노출에따른다양한생리학적변화 는여러어종에서밝혀져있다(Caldwell and Hinshaw, 1994;
Lays et al., 2009; Sun et al., 2012).
또한저산소는혈중CO
2,
글루코스, hematocrit (Ht), hemoglobin (Hb)
의상승(Smit and Hattingh, 1978)
과,
나아가먹이섭식,
성장,
사료효율의감소를 초래한다(Chabot and Dutil, 1999).
감성돔
(Acanthopagrus schlegelii)
은 부가가치가 높은 중요 해산양식대상종으로알려져있으며,
인공종묘생산및생산성 향상을위한기술개발,
수요증가등으로인해최근에는그생산 량이해마다급증하고있는실정이다.
또한감성돔은어업자원 증대를위한방류품종으로종묘생산을통해우리나라전연안 에대량방류되고있는주요어종중하나이다.
본연구의목적은상업적으로중요한감성돔을대상으로저산 소노출에따른스트레스의
1·2
차반응을내분비학적,
생화학적 및혈액학적측면에서조사하고자하였다.
재료 및 방법
실험어
본실험에사용된감성돔은경남거제시에소재한가두리양식 장으로부터
300
마리(
평균전장17.0±1.7 cm,
체중78.7±17.9 g)
를구입하여국립수산과학원(
부산기장군)
실내사육실로수 송한후1
톤유수식원형FRP
수조에서14
일간적응시켰다.
이 기간동안수온은21.2±0.8℃
였으며,
염분은34.0±0.2 psu
였 으며, DO
는7.8±0.4 mg/L
하루에2
회상업용배합사료를공 급하였고,
실험24
시간전부터는절식하였다.
실험전까지실험 어의폐사율은5%
이하였다.
실험조건
1
톤수조에적응시킨실험어를3
개의500 L
원형FRP
수조(
수용적200 L)
에15
마리를즉시옮겨실험을하였으며,
모든수 조의수온은19.8℃,
염분은33.8 psu
였다.
각수조의조건및실 험방법은다음과같다.
첫번째수조는대조구로, DO
는7.6 mg/
L
였으며,
실험어수조이동10
분후에모든개체로부터채혈하 였다(Con.)
두번째수조는실험어수조이동10
분후에질소가 스(N
2)
를수중에주입하여DO
를감소시켰으며,
그변화를수 질측정기(YSI-556NPS, USA)
로 모니터링하였다. N
2를 실험어가비정상적인유영
(
횡와)
과자의적인유영이불가능해질때 까지일정하게주입하였으며(1.2 L/min., 70
분),
이때의DO
농 도는0.55 mg/L
로, N
2주입에따라DO
는지수함수적으로감소 하였다(Fig. 1). N
2주입이완료되었을때이수조의실험어로부 터채혈하였다(Exp.Ⅰ:
점차적인DO
감소).
세번째수조는N
2 를주입하여DO
의농도가0.55 mg/L
로설정한다음,
실험어를 옮겨10
분후에채혈하였다(Exp.Ⅱ:
급격한DO
감소).
혈액 채취 및 분석
혈액채취전각수조에
tricaine methan sulphonate (MS-222, Sigma, USA)
를150 ppm
의농도가되도록첨가하여실험어를 마취하였다. heparin sodium
처리된주사기(3 mL)
를사용하여 실험어의미부혈관으로부터혈액을채취하여,
일부는Ht
및Hb
을측정에사용하였으며,
나머지는원심분리(4℃, 10,000 rpm, 15
분)
하여혈장을분리하여분석전까지-80℃
의초저온냉동 고에보관하였다.
Ht
는혈액을모세유리관에넣어원심분리(10,000 rpm, 10
분)
하여Ht
측정판(MICRO-HAEMATOCRIT READER, Hawk- sley Co, UK)
으로, Hb
은Hb
자동생화학분석기(Fuji dry-chem 4000, Fujifilm Co., Japan)
로측정하였다. MCHt
및Hb
의측 정값을바탕으로평균적혈구혈색소농도(mean corpuscular Hb concentation, MCHC)
를다음과같이계산하였다.
·MCHC (%) = Hb (g/100 mL)/Ht (%) × 100
혈장코티졸은
cortisol EIA kit (Oxford, USA)
를사용하여효 소면역분석(enzyme immunoassay, EIA)
로측정하였으며,
간 략히설명하자면다음과같다: ethyl ether
를사용하여혈장100 μL
로부터cortisol
을추출한후,
유기상(organic phase)
을분리 하여이를N
2가스로증발시켰다.
잔여물을100 μL
의추출buf- fer
에녹인뒤,
이중10 μL
를다시990 μL
의추출buffer
에더 하여100
배로희석시켜이를샘플로사용하였다.
샘플또는표 준용액50 μL
를microplate
에2
반복으로넣은후,
동량의Cor-
Fig. 1. Profile of dissolved oxygen of hypoxia treatment (Exp.Ⅰ) for black seabream Acanthopagrus schlegelii.a
b
ab a
a
b
DO = 6.6058e-0.039Time R² = 0.9789
0 2 4 6 8
0 10 20 30 40 50 60 70
Dissolved oxygen (mg/L)
Time (min)
a
c
b
0 5 10 15 20 25 30
Control Exp.l Exp.ll
Cortisol (ng/mL)
a
b
a
a
b
a
0 20 40 60 80 100 140 120
Control Exp.l Exp.ll
Glucose (mg/100 mL)
0 20 40 80
60
Control Exp.l Exp.ll
AST (U/L) ALT (U/L)
0 1 2 4
3
Control Exp.l Exp.ll
Total protein (g/100 mL)
0 6 4 2 8 12 10
Control l ll
저산소 노출에 따른 감성돔의 스트레스 반응
821
tisol-HRP Conjugate
를첨가하여1
시간동안상온에서두었다. Microplate
를세척한후, 150 μL TMB
기질을각well
에넣은 후30
분동안반응시켜, microplate reader (ThermoScientific MultiskanSpectrum, Thermo, Finlan)
로650 nm
에서값을측 정하였다.
코티졸의분석시Inter-assay coefficients of variation (CV)
및Intra-assay CV
는각각2.8% (n=66)
및10.5% (n=8)
이었다.
혈장의글루코스및AST (aspartate aminotransferase), ALT (alanine aminotransferase),
총단백질, Na
+, Cl
-은자동생 화학분석기로,
삼투질농도는삼투압측정기(Vapro 5520, WE- SCOR Co., USA)
로측정하였다.
통계분석
실험결과의자료값은평균
±
표준오차로나타내었으며, SPSS
통계프로그램(ver. 17.0)
을 사용하여one way-ANOVA
및Duncan's multiple range test
유의성을검정하였다(P<0.05).
결 과
코티졸 및 글루코스
혈장의코티졸농도는대조구의경우
6.9±1.4 ng/mL
였으며,
저산소노출은코티졸의농도를유의하게상승시켰다.
특히점 차적으로DO
를감소한Exp.Ⅰ
은23.7±1.8 ng/mL
로단계적으 로DO
를감소한Exp.Ⅱ
의13±1.9 ng/mL
보다높았다(Fig. 2).
글루코스농도는대조구의경우
57.2±3.2 mg/100 mL
였으 며, Exp.Ⅰ
및Ⅱ
는각각71.5 mg/100 mL,
및113.6 mg/100 mL
로Exp.Ⅰ
은대조구와차이를보이지않았으나, Exp.Ⅱ
은 대조구보다유의하게높았다(Fig. 3).
Ht, Hb 및 MCHC
감성돔의저산소노출에따른
Ht
의변화는Table 1
에나타내 었다.
대조구의Ht
는29.9±0.9%
였으나Exp.Ⅰ
및Ⅱ
는각각39.7±1.6%
및35.9±1.0%
로 대조구보다 유의하게 높았으 며,
또한Exp.Ⅰ
은Exp.Ⅱ
보다높았다. Exp.Ⅰ
의Hb
의농도는10.7±0.4 g/100 mL
로대조구의8.7±0.4 g/100 mL
로높았으 나, Exp.Ⅱ
는9.2±0.3 g/100 mL
로대조구와차이를보이지않 았다.
모든실험구의MCHC
는25.5±0.7-27.4±0.8
로그룹간 통계적인차이가없었다.
Na
+, Cl
-및 삼투질농도
저산소노출에따른
Exp.Ⅰ
의Na
+는187.4±1.4 mmol/L
로 대조구의181.3±1.0 mmol/L
보다유의하게높았으나, Exp.Ⅱ
은184.7±1.3 mmol/L
로대조구와차이가없었다.
모든실험 Fig. 2. Levels of plasma cortisol in black seabram Acanthopagrusschlegelii in hypoxia. Values are mean±S.E.M. (n=13-15). Exp.Ⅰ:
progressive stepwise decline of DO, Exp.Ⅱ: directly decline of DO. Different letters denote significant difference (P<0.05) be- tween groups.
Fig. 3. Levels of plasma glucose in black seabram Acanthopagrus schlegelii in hypoxia. Values are mean±S.E.M. (n=15). Exp.Ⅰ:
progressive stepwise decline of DO, Exp.Ⅱ: directly decline of DO. Different letters denote significant difference (P<0.05) be- tween groups.
Table 1. Levels of haematocrit (Ht), blood haemoglobin concen- tration (Hb) and mean corpuscular haemoglobin concentration (MCHC) in black seabram Acanthopagrus schlegelii in hypoxia
Ht (%) Hb (g/100 mL) MCHC (%) Control 29.9±0.9a 8.7±0.4a 27.2±2.7a Exp.Ⅰ 39.7±1.6c 10.7±0.4b 27.4±0.8a
Exp.Ⅱ 35.9±1.0b 9.2±0.3a 25.5±0.7a
Values are mean±S.E.M. (n=15). Exp.Ⅰ: progressive stepwise decline of DO, Exp.Ⅱ: directly decline of DO. Different letters denote significant difference (P<0.05) between groups.
a
b
ab a
a
b
DO = 6.6058e-0.039Time R² = 0.9789
0 2 4 6 8
0 10 20 30 40 50 60 70
Dissolved oxygen (mg/L)
Time (min)
a
c
b
0 5 10 15 20 25 30
Control Exp.l Exp.ll
Cortisol (ng/mL)
a
b
a
0 20 40 60 80 100 140 120
Control Exp.l Exp.ll
Glucose (mg/100 mL)
0 20 40 80
60
Control Exp.l Exp.ll
AST (U/L) ALT (U/L)
0 6 4 2 8 12 10
Control l ll
a
b
ab a
a
b
DO = 6.6058e-0.039Time R² = 0.9789
0 2 4 6 8
0 10 20 30 40 50 60 70
Dissolved oxygen (mg/L)
Time (min)
a
c
b
0 5 10 15 20 25 30
Control Exp.l Exp.ll
Cortisol (ng/mL)
a
b
a
a
b
a
0 20 40 60 80 100 140 120
Control Exp.l Exp.ll
Glucose (mg/100 mL)
0 20 40 80
60
Control Exp.l Exp.ll
AST (U/L) ALT (U/L)
0 1 2 4
3
Control Exp.l Exp.ll
Total protein (g/100 mL)
0 6 4 2 8 12 10
Control l ll
민병화
ㆍ
박미선ㆍ
명정인ㆍ
황형규822
구의
Cl
-은166.2±1.2-168.3±1.3 mmol/L
범위로그룹간유 의한차이가없었다.
삼투질농도는Exp.Ⅰ
만대조구보다높아 혈장Na
+와같은경향의변화를보였다(Table 2).
AST 및 ALT
저산소노출에따른
Exp.Ⅰ
의AST
는53.1±11.6 U/L
로대 조구의20.9±3.0 U/L
보다 유의하게 높았지만, Exp.Ⅱ
는32.7±6.4 U/L
로 대조구와 통계적인 차이는 보이지 않았다(Fig. 4A).
Exp.Ⅰ
의ALT
는9.6±1.6 U/L
로대조구의4.1±0.4 U/L
와Exp.Ⅱ
의5.9±0.9 U/L
보다유의하게높았으나, Exp.Ⅱ
는대 조구와차이가없었다(Fig. 4B).
총단백질
대조구의총단백질농도는
2.7±0.1 g/100 mL
였으며, Exp.Ⅰ
은3.4±0.1 g/100 mL
로 대조구보다 높았으나, Exp.Ⅱ
는2.9±0.1 g/100 mL
로대조구와차이가없었다(Fig. 5).
고 찰
경골어류에서코티졸은주요
corticosteriod
로스트레스를받 는동안혈장의코티졸농도가뚜렷하게상승하므로,
코티졸은 주로스트레스지표로이용된다(Mommsen et al., 1999).
일반 적으로안정시또는스트레스를받지않는어류의일반적인코 티졸농도는30-40 ng/mL
이지만(Wedemeyer et al., 1990),
이 상적인코티졸농도는5 ng/mL
이하로나타나고있다(Picker- ing and Pottinger, 1989).
감성돔의경우,
안정시의코티졸농 도가10 ng/mL
이하로밝혀져있으며(Min et al., 2005; Chang et al., 2007; Choi et al., 2007, Park et al., 2012)
본연구에서 도이와비슷한결과(
대조구: 6.9 ng/mL)
가나타났다.
그러나 Table 2. Levels of plasma Na+, Cl- and osmolality in black seabramAcanthopagrus schlegelii in hypoxia
Na+ (mmol/L) Cl- (mmol/L) Osmolality (mmol/kg) Control 181.3±1.0a 167.6±0.7a 339.1±2.5a Exp.Ⅰ 187.4±1.4b 168.3±1.3a 352.7±4.3b Exp.Ⅱ 184.7±1.3ab 166.2±1.2a 348.3±3.4ab Values are mean±S.E.M. (n=15). Exp.Ⅰ: progressive stepwise decline of DO, Exp.Ⅱ: directly decline of DO. Different letters denote significant difference (P<0.05) between groups.
Fig. 4. Levels of plasma AST (A) and ALT (B) in black seabram Acanthopagrus schlegelii in hypoxia. Values are mean±S.E.M. (n=15).
Exp.Ⅰ: progressive stepwise decline of DO, Exp.Ⅱ: directly decline of DO. Different letters denote significant difference (P<0.05) between groups. between groups.
a
b
ab a
a
b
DO = 6.6058e-0.039Time R² = 0.9789
0 2 4 6 8
0 10 20 30 40 50 60 70
Dissolved oxygen (mg/L)
Time (min)
a
c
b
0 5 10 15 20 25 30
Control Exp.l Exp.ll
Cortisol (ng/mL)
a
b
a
a
b
a
0 20 40 60 80 100 140 120
Control Exp.l Exp.ll
Glucose (mg/100 mL)
0 20 40 80
60
Control Exp.l Exp.ll
AST (U/L) ALT (U/L)
0 1 2 4
3
Control Exp.l Exp.ll
Total protein (g/100 mL)
0 6 4 2 8 12 10
Control l ll
a
b
ab a
a
b
DO = 6.6058e-0.039Time R² = 0.9789
0 2 4 6 8
0 10 20 30 40 50 60 70
Dissolved oxygen (mg/L)
Time (min)
a
c
b
0 5 10 15 20 25 30
Control Exp.l Exp.ll
Cortisol (ng/mL)
a
b
a
a
b
a
0 20 40 60 80 100 140 120
Control Exp.l Exp.ll
Glucose (mg/100 mL)
0 20 40 80
60
Control Exp.l Exp.ll
AST (U/L) ALT (U/L)
0 1 2 4
3
Control Exp.l Exp.ll
Total protein (g/100 mL)
0 6 4 2 8 12 10
Control l ll
Fig. 5. Levels of total protein in black seabram Acanthopagrus schlegelii in hypoxia. Values are mean±S.E.M. (n=15). Exp.Ⅰ:
progressive stepwise decline of DO, Exp.Ⅱ: directly decline of DO. Different letters denote significant difference (P<0.05) be- tween groups.
a
b
ab a
a
b
DO = 6.6058e-0.039Time R² = 0.9789
0 2 4 6 8
0 10 20 30 40 50 60 70
Dissolved oxygen (mg/L)
Time (min)
a
c
b
0 5 10 15 20 25 30
Control Exp.l Exp.ll
Cortisol (ng/mL)
a
b
a
a
b
a
0 20 40 60 80 100 140 120
Control Exp.l Exp.ll
Glucose (mg/100 mL)
0 20 40 80
60
Control Exp.l Exp.ll
AST (U/L) ALT (U/L)
0 1 2 4
3
Control Exp.l Exp.ll
Total protein (g/100 mL)
0 6 4 2 8 12 10
Control l ll
저산소 노출에 따른 감성돔의 스트레스 반응
823
이러한안정시코티졸의농도는어종
,
크기,
수온,
영양상태,
시 간등많은환경적요인과발달단계에따라달라진다고알려 져있다(Barton and Iwama, 1991).
본연구에서는저산소노출이실험어의
HPI
축을활성화시켜혈중코티졸을상승시킨것으로났으며
,
특히점차적으로DO
를낮춘Exp.Ⅰ
에서는23.7 ng/mL,
그리고즉시DO
를낮춘Exp.Ⅱ
에서는13.5 ng/mL
로Exp.Ⅰ
이1.8
배정도높았다.
이러한이유는Exp.Ⅱ
는저산소(DO=0.55 mg/L,
포화도7.4%)
노출후10
분동안만스트레스 를받았지만, Exp.Ⅰ
은DO
의어느농도인지는알수가없었나 채혈시점이전부터계속해서저산소에따른스트레스를받아 왔기때문인것으로여겨진다.
저산소노출에따른어체의코 티졸상승은많은어종에서 보고되고있다(Herbert and Stef- fensen, 2005; Lays et al., 2009; O'Connor et al., 2011). Lays et al. (2009)
에따르면spotted wolffish (Anarhichas minor)
의코 티졸의농도가저산소노출전5 ng/mL
정도였으며,
산소의포 화도가40%
까지는유의한차이를보이지않았으나그포화도 가20%
에서는약35 ng/mL
로7
배정도증가한반면,
본연구의Exp.Ⅰ
에서는산소포화도가7.4%
일때코티졸농도가3
배정 도증가한것으로나타난것으로볼때저산소스트레스유발요 인에대한코티졸반응이어종에따라다르게나타남을알수있 다.
스트레스반응은일반적으로스트레스유발요인의종류및 강도에따라다른데,
감성돔의경우담수로이동하였을때코티 졸의농도가약30 ng/mL (Chang et al., 2007)
였던반면,
수온 상승시(20→30℃)
에는약106 ng/mL (Choi et al., 2006)
로나 타나본연구에서보다높은것으로나타났다.
또한스트레스반 응은어종에따라다르며이들의생태형과생활방식에좌우된 다고알려져있다(Silkin and Silkina, 2005).
연안정착성어종 인감성돔은본연구를비롯하여여러스트레스유발요인노출 에따른코티졸상승(Min, 2006)
이연어와어류와같은유영성 어류보다낮은경향을보이는데(Barton and Iwama, 1991),
정 착성어류에서스트레스유발요인에대한코티졸의낮은반응 은스트레스유발요인인지에대하여HPI
축내의신경내분비 조절때문인것으로보여진다(Vijayan and Moon, 1994).
글루코스는화학적에너지
(ATP)
로전환되어최종적으로기 계적에너지가되므로동물의생체에너지대사에서주요한역 할을한다(Lucas, 1996).
경골어류의안정시혈장글루코스농 도는어종에따라다양한데,
잉어,
대구및연어과어류와같 이활동성이강한어종에서는54-180 mg/100 mL (West et al., 1994; Blasco et al., 2001)
로활동성이거의없는rock perch (Scorpaena porcus L.) (Silkin and Silkina, 2005)
및넙치(Para- lichthys olivaceus) (Hur et al., 2007)
의경우20 mg/100 mL
이 하로보고되고있어안정시혈장글루코스는어종의행동습성에따라구분되는것으로여겨진다
.
본연구및여러연구(Min
et al., 2006; Choi et al., 2006)
에서감성돔의안정시글루코스 농도는46-57 mg/100 mL
로나타나글루코스와행동과의관점 에서볼때감성돔은다소활동성이있는어종으로보여지며,
활동성어류의혈장의글루코스농도가높은이유는이들뇌 의대사요구량충족에필요하기때문이다
(Silkin and Silkina,
2005).
경골어류는일반적으로스트레스유발요인에노출되면혈장글루코스는코티졸과더불어상승하며
(Barton and Iwa- ma, 1991; Nolan et al., 1999),
본연구에서도이러한현상이 나타났다.
코티졸과카테콜아민은스트레스와관련하여각각 당신생합성(gluconeogenesis)
과 고혈당(hyperglycemia)
을 중 재하는역할을하며(Vijayan et al., 1997; Fabbri et al., 1998),
고혈당은스트레스로인해증가된에너지요구를충족시키는 것으로알려져있다(Vijayan et al., 1997).
저산소스트레스유 발요인에의한혈장글루코스의증가는틸라피아(Oreochromis niloticus) (Delaney and Klesius, 2004),
시베리안 철갑상어(Acipenser baeri) (Maxime et al., 1995),
시클리드(Astronotus Ocellatus) (Muusze et al., 1998)
등여러어종에서나타나고있 으며,
본연구에서도저산소노출은혈장의글루코스(Exp.Ⅰ:
71.5 mg/100 mL, Exp.Ⅱ: 113.6 mg/100 mL)
상승을유도하 였다.
본연구에서는Exp.Ⅰ
이Exp.Ⅱ
보다저산소노출시간이 많았고이로인해혈장코티졸은Exp.Ⅰ
이Exp.Ⅱ
보다높았음에도불구하고
,
오히려Exp.Ⅱ
의글루코스농도가더높게나타났다
.
이처럼스트레스유발요인노출에대하여글루코스의 상승이경미하거나(Davis and McEntire 2006),
변화가없거나(Rotllant and Tort 1997, Jentoft et al. 2005),
감소하는현상(Wood et al., 1990)
이여러연구자에의해보고되고있다.
이와 같은현상은앞서설명한것처럼어류가스트레스상태에서는 중추신경계의항상성유지를위해빠른에너지소비가필요하 기때문에코티졸에의한당신생합성보다글루코스가에너지원 으로의사용이많았기때문으로해석되며(Martínez-Porchas et al., 2009),
이러한이유로Exp.Ⅰ
은Exp.Ⅱ
보다글루코스의사 용이많았기때문에농도가낮은것으로사료된다.
일반적으로 혈액학적
parameters (Ht, Hb
및백혈구수 등)
의 변화는스트레스의2
차적반응으로 나타난다(Barton and
Iwama, 1991). Ht
는 혈중의적혈구용적을나타내며어종에따라매우다르게나타나는데
,
글루코스와마찬가지로활동성 이강한어종(sea carp, Diplodus annularis L.:
약40%,
전갱 이, Trachurus mediterraneus ponticus L.:
약34%) (Silkin and
Silkina, 2005)
일수록그값이높고,
활동성이적은어종(
넙치:
약20%,
강도다리, Platichthys stellatus:
약16%) (Hur et al.,
2007; Kim et al., 2009)
에서낮은경향을보인다.
본연구에서 감성돔의안정시Ht
는약30%
로활동이적은어종보다상당히 많은양의적혈구를가지는것으로확인되었고,
이것은그만큼 활동에필요한혈액의산소수용력이높다는것을의미한다.
급 성또는만성적저산소노출에따른Ht
의상승은여러경골어류 에서많이보고되고있다(Yamamoto et al., 1985; Wells et al.,
1989; Muusze et al., 1998). Peterson (1990)
에따르면Ht
의상 승은적혈구수의증가를비롯하여적혈구팽창,
혈장감소또는 이러한요인들의조합에따라나타난다고하였다.
본연구에서민병화
ㆍ
박미선ㆍ
명정인ㆍ
황형규824
MCHC
의결과를보면저산소노출에따른차이가없었는데,
이것은
Ht
상승이적혈구의팽창이아닌적혈구수증가에기인한 다고보여진다.
이와관련하여급성과만성적산소노출에따른Ht
의상승메카니즘은다소차이를보이는데본연구처럼급성 노출의경우,
카테콜아민이비장의수용체를활성화시켜적혈 구를혈중으로방출시킨다(Lai et al., 2006). Ht
의증가는혈액 내산소량을증가시키므로,
저산소상태동안Ht
의증가는생리 적으로어체에장점으로작용하지만,
높은Ht
는혈액의점도를 높여순환계혈액펌핑에필요한심장의에너지량을높이는단 점(
본연구에서Exp.Ⅰ
이Exp.Ⅱ
보다글루코스의낮은이유중 하나로보임)
도있다(Perry et al., 2009).
본연구에서는Exp.Ⅰ
및Ⅱ
의Ht
이대조구에비해각각약40%
와23%
가증가하였 는데,
이결과로볼때,
역시Exp.Ⅰ
은Exp.Ⅱ
보다저산소에따 른스트레스반응이더컸음을알수있다.
또한 생리학적스트레스의
2
차 반응으로물-
미네랄균형에 변화가나타난다(Barton and Iwama, 1991).
일반적으로척추 동물은체내에일정한염분을유지함으로써세포내외의이온 경사를유지한다.
이러한이유로어류는끊임없이삼투압조절 작용을하는데,
어류는해수와담수에서그차이를보인다.
해 수어류의경우체내의일정한삼투질농도를유지하기위하여 이온은방출하고,
물은흡수하는저삼투압조절능력을가진다(Min et al., 2009).
따라서어류에있어수온상승,
감금등스트 레스유발요인노출은이러한삼투압조절에혼란을야기시켜 혈장의Na
+, Cl
-및삼투질농도의변화를초래한다(Nolan et al., 1999; Choi et al., 2007).
본연구에서Exp.Ⅰ
은혈장Cl
-에는영 향을미치지않았으나혈장Na
+및삼투질농도를상승시켜지 속적인저산소노출은어체의삼투압조절장애를유발하였다.
척추동물에서AST
및ALT
는아미노전이효소로이들의혈중 농도는일반적으로 간기능지수이며,
또한수온변화,
저산소, pH,
암모니아,
중금속에의한스트레스반응으로도사용된다(Pan et al., 2003).
본연구의Exp.Ⅰ
에서는AST
및ALT
의상 승은간세포에손상이나타났음을의미하나, Exp.Ⅱ
에서는대 조구와비교해변화가없었다.
이것은Exp.Ⅰ
이Exp.Ⅱ
보다간 세포손상에영향을미칠만큼저산소노출이길었으며,
또한Exp.Ⅱ
에서같이급격한저산소노출후적어도10
분이내에는간세포손상에변화가없다는것을의미한다
.
혈장의 총단백질 농도는육상 및 수서생물의 건강
,
스트레스및웰빙을나타내는광범위한임상지표로이용되며
(Riche,
2007),
스트레스반응에따른혈장단백질의상승은단백질대사에코티졸의영향으로나타난다
(Van der Boon et al., 1991).
본연구에서지속적인저산소노출은혈장단백질상승을초래 한반면
,
급격한노출에서는변화가없었는데,
이같은결과는AST
및ALT
의변화와같은맥락으로해석이된다.
이상의결과를종합해보면
,
감성돔의급격한저산소노출은 스트레스의1
차적반응으로혈장코티졸상승을, 2
차적반응으 로글루코스, Ht,
이온,
삼투질농도, AST, ALT
및총단백질의상승을유발하였다
.
본연구와관련하여앞으로는저산소노출 시DO
농도에따른어체의스트레스반응을어체의크기를비 롯하여다양한환경조건(
수온,
염분등)
에따라조사해야할것 으로보인다.
사 사
본연구는국립수산과학원어항을활용한어촌관광형다영양 입체양식
(IMTA)
기술개발과제(RP-2013-AQ-201)
의연구비 지원에의해수행되었다.
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