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Anti-inflammatory Effect of an Ethyl Acetate Fraction from Myagropsis yendoi on Lipopolysaccharides-stimulated RAW 264.7 Cells

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527

Copyright © 2014 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815

서 론

체내의염증반응은미생물감염

,

내독소

,

조직손상과같은 해성자극에대한방어기능으로

,

이는조직의구조와기능을 상적으로회복하기위해필수적으로일어나는반응이다

.

정상 적인염증반응은시간이지남에따라염증촉진성매개체

(pro- inflammatory mediators)

생성은감소되고

,

항염증성 매개

(anti-inflammatory mediators)

증가됨으로써 스스로 증반응이제한되는조절과정을가지고있다

(Lawrence et al.,

2002).

체내의염증반응에관여하는세포하나인대식세포

(macrophages)

이러한염증반응에중요한역할을하고

.

대식세포는

interferon-γ (IFN-γ), interleukin (IL)-1β, IL-6, tumor necrosis factor-α (TNF-α)

같은염증촉진성사이토카

(cytokines),

그리고세균세포막성분인

lipopolysaccharides

(LPS)

등의자극에노출됨으로써활성화된다

(Xie et al., 1993).

활성화된대식세포는염증촉진성사이토카인이외에

inducible nitric oxide synthase (iNOS)

cyclooxygenase-2 (COX-2)

같은효소의발현을통해

nitric oxide (NO)

prostaglandin E

2

(PGE

2

)

같은다양한염증매개분자들을생성하게되고

(Na- than, 1992; Zhang and Ghosh, 2000),

이들매개체들의과도한 생성은다양한만성염증성질환의발병에기여하고있는것으 알려져있다

.

따라서염증성매개체들의생성을억제하는 연화합물의발견은보다부작용이적은항염증치료제개발을 위한방편으로관심을끌고있다

.

대식세포에있어염증촉진성 사이토카인 단백질들의 현은

nuclear factor kappa-B (NF-κB)

의해전사수준에서 조절된다

(Pahan et al., 2001).

자극이없는상태에서

NF-κB

inhibitor of kappa B (IκB)

결합한상태로불활성형태로

LPS로 유도된 RAW 264.7 대식세포에 대한 애기외톨개 모자반 (Myagropsis yendoi) 에틸아세테이트 분획물의 항염증 효과

김보운·김재일·김형락·변대석*

부경대학교 식품영양학과

Anti-inflammatory Effect of an Ethyl Acetate Fraction from Myagropsis yendoi on Lipopolysaccharides-stimulated RAW 264.7 Cells

Bowoon Kim, Jae-Il Kim, Hyeung-Rak Kim and Dae-Seok Byun*

Department of Food Science and Nutrition, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea

An ethanolic extract from Myagropsis yendoi was fractionated using several solvents. Among these, an ethyl acetate fraction ( Myagropsis yendoi ethyl acetate fraction: MYE) showed the highest anti-inflammatory activity based on inhibition of lipopolysaccharides (LPS)-induced nitric oxide (NO) production in RAW 264.7 cells. We thus investi- gated the molecular mechanisms underlying MYE’s inhibitory effects. Pretreatment of cells with up to 30 µg/mL of MYE significantly inhibited NO production and inducible nitric oxide synthase expression in a dose-dependent man- ner ( P <0.05). Similarly, MYE markedly reduced the production of pro-inflammatory cytokines, such as interleukin (IL)-1β, IL-6, and tumor necrosis factor (TNF)-α, as well as their mRNA levels. While the nuclear translocation of nuclear factor-kappa B (NF-κB) was strongly suppressed by MYE, the activation of a nuclear factor erythroid 2-re- lated factor (Nrf2) was increased. Moreover, MYE significantly reduced the phosphorylation of JNK, p38 MAPK, and phosphatidylinositol 3-kinase/Akt in LPS-stimulated cells. These results indicate that MYE contains anti-inflam- matory compounds, and that it might be used as a dietary supplement for the prevention of inflammatory diseases.

Key words: Myagropsis yendoi , Anti-inflammatory effect, Pro-inflammatory cytokines, iNOS, NF-κB

This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/)which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2014.0527 Kor J Fish Aquat Sci 47(5) 527-536, October 2014 Received 19 September 2014; Accepted 29 September 2014

*Corresponding author: Tel: +82. 51. 629. 5844 Fax: +82. 51. 629. 5842

E-mail address: [email protected]

(2)

김보운

김재일

김형락

변대석

528

세포질에존재한다

(D'Acquisto et al., 1997; Makarov, 2001).

그러나

LPS

같은자극이주어지는경우

IκB

IκB kinase (Ikk)

의해 인산화되어

proteasome

의해분해되고

,

유리

NF-κB

핵으로이동하여다양한염증성매개체와 같은

표적유전자의 발현을 유도하게 된다

(Chen et al., 1995).

NF-κB

활성화는

extracellular signal-regulated kinase (ERK), c-Jun N-terminal kinase (JNK), p38 kinase

포함하

mitogen-activated protein kinases (MAPKs)

그리고

PI3K/

Akt (PKB)

같은

kinase

의해조절되는것으로알려져있다

(Marks-Konczalik et al., 1998; Jang et al., 2005).

Nuclear factor erythroid 2–related factor 2 (Nrf2)

산화적 스트레스에대응하는세포방어기전을위한일차적인전사인 자로알려져있다

(Chen and Kunsch, 2004).

정상적인상태에

Nrf2

Keap1

의해비활성화상태로세포질에존재하지

,

산화적손상을받으면

Keap1

해리되어핵내로이동하여

antioxidant response element (ARE)

결합함으로써

HO-1

같은항산화효소의발현을조절한다

(Nguyen et al., 2000).

근의연구에의하면

, Nrf2

패혈증을유발시킨생쥐의모델실

험에서세포보호효과를나타내었으며

,

특히

Nrf2 knock-out

쥐는

LPS

유도된염증반응에과도하게반응하는것으로 고되고있다

(Ha et al., 2011). Nrf2

활성화에의해생성된

HO-1

RAW 264.7

세포에서

LPS

의해생성된염증촉진성사이 토카인의생성을억제함으로써항염증효과를나타낸다고보고 되고있다

(Lee et al., 2014).

연안에널리자생하는해조류는비타민과무기질이다량 유되어있으며식이섬유가풍부하다

.

현재많은연구들이해조 류의항균효과

,

항진균효과

,

그리고항바이러스활성을가진다 것을밝혔으며

(Del et al., 2001),

고지혈증억제

(Awad et al., 2003)

항암

(Lee et al., 1992)

같은생리활성을가진다는 과들이발표되었다

.

갈조류는저분자생리활성물질로써

fucoxanthin, fucosterol, phlorotannin

같은다양한생리활성 물질들을가지고있는것으로보고되고있다

(Kim et al., 2010b;

Kim et al., 2013a; Lee et al., 2013; Jung et al., 2014).

특히 자반류는항염증효과를가지고있는것으로나타났고

(Joung et al., 2012a; Joung et al., 2012b; Gwon et al., 2013; Kim et al., 2013b), phlorotannin, sargachromenol

sargaquinoic acid

같은다양한화합물들이함유되어있는것으로보고되고있다

(Kang et al., 2013; Kim et al., 2014).

다양한 해조류들 주에서 애기외톨개모자반

(Myagropsis

yendoi)

일본과우리나라동남해연안에서식하는 모자반

(Sargassaceae)

개모자반속

(Myagropsis)

속하는갈조류

(NFRDI., 2009),

저조선부근에생육하며다년생해조류로

봄에성숙하고뿌리를포함한개체가섬세하고유연하다

(Dae-

kyo, 2008).

식용이가능한것으로알려져있는애기외톨개모 자반은이전연구에서뛰어난항균활성이밝혀있으며

(Park et al., 2010),

최근에는이외의생리활성에관한연구들

활발히진행중이다

.

최근연구실에서수행한예비실험에 애기외톨개모자반의에탄올

(95%, v/v)

추출물로부터유기 용매

(hexane, ethyl acetate, butanol)

이용하여분획물들 분리하였고활성을분석한결과

, EtOAc

분획물에서 염증효과가강하게나타남을확인하였다

.

따라서연구에서 이러한애기외톨개모자반의

EtOAc

분획물

(M. yendoi ethyl acetate extract, MYE)

항염증효과관련분자적기전을

LPS

자극한

RAW 264.7 cell

이용하여분석함으로써

,

증성질환의발병을예방또는지연시킬있는건강기능성 재로서의이용가능성을검토하였다

.

재료 및 방법

추출과 분획

부산기장에서채취한

M. yendoi

건조분말

2 kg

환류냉 각기가부착된집기병에담고

95%

주정

(EtOH, v/v) 4 L

넣어 가열

,

추출하고

(50°C, 3

시간

)

추출액을여과하여회전진공농축 기를사용하여농축하였다

.

이를

3

반복하여

182 g

주정 추출물을얻었다

.

이를

H

2

O:EtOH (9:1, v/v)

혼합용매로 동량의

n-

헥산을넣어분액깔대기에평형화시켜상층액

n-

헥산가용부를분리하였다

.

동일한방법으로수용층에 량의에틸아세테이트

(ethyl acetate, EtOAc)

넣어평형화한 다음

EtOAc

획분을분리하여농축하여

MYE

얻었다

. 세포 배양 및 처리

RAW 264.7

세포

(ATCC, Rockville, MD, USA)

10%

fetal bovine serum (FBS)

penicillin (100 units/mL), strep- tomycin sulfate (100 µg/mL)

첨가한

Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM)

사용하였고

, 5% CO

2

, 37°C

양기에서배양하였다

. Cell culture plate

RAW 264.7 cell

70~80%

정도채워지면

phosphate-buffered saline (PBS)

씻어낸

,

계대배양하였다

. MYE

100% dimethyl sulf- oxide (DMSO)

녹여사용하였고

,

배양세포처리전에배지에 희석하여처리하였다

.

세포 독성 시험

RAW 264.7 cell

96-well plate

5×10

5

cells/well

분주 하고

37°C

에서

24

시간동안배양한

, MYE

0, 10, 20, 30

µg/mL

농도로희석된

DMEM

배지로교체하여

1

시간배양 하였고

,

이후에

LPS (1 µg/mL)

함유한

DMEM

배지에

24

시간배양하였다

.

이후

CellTiter96

Aqueous 3-(4,5-di-

methylthiazol-2-yl)-5-(3-carboxymethoxyphenyl)-2-(4-sul-

fophenyl)-2H-tetrazolium (MTS)

시험키트

(Promega, Madi-

son, WI, USA)

사용하여 제조사의방법에따라 세포생존 율을측정하였다

. MTS

용액은

FBS-free DMEM

5% (v/v)

농도로섞어

100 µL

처리하였다

. 1

시간후에

microplate

(3)

reader (Glomax Multi Detection System, Promega, Madison, WI, USA)

이용하여

490 nm

파장에서흡광도를측정하여 세포독성을분석하였다

.

NO 및 염증성 사이토카인 생성 억제 효과

MYE

항염증효과 비교를 위해

RAW 264.7

세포에서의

NO

생성에대한억제효과를분석하였다

. MYE

1

시간동안 전처리다음

LPS (1 µg/mL)

24

시간동안자극하고

,

지를원심분리

(2,000 g, 4°C, 10

)

하여회수하였다

. NO

도는배지

(100 µL)

Griess

시약

(0.1% naphthylethylene di- amine dihydrochloride + 1% sulfanilamide + 5% phosphoric acid)

동일한비율로반응시켜

microplate reader

540 nm

파장에서흡광도를측정하였다

(Kim et al., 2009).

배지

IL-1β, IL-6, TNF-α

양은

enzyme-linked immunosorbent assay kit (ELISA, R&D Systems, Minneapolis, MN, USA)

이용하여제조사의방법에따라측정하였다

.

mRNA 발현양의 분석

RAW 264.7

세포

(1×10

6

cells/well)

0, 10, 20, 30 µg/mL

농도로

MYE

1

시간동안처리한

, LPS 1 µg/mL

도로

6

시간동안자극시켰다

.

이후

Quiazol

시약

(Quiagen Sci- ence, Valencia, CA, USA)

이용하여

total RNA

분리하였

(Kim et al., 2009). Total RNA

로부터역전사중합효소 쇄반응

(RT-PCR)

분석에의한

mRNA

발현양의 분석은이전 보고

(Kim et al., 2009)

에서사용한방법을이용하였고

,

전자발현량의상대적인비교를위해서

housekeeping gene

glyceraldehye-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH)

함께 분석하였다

. PCR

반응에이용된각각의

primer

Table 1

타내었다

.

전기영동상

DNA

밴드의정량분석은

cooled CCD

camera system EZ-Capture Ⅱ (ATTO & Rise Co., Tokyo, Ja- pan)

CS analyzer ver. 3.00 software (ATTO)

이용하여

3

번의반복실험을통해얻었다

.

세포질 및 핵 단백질 추출물의 제조

NF-κB

활성화정도를분석하기위해

MYE

LPS

처리한

RAW 264.7

세포로부터세포질단백질추출 물을각각분리제조하였다

(Kim et al., 2009).

, MYE

리된 세포

(2×10

6

cells/dish)

PBS

세척하여 회수하고

, 180 µL

hypotonic buffer [10 mM Tris-HCl, 10 mM NaCl, 3 mM MgCl

2

, 0.02% NaN

3

, 0.5 mM dithiothreitol (DTT), 1mM phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF), pH 7.4]

, 20 µL

5% nonidet NP-40

첨가하여

5

동안반응시 켰다

.

이후원심분리

(1,800 g, 4°C, 5

)

상층액을세포질 추출물로이용하였다

.

침전물은

hypotonic buffer

한번세척 하고

, hypertonic buffer [20 mM 4-(2-hydroxyethyl)-1-piper- azineethanesulfonic acid, 25% glycerol, 420 mM NaCl, 1.5 mM MgCl

2

, 0.2 mM ethylenediaminetetraacetic acid, 0.02%

NaN

3

, 0.5 mM DTT, 1 mM PMSF, pH 7.4]

넣고

1

시간동안 얼음위에방치시킨다음원심분리

(13,000 g, 4°C, 10

)

하여 층액을회수하여핵단백질추출물로이용하였다

.

Western blot 분석에 의한 단백질 분석

염증관련 단백질과신호전단 단백질의인산화정도는세포

MYE

LPS

처리한이후

whole cell lysate

제조하여 시료로

, NF-κB

IκB

활성화인산화정도는상기의 세포질추출물을시료로이용하였고

,

단백질의양은이전의 보고

(Kim et al., 2009)

마찬가지로

sodium dodecyl sulfate- polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE)

분리된 백질을

nitrocellulose membrane

이전시켜

Western blot

분석하였다

.

검출된밴드의정량분석은

mRNA

분석과 찬가지로

cooled CCD camera system EZ-Capture Ⅱ

CS analyzer ver. 3.00 software

이용하여최소

3

번의반복실험 통해얻었고

,

결과를

blot

하단에수치로표기하였

.

그리고

, Western blot

사용된각각의

1

항체들은다음 같다

: iNOS (sc-650), β-actin (sc-47778), phospho-Akt (sc- 4060), Akt (sc-1618), phospho-ERK (sc-7883), ERK (sc-94), phospho-JNK (sc-6254), JNK (sc-7345), NF-κB/p65 subunit (sc-8008), HO-1 (sc-7696), Nrf2 (sc-722), poly (ADP-ribose) polymerase (PARP, sc-7150)

Santa Cruz Biotechnology (Santa Cruz, CA, USA)

에서 구입하였고

, phospho-IκB-α (4814), IκB-α (9246), phospho-p38 (4511), p38 (9212)

Cell Signaling Technology (Danvers, MD, USA)

에서각각구입하 였다

. Horseradish peroxidase (HRP)

conjugate

되어있는 각의

2

항체들

[rabbit anti-goat IgG (LF-SA5004), goat anti- mouse IgG (LF-SA5001), goat anti-rabbit IgG (LF-SA5002)]

AbFrontier (Seoul, Korea)

에서 구입하였고

, Enhanced

Table 1. Primer sequences used in this study

Primers Sequences

iNOS Forward 5'-TCT TTG ACG CTC GGA ACT GT-3‘

Reverse 5'-CCA TGA TGG TCA CAT TCT GC-3‘

COX-2 Forward 5'-TGG GCA AAG AAT GCA AAC AT-3‘

Reverse 5'-CAG CAA ATC CTT GCT GTT CC-3’

HO-1 Froward 5'-AAG ATT GCC CAG AAA GCC CTG GAC-3' Reverse 5'-AAC TGT CGC CAC CAG AAA GCT GAG-3‘

TNF-α Forward 5'-CAA GGG ACA AGG CTG CCC CG-3' Reverse 5'-GGT CAG AGT GGG GGC TGG GT-3‘

IL-1β Forward 5'-ATG GCA ACT GTT CCT GAA CTC AAC T-3' Reverse 5'-CAG GAC AGG TAT AGA TTC TTT CCT TT-3' IL-6 Forward 5'-GTA TGA ACA ACG ATG ATG CAC TTC CAG-3' Reverse 5'-GCA TTG GAA ATT GGG TAG GAA GG-3' β-actin Forward 5'-CCT CAT GAA GAT CCT GAC CG-3'

Reverse 5'-TCC ACA TCT GCT GGA AGG TG-3'

(4)

김보운

김재일

김형락

변대석

530

chemiluminescence (ECL) detection kit

GE Healthcare Bio-Science (Piscataway, NJ, USA)

사용하였다

. β-actin

PARP

각각세포질과핵의

control

단백질로서분석에포함 시켰다

.

면역형광분석법

RAW 264.7

세포를

glass coverslips (SPL Lifesciences Co., Gyeonggi-do, Korea)

위에

24

시간배양한

, MYE

1

시간 전처리하고

, LPS (1 µg/mL)

30

자극시켰다

.

세포를

4.0%

paraformaldehyde

첨가된

PBS

실온에서

15

동안반응 시켜고정시키고

, 0.5% Triton X-100

첨가된

PBS

넣어

10

동안반응시켰다

. PBS

세척한뒤에

3% BSA/PBS

넣고

30

동안

blocking

시킨

, anti-NF-κB polyclonal antibody

희석된

3% BSA/PBS

넣어

2

시간동안반응시켰다

.

다음

, Alexa Fluor

488-conjugated secondary antibody (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)

희석된

3% BSA/PBS

넣고

1

시간 동안반응시킨

, 2 µg/mL

4,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI)

핵을염색하고

LSM700 laser scanning confocal mi- croscope (Carl Zeiss, Oberkochen, Germany)

관찰하였다

. NF-κB Promoter/Luciferase assay

RAW 264.7

세포

(2×10

5

cells/well)

들어있는

24-well plate

well

1 µg

pNF-κB firefly luciferase DNA

20 ng

pRL-TK renilla luciferase DNA

lipofectamine/plus reagent (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)

함께처리하여

40

시간동안

transfection

시켰다

.

다음

, MYE

1

시간전처리 하고

, LPS (1 µg/mL)

6

시간자극시켰다

.

이후

PBS

세척 하고

100 µL

lysis buffer (0.5 mM HEPES, pH 7.8, 1% Tri- ton N-101, 1 mM CaCl

2

, and 1 mM MgCl

2

)

용해물을만들

, luciferase assay kit

사용하여

firefly luciferase activity

renilla luciferase

활성을측정하였다

. Renilla luciferase

발현 지속적으로일어나는반면

, firefly luciferase

NF-κB

해서만발현이되므로세포수에의한오차를보정할있다

. 통계 처리

연구의모든실험은이상반복하였으며

,

얻어진

과들을평균값과표준편차

(mean±SD)

계산하여나타내었

.

실험군간의유의성검증은

Student’s t-test

검증하였다

.

결과 및 고찰

LPS로 유도되는 NO 생성 및 iNOS 발현에 대한 MYE 의 억제 효과

LPS

자극된

RAW 2645.7

세포에서생성되는

NO

대한

MYE

억제효과를알아보기위해서세포를다양한농도

(0-30 µg/mL)

MYE

1

시간전처리하고

, LPS

24

시간자극하여

상층의배지로방출되는

nitrite

생성량을측정하여

NO

생성량 분석하였다

. LPS

처리에의해증가된

NO

MYE

전처리 의해농도의존적으로현저하게감소하는것으로나타났다

(Fig. 1A, P<0.05).

이러한

NO

생성의억제효과는

MYE

세포독성으로

RAW 264.7

세포가사멸되는것에의해서도 나타날있으므로

,

이러한가능성을배제하고자동일한

MYE

처리조건하에서세포생존율의변화를

MTS assay

분석하였

. Fig. 1B

나타내었듯이세포의생존율은

MYE

처리에 뚜렷한변화가없었다

.

이러한세포독성실험결과에서

MYE

처리에의한

NO

생성의억제효과는세포독성에의한것이 니라는것을확인할있었다

.

다음은

NO

생성하는효소인

iNOS

발현에대한

MYE

효과를알아보고자하였다

.

전술과같이

RAW 264.7

세포

MYE

0-30 µg/L

농도로전처리한이후

LPS

자극하 였고

,

이후세포단백질과

total RNA

분리하여각각

iNOS

단백질과유전자의발현수준을분석하였다

. Fig. 2

나타내었 듯이

iNOS

단백질의발현양은

LPS

처리에의해현저하게높게

유도되는것을있었고

, MYE

처리에의해농도의존적으

감소하는경향을나타내었다

. iNOS mRNA

발현양도단백

질과유사한경향으로

MYE

처리에의해현저하게감소하는

으로나타났으며

,

억제효과는전사수준에서효과적으로 절되고있음을나타낸다

(Fig. 2).

NO

NOS

의해

L-arginine

으로부터 생성된다

. iNOS

세균의내독소염증성사이토카인에의해강하게유도된다

(Guha and Mackman, 2001).

병리적인조건하에서

iNOS

의한

NO

현저한증가는다른염증성매개체들과함께과도 염증을유발하게되고조직의손상을유발하는것으로알려 있어염증성손상의주요매개체이다

(Nathan, 1992; Pan et al., 2011).

따라서

iNOS

발현또는활성을억제함으로써

NO

생성을억제할있는화합물은항염증물질로이용될 있을것이다

.

LPS로 유도되는 염증성 사이토카인의 생성에 대한 MYE의 억제효과

LPS

자극된

RAW 2645.7

세포에서생성되는염증촉진성 사이토카인의생성에대한

MYE

효과를

ELISA

방법으로 석하였다

. LPS

자극에의해

TNF-α (Fig. 3A), IL-1β (Fig. 3B)

IL-6 (Fig. 3C)

같은염증촉진성사이토카인의생성량은 크게증가하는것으로나타났고

,

이러한증가는다소차이는

지만

MYE

처리에의해현저하게감소하는것으로관찰되었

(P<0.05~0.01).

또한처리된세포로부터

mRNA

분리하

RT-PCR

분석한결과

ELISA

경과와유사하게나타났다

(Fig. 3D).

염증촉진성사이토카인들은체내에서 다양한면역염증 반응을조절하는역할을한다

.

세균의

LPS

의해자극된 식세포는

TNF-α

생성하고분비된

TNF-α

LPS

IL-1β

(5)

애기외톨개 에틸아세테이트 추출물의 항염증 효과

531

IL-6

생성을유도함으로써염증반응을지속시키게된다

(Beutler and Cerami, 1989). LPS

의해유도된

TNF-α

증반응의개시를촉진하며지속적인생성은만성염증을유발하 결국에는패혈성쇼크

,

염증

,

세포상해성등의다양한생리 학적과정에관여하고있다

(Balkwill, 2006; Dinarello, 1999).

IL-1β

대식세포에서생성되는주요염증촉진성사이토카인

으로서

,

세균감염에대한염증성응답의개시강화에중요한

사이토카인이다

(Lebovic et al., 2000). IL-6

대식세포에서 성되는중요한염증촉진성사이토카인으로서급성면역응답에 작용한다

(Yoshimura, 2006).

연구에서관찰된결과는

MYE

LPS-

자극에의해유도되는

IL-1β, IL-6, TNF-α

생성을 제시키는것으로나타났고

,

이는

MYE

LPS-

자극에의한 증성응답의초기단계를억제하고있음을의미한다

.

LPS로 유도되는 NF-κB의 활성화에 대한 MYE의 억 제 효과

앞에서서술하였듯이여러염증촉진성사이토카인

iNOS

발현은 주요전사인자인

NF-κB

의해 조절된다

(Zhang and Ghosh, 2000).

따라서

LPS

자극한

RAW 264.7

세포를 이용하여

NF-κB

활성화에대한

MYE

처리효과를분석하 였다

.

먼저면역형광법으로염색을하고

confocal microscopy

분석한결과를

Fig. 4A

나타내었다

.

아무런자극이가해 지지않은상태에서

NF-κB/p65 subunit (

녹색

)

DAPI

색된

(

청색

)

주변에대부분분포하는것이관찰되지만

, LPS

자극한경우녹색인

NF-κB p65

대부분은 청색인핵과

함께분포하는것으로나타났고이는

NF-κB

활성화되어

으로이동했음을보여주는결과이다

.

이러한세포에

MYE (30 µg/mL)

전처리한경우

NF-κB/p65

다시주변의세포 질에대부분분포하는것으로관찰되었고

,

이는

MYE

의해

NF-κB

활성화가현저하게억제되고있음을보여주고있다

(Fig. 4A).

NF-κB

활성화에 따른 핵으로의 이동은 이를 억제하는

단백질인

IκB-α

인산화에의한분해에의한다

(Chen et al.,

Relative cell viability (%) Nitrit concentration (μM)

A

B

140 120 100 80 60 40 20 0

0

*

**

** **

**

10 20 30 40 50

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL) Curcumin (μM) L-NIL (μM)

- - - -

+ - - -

+ 10 - -

+ 20

- -

+ 30 - -

+ - 50

- + - - 50

A iNOS

Protein

mRNA β-Actin

iNOS β-actin B

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL)

- -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

HO-1 Western blot

Western blot RT-PCR

β-actin

HO-1 β-actin Nrf2

PARP LPS (1 μg/mL)

MYE (μg/mL) - -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

p-Akt Akt p-JNK JNK p-p38 p38t β-actin

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL)

- -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

Fig. 1. Effect of MYE on cell viability and nitric oxide (NO) pro- duction in LPS-stimulated RAW 264.7 cells.

Cells pretreated with various concentrations of MYE for 1 h were stimulated with LPS (1 μg/mL) for 24 h (A, B). (A) Effect of MYE on cell viability analyzed by MTS assay. (B) Effect of MYE on NO production in LPS-stimulated RAW 264.7 cells. The culture media of the treated cells were used to measure the amount of nitrite to evaluate NO level. Curcumin and N6- (1- iminoethyl)- L- lysine (L- NIL) were used as positive controls for the inhibitory effect. All data are presented as mean±SD of three independent experiments.

*P<0.05 and **P<0.01 indicate significant differences compared to LPS-only group.

Relative cell viability (%) Nitrit concentration (μM)

B

100 80 60 40 20 0

0

*

**

** **

**

10 20 30 40 50

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL) Curcumin (μM) L-NIL (μM)

- - - -

+ - - -

+ 10

- -

+ 20 - -

+ 30

- -

+ - 50

- +

- - 50

A iNOS

Protein

mRNA β-Actin

iNOS β-actin B

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL)

- -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

HO-1 Western blot

Western blot RT-PCR

β-actin HO-1 β-actin Nrf2 PARP LPS (1 μg/mL)

MYE (μg/mL) - -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

p-Akt Akt p-JNK JNK p-p38 p38t β-actin

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL)

- -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

Fig. 2. Effect of MYE on LPS-induced inducible nitric oxide syn- thase (iNOS) protein and mRNA expression in RAW 264.7 cells.

(A) Western blot analysis of iNOS protein expression. Cells pre- treated with various concentrations of MYE for 1h were stimulated with or without LPS (1 μg/mL) for 16 h. (B) RT-PCR analysis of iNOS mRNA expression. Cells were incubated with various con- centrations of MYE for 1 h, and then stimulated with LPS (1 μg/

mL) for 6 h. mRNA levels of iNOS and β-actin were determined by RT-PCR analysis using respective gene-specific primers. The results presented are representatives of three independent experi- ments.

(6)

김보운

김재일

김형락

변대석

532

1995).

따라서

MYE

처리된세포의세포질과핵을분획하여 이들에서

NF-κB

IκB-α

인산화정도를

Western blot

으로분석하였다

. Fig. 4B

나타낸것과같이

, LPS

자극에 세포질의

p-Ikk-αβ

증가로인하여

p-IκB-α

양은증가하

반면

IκB-α

양은유의적감소하는것으로나타남으로써

산화증가에의한

IκB-α

분해가일어났음을나타내고있다

. MYE

처리에의해

p-IκB-α

경우양이현저하게감소하 것으로나타남으로써

IκB-α

인산화가억제되었고

,

이러

결과는핵에서

NF-κB

수준이농도의존적으로감소하는

결과를초래하였다

.

이상의결과는

Fig. 4A

면역형광염색 과와도일치하는것이다

.

다음은

LPS

자극된대식세포주에있어

NF-κB

promot- er

활성에대한

MYE

효과를분석하였다

.

이를위해

RAW 264.7

세포에

NF-κB promoter

가진

luciferase construct

일시적으로

transfection

하고

,

세포를다양한농도의

MYE

2

시간전처리하고이어서

LPS

6

시간동안자극하였다

. Fig.

4C

나타내었듯이

luciferase

활성은

LPS

자극에의해현저하 증가하였으며

,

이는

LPS

자극에의해활성화된

NF-κB

NF-κB

promoter

가진

luciferase

발현을크게증가시켰 음을의미한다

.

이에대한

MYE

억제효과는

10 µg/mL

농도뿐만아니라

30 µg/mL

농도에이르기까지유의적으로

감소하는것으로나타났다

.

이들결과는대식세포주에서

LPS

자극에의해유도되는

NF-κB

활성화가

MYE

의해효과 적으로억제되고있음을보여주고있고

,

이는

MYE

의한 기의염증성사이토카인

iNOS

발현억제는부분적으로

NF-κB

활성화경로에의해조절되고있음을의미하는것이다

.

MYE에 의한 Nrf2 활성화 효과

최근의많은연구를통하여

HO-1

뛰어난항염증효과가

것으로보고되고있다

.

이러한사실을입증하기위하여

LPS

처리된대식세포주에

MYE

처리하여

HO-1

HO-1

현을조절하는전사인자인

Nrf2

발현을분석하였다

. Fig. 5

Fig. 3. Effect of MYE on the production of pro-inflammatory cytokines in LPS-stimulated RAW 264.7 cells.

Cells pretreated with various concentrations of MYE were stimulated with or without LPS (1 μg/mL) for 24 h. TNF-α, IL-1β, and IL-6 protein levels in the cell culture media were measured by ELISA (A, B and C, respectively) or their mRNA levels in the cells by RT-PCR analysis (D). Data represent mean±SD of three independent experiments. *P<0.05 and **P<0.01 indicate significant differences compared to LPS-only group.

B

Cytosol

Nucleus p-Ikk-αβ

Ikk-αβ p-IκBα IκBα β-actin

NF-κB/p65 PARP

D

TNF-α IL-1β IL-6

β-actin

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL)

- -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

NF-κB/p65

A Control LPS MYE MYE+LPS

DAPI

Merge

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL)

- -

+ -

- 30

+ 30

NF-κB promoter activity (AU)

C

0 50 100 150 200

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL)

- -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

*

*

*

TNF-α concentration (ng/mL)

A

0 10 20 30 40 50 60

*

*

**

IL-1β concentration (ng/mL)

B

0 2 4 6 8

LPS (1 μg/mL) MYE (μg/mL)

- -

+ -

+ 10

+ 20

+ 30

*

** *

**

IL-6 concentration (ng/mL)

C

0 10 20 30 40 50

*

**

**

수치

Fig. 1. Effect of MYE on cell viability and nitric oxide (NO) pro- pro-duction in LPS-stimulated RAW 264.7 cells.
Fig. 3. Effect of MYE on the production of pro-inflammatory cytokines in LPS-stimulated RAW 264.7 cells.
Fig. 4. Inhibitory effect of MYE on the degradation of IκB-α and the activation of NF-κB in LPS- stimulated RAW 264.7 cells.
Fig.  5.  Effect  of  MYE  on  the  expression  of  heme  oxygenase-1  (HO-1) and the activation of nuclear factor erythroid 2-related  fac-tor (Nrf2) in LPS- stimulated RAW 264.7 cells.

참조

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