19
강원도 사육 젖소의 네오스포라포자충(Neospora caninum)에 대한 항체양성률 조사
황 의 경*
상지대학교 생명자원과학대학 동물자원학과 (게재승인: 2010년 3월 2일)
Seroprevalence of antibodies to Neospora caninum
in dairy cattle raised in Kangwon province
Eui-Kyung Hwang*
Department of Animal Science, College of Life Science and Natural Resources, Sangji University, Wonju 220-702, Korea
(Accepted: March 2, 2010)
Abstract : This survey was carried out to investigate the seroprevalence of antibodies to
Neospora(
N.)
caninumin dairy cattle raised in Kangwon province in Korea. A total of 349 sera collected from dairy cattle were tested for
N. caninumantibodies using an indirect immunofluorescent antibody test (IFAT). Ninety six (27.5%) dairy cattle were positive by IFAT. Seroprevalence of cows was 28.9% (91/315) and seroprevalence of boars was 14.7% (5/34). The seroprevalences of cows were increased according to the ages from 19.6% in cows less than 2 year-old to 50.0% in cows more than 7 year-old. Among the seroprevalences of cattle according to the raised areas, five counties or cities, Wheongsung was 34.6% (27/
78), Wonju was 29.3% (46/157), Hongcheon was 28.9% (13/45), Chuncheon was 15.0% (3/20) and Cheolwon was 13.3% (2/15). It was proved that dairy cattle raised in Kangwon provinces exposed extensively and seriously to
N. caninum.
Keywords : dairy cattle, IFAT,
Neospora caninum, seroprevalence
서 론
네오스포라포자충
( Neospora caninum )
은 분류학상Apicomplexa
문, Coccidiasina
아강, Eucoccidiorida
목, Sarcocystidae
과Neospora
속에속하는편성세포내기생원충
(protozoa)
으로서,
개에서는주로신경증상인후지마비를유발하고소에서는주로유산을일으키는것으로
알려져 있다
[7, 9, 14, 18, 22].
네오스포라포자충과Toxoplasma ( T. ) gondii
는형태학적으로매우유사하여항 원학적으로나분자생물학적으로서로확연히다르다는 것이밝혀지기전에는이원충에의한감염예가대부분 톡소플라스마병으로 잘못 진단되어 왔으나, 1988
년Dubey
등[16]
이미국의개에서T. gondii
가아닌새로운원충을확인하고최초로네오스포라포자충으로명명
하였다
. 1988
년Dubey
등[17]
이후구마비로폐사한개에서이원충을세계최초로분리하였으며
,
이어1993
년
Conrad
등[11]
은소의유산태아로부터네오스포라포자충을분리하였다
.
지금까지의연구결과네오스포라포자충의감염으로 가장큰피해를받는소를비롯한사슴
,
여우,
야생설 치류및닭등은이원충의중간숙주이고개와쿄요테 가종숙주로확인되었다[10, 15, 21, 26].
우리나라에서도
1996
년경기도소재젖소사육목장에 서임신6
개월령에유산된태아가네오스포라포자충에감염되었음을김등
[1]
이최초보고한이래, 1998
년김 등[2]
이출생직후기립불능을나타낸젖소신생송아*Corresponding author: Eui-Kyung Hwang
College of Life Science and Natural Resources, Sangji University, Wonju 220-702, Korea [Tel: +82-33-730-0531, Fax: +82-33-730-0503, E-mail: [email protected]]
지에서네오스포라포자충을분리하였으며
,
이원충이유우에서반복유산을일으킬수있다는것도확인되었다
[3].
혈청학적역학조사에있어서는1998
년허등[4]
은간접형광항체법을이용하여전국
9
개도에서사육하는젖소에대하여검사한바젖소의
35.6%
가네오스포라포자충에대한항체를보유하고있다고보고하여이병이 이미전국적으로문제가되어있음을밝힌바있고
, 2001
년허등
[5]
이충남지역에서사육하는젖소와한우에 대해항체양성률을조사하였으며, 2002
년Kim
등[24]
이전국의한우에대한항체양성률을조사하였고
, 2003
년황
[6]
은강원도내사육한우에대한항체양성률을 조사해보고하였다.
그러나아직까지강원도내사육젖소에대한네오스 포라포자충의혈청학적검사가심도있게이루어지지 않았기에이지역에서사육된젖소에대해네오스포라 포자충에대한항체보유실태를파악하여앞으로이에 대한연구및방역대책수립등에기초자료로삼고자이 조사를실시하였다
.
재료 및 방법
검사 혈청
강원도원주
,
횡성,
홍천,
춘천및철원소재24
개젖 소사육농가에서사육중인암소315
두와도축장으로 출하된젖소수소34
두등총349
두를대상으로혈액을채취하였다
.
이를혈액이응고된후혈청은분리한다 음,
검사전까지−20
oC
에냉동보관하였다가사용하였다.
검사용 항원 슬라이드
항원슬라이드제작을위한항원은소에서분리한네 오스포라포자충국내분리주인
KBA-1 [25]
을사용하였 고항원슬라이드는Yamane
등[36]
과허등[4]
의방법 에준하여제작하였다.
이를간략히설명하면KBA-1
을Vero
세포에서 증식시킨다음감염세포를세포배양플라스크로부터수확하여원심분리하였다
.
수확한세포pellet
을23G
주사바늘을통과시켜세포를파괴시켜네오스포라포자충
tachyzoite
를노출시킨후이를percoll
용액을 이용 농축시킨 다음에
1
µL
당300~400
개의tachyzoite
가포함되도록농도를조절한후teflon
코팅된12 well
슬라이드에well
당10
µL
씩 가한 다음2%
paraformaldehyde
함유PBS
로고정시켰다.
이슬라이드 를−70
oC
에보관하였다가혈청검사에사용하였다.
간접형광항체검사(indirect fluorescent antibody test:
IFAT)
IFAT
는Yamane
등[36]
과허등[4]
의방법에준하여실시하였다
.
이를간략히기술하면한우혈청을PBS(pH 7.4)
로200
배희석한혈청을네오스포라포자충tachyzoite
가코팅된
12 well
슬라이드위에각well
당10
µL
씩분 주하고37
oC
습상에서1
시간반응시킨다음5
분간수세하는데
,
세척과세척사이에는0.05% Triton X-100
을함유한
PBS
로씻어주었다.
그리고슬라이드상의습기를 헤어드라이어로건조한다음2
차항체로는100
배희석한
fluorescein-conjugated goat anti-bovine IgG(Cappel,
USA)
를각well
당10
µL
씩분주하고위와같은방법으로 반응시킨 후 세척하였다
.
이어서 마운팅용 용액(mounting fluid)
으로 봉입하고 형광현미경(Olympus
Optical, Japan)
으로관찰하였다.
반응판정기준은슬라이드에부착된
tachyzoite
의표면전체에서형광을발하는것만을양성으로판단하였고
,
표준양성혈청및표준 음성혈청은Dr. Yamane(
일본가축위생시험장)
로부터분 양을받은소혈청을각각매검사시에사용하였다.
결 과
항체양성률
강원도지역사육젖소에서네오스포라포자충에대한 혈청항체양성률을조사하기위하여총
349
두(
암소315
두및수소
34
두)
의혈청을대상으로검사를실시하였다
.
전체젖소의항체양성률은27.5%
였으며,
이를성별로분리하여보면암소의항체양성률은
28.9%
인데비하여수소의항체양성률은
14.7%
로나타나암소가수소에 비해항체양성률이높았다(Table 1).
농가별 항체양성률
농가별로항체양성률을조사한바전체검사 농가
24
개중단2
개의농가를제외한22
개농가에서사육중인젖소에서 항체가검출되어 농가별항체양성률은
91.7%
였다(Table 2).
Table 1. Seroprevalence of antibodies to
Neospora(
N.)
caninumin dairy cattle according to their sex raised in Kangwon province
Sex No of heads No of positive %
Female 315 91 28.9
Male 34 5 14.7
Total 349 96 27.5
Table 2. Seroprevalence of antibodies to
N. caninumin dairy farms located in Kangwon province
No of farms No of positive %
24 22 91.7
젖소 사육 농가의 사육규모별 양성률
젖소사육농가에대해사육규모별로분류하여보면
20
두이하사육농가의항체양성률은25.7%, 21~30
두사 육농가31.8%, 31~40
두사육농가32.4%
및41
두이상 사육농가20%
였다(Table 3).
젖소 암소의 나이별 항체양성률
젖소암소에대해 나이별로항체양성률을비교하여 보면
2
년생이하가19.6%, 3~4
년생은23.9%, 5~6
년생은34.7%, 7
년생이상은50%
로나이가많아질수록항체양성률또한현저히높아지는경향을나타내었다
(Table 4).
지역별 항체양성률
강원도내젖소사육지역별항체양성률은지역별로
차이가있었는데횡성군이
34.6%
로가장높았고,
이어원주시가
29.3%,
홍천군이28.9%,
춘천시가15.0%
였으며철원군이
13.3%
로가장낮았다(Table 5).
고 찰
네오스포라포자충증
(neosporosis)
의혈청학적진단방법으로는
IFAT
와enzyme linked immunosorption assay (ELISA)
가주로활용되고 있다[7, 8, 14, 18, 35]. Par
등
[31]
은소의혈청내항체를검출하기위하여네오스포라포자충
tachyzoite lysate
항원을이용한ELISA
를개발하였으며
ELISA
항원으로개에서분리된원충주를 이용하든또는소에서분리된원충주를이용하든상관 없이같은시험결과를얻었다고하였다.
그러나Dubey
등
[19]
은네오스포라포자충tachyzoite lysate
항원으로 사용한ELISA
는근육포자충( Sarcocystis spp.)
을인공접종한소의혈청과교차반응이일어나기때문에소에서
는
ELISA
보다는IFAT
가네오스포라포자충증의혈청학적진단에더욱유용함을확인한바있다
.
이번조사에서는국내에서진단기술이확립되어널리활용되고있 는
IFAT
를이용하였다[4, 5, 24].
어미소혈청에서네오스포라포자충특이항체를검사 하는것은이원충의감염으로인한소의유산가능성 을추정하고
,
본질병을혈청역학적으로조사하는데있어유용한방법이다
[11, 31].
이때혈청의희석배율은진단상중요한의미를 가지며
,
네오스포라포자충에대 한항체양성판정기준이되는소혈청의최적희석배 율은연구자들에따라다소차이가있으나태아의혈청 이나체액(body fluid)
의경우에는1 : 80,
어미소혈청의경우
1 : 200
에서가장특이성이높은것으로알려져있다
[8, 14].
따라서이번조사에서도유우의혈청을1 :
200
으로희석하여사용하였고,
결과의판독에있어서는Dr. Yamane
로부터분양받은양성및음성표준혈청을매검사시마다각각대조혈청으로사용하였으며
, Paré
등[31]
과허등[4]
의판정방법에근거하여slide glass
에코팅된원충항원
(tachyzoite)
표면전체에서형광이발하는것만을양성으로판단하였다
.
즉tachyzoite
표면의일부또는첨단부에서만형광을발하는경우에는비특
Table 3. Seroprevalence of antibodies to
N. caninumin dairy cows according to herd size of each farm
Herd size Total
20 21~30 31~40 41
No of farms 8 9 4 3 24
No of heads 70 129 71 45 315
No of positive 18 41 23 9 91
% 25.7 31.8 32.2 20.0 28.9
≤ ≥
Table 4. Seroprevalence of antibodies to
N. caninumin dairy cows according to their age raised in Kangwon province
Sex 2 3~4 Age 5~6 7 Total
No of heads 56 117 124 18 315
No of positive 11 28 43 9 91
% 19.6 23.9 34.7 50.0 28.9
≤ ≥
Table 5. Seroprevalence of antibodies to
N. caninumin dairy cows according to their raised areas in Kangwon province
Area No of heads No of positive %
Wonju 157 46 29.3
Wheongsung 78 27 34.6
Hongcheon 45 13 28.9
Chuncheon 20 3 15.0
Cheolwon 15 2 13.3
Total 315 91 28.9
이적반응으로간주하고음성으로판정하였다
.
지금까지소에서네오스포라포자충에대한항체보유 현황을조사하여보고한바에의하면항체양성률은젖 소에비하여비육우는보다낮은경향을보였는데미국 에서는동일지역에대한조사결과는아니나젖소의항 체양성률이
26.9%
와27.5%
인데비하여[20, 28],
비육우는
23.5%
였고[34],
동일지역에서실시한조사에서도벨기에의 경우젖소는
28.6%
인데비육우는14.0%
였고[13],
스페인의경우젖소는36.8%
인데비육우는17.9%
였고
[32],
이태리의경우젖소는11.4%
인반면비육우는
6.0%
였고[30],
아르헨티나의경우젖소는27.6%
인데비육우는
9.7%
였고[27],
파라과이의 경우젖소는36.0%
였는데비육우는26.6%
였다[29].
국내에서는허등
[4]
이1998
년유우에서네오스포라포자충에대한항체양성률을전국적으로조사한바전체적으로
35.6%
의 젖소가항체양성이었다고보고하였으며, 2001
년허등[5]
은충남지역4
개시군에사육중인젖소와한우에대해조사한바젖소는
64.2%,
한우는47.8%
가네오스포라포자충에대해항체양성을나타내었다고보고하였다
.
2002
년Kim
등[24]
은국내사육한우에대해전국적으로항체양성률을조사한바
4.1%
가네오스포라포자충에 대해항체양성을나타내었다고보고하였다.
이번조사에서강원도내사육젖소의항체양성률은
27.5%
로나타났는데이는허등[4]
이강원도소재유산발생농장사육젖소의항체양성율
51.6%
보다는높았고유산미발생농장사육젖소의항체양성률
18.3%
보 다는낮았고전체젖소의 항체양성률29.7%
와는거의 같았으며,
황[6]
이강원도사육한우의항체양성률이17.9%
라고보고한것에비하여높아강원도에서도외국이나국내의보고와같이젖소가한우에비하여항체양 성률이높음을알수있었다
.
한우에비하여젖소의항체양성률이높은이유로는일반적으로단기간사육된 후출하되는한우에비하여젖소는비교적오랜기간사 육되는점과사육방식에있어서도한우는대부분폐쇄 된공간에서네오스포라포자충의종숙주이자 감염원으
로밝혀진
[12, 15]
개와의접촉이제한된상태로사육되는데비하여젖소는보다개방된공간에서개와직접 적인접촉이보다용이한상태로사육되기때문인것으 로여겨지며
[26],
또한2003
년Kim
등[23]
이국내야생너구리의네오스포라포자충에대한조사에서항체양 성율이
23%
라고보고한바있어야생너구리가네오스 포라포자충의전염에영향을미쳤을가능성도있으나 이에대하여는앞으로보다더많은연구가이루어져야 할것이다.
조사대상젖소의성별항체양성률은수소에비하여 암소가높았는데이는수소는한우처럼비육용으로사
육되었고나이는
2
세이하인 반면에암소는3~6
세가76.5%
로대부분이어서암소의나이가더많았던것과연관이있는것으로생각되었으며이는
Razmi
등[33]
의보고와일치하였다
.
조사대상젖소의사육지역별항체양성률은횡성이
34.6%
로가장높았고철원은13.3%
로가장낮았는데이는지역별로사육환경이다른데기인한차이일수도있 으나검사두수의차이에서오는것도간과할수없으리 라여겨졌다
.
이번연구결과국내에서조사된다른연구결과와마 찬가지로강원도지역에서사육하는젖소에서도상당수 가네오스포라포자충에노출되어있음이 밝혀졌다
.
이 질병에대하여는아직까지유효한예방약또는치료제 가개발되어있지않기때문에가능한예방대책으로는 항체양성반응을나타낸소는도태순위결정시우선적으 로고려되어야하며특히유산의원인이이원충의감 염에의한것으로밝혀진소는즉시격리시킨후신속 히도태시켜야할것이며,
또한이원충의종숙주이면서 소에서이병을전파하는데중요한역할을하는것으로 밝혀진개가소와접촉하는것을우선적으로차단하여 야하고이외야생설치류,
고양이 및조류등의분변 또는분비물로부터사료나음수원이오염되지않도록 하는차단방역및유산된태아및후산과같은분비물 에개나다른소가접근하지못하도록하는방안등이 있다[7, 12, 14, 26].
이질병의효과적인방역을위해서는앞으로개의감 염실태파악과개의감염률과소의감염률간의 상관성 등에대한조사와이질병의예방백신및치료제의개 발등에대한연구가시급한것으로판단된다
.
결 론
강원도내사육젖소에대하여네오스포라포자충항체 보유실태를파악하기위해원주
,
횡성,
홍천,
춘천및철원소재
24
개젖소사육농가에서사육중인암소315
두와도축장으로출하된젖소수소
34
두등총349
두를대상으로혈액을채취하여혈청을분리한후
IFAT
방법으로혈청학적조사를실시하여다음과같은결과를얻 었다
.
1.
전체젖소의항체양성률은27.5%(96/349)
였으며,
이를성별로분리하여보면암소의항체양성률은
28.9%,
수소의항체양성률은
14.7%
로나타나암소가수소에비해항체양성률이높았다
.
2.
젖소사육농장에대한항체양성률은91.7%
였다. 3.
젖소암소의나이별항체양성률은2
년이하는19.6%
였고
, 3~4
년생은23.9%, 5~6
년생은34.7%
및7
년이상은
50.0%
였다.
3.
강원도내젖소사육지역별항체양성률은횡성군이34.6%
로가장높았고,
원주시가29.3%
로그다음이었으며
,
이어홍천군28.9%,
춘천시15.0%
및철원군13.3%
순이었다
.
이상의결과를종합해볼때
,
강원도내사육젖소의 네오스포라포자충에대한항체양성률은성별,
나이별,
사육지역별로다소의차이를보이고있으며
,
이미많은 젖소가네오스포라포자충에노출되어있다는사실이입 증됨으로써앞으로이에대한예방과관리에대한연구 가시급한것으로판단된다.
감사의 글
이논문은
2008
년도상지대학교교수연구년제지원에의한것임
.
참고문헌
1.
김대용,
황우석,
김재훈,
허권,
황의경,
이병천,
진영화
,
이재진,
최상호.
Neospora에 의한소유산발생.
대한수의학회지
1997, 37 , 607-612.
2.
김재훈,
손현주,
황의경,
황우석,
허권,
진영화,
이병천
,
이재진,
강영배,
산근일랑,
김대용.
국내소에서Neospora caninum의분리
.
대한수의학회지1998, 38 , 139-145.
3.
김재훈,
황의경,
손현주,
진영화,
윤순식,
김대용.
Neospora caninum에 의한젖소의반복유산
.
대한수 의학회지1998, 38 , 853-858.
4.
허권,
김재훈,
황우석,
황의경,
진영화,
이병천,
배지선
,
강영배,
산근일랑,
김대용.
간접형광항체법을이용한국내젖소의Neospora caninum에대한혈청역 학적연구
.
대한수의학회지1998, 38 , 859-866.
5.
허인,
김영진,
김희,
허진회,
박일규,
강승원,
정우석.
소에서 Neospora caninum에대한항체가조사
.
한국 가축위생학회지2001, 24 , 9-14.
6.
황의경.
강원도사육한우에서 Neospora caninum에 대한항체양성률조사.
대한수의학회지2003, 43 , 283- 7. 288. Anderson ML, Andrianarivo AG, Conrad PA.
Neosporosis in cattle. Anim Reprod Sci 2000, 60-61 , 417-431.
8. Barr BC, Anderson ML, Sverlow KW, Conrad PA.
Diagnosis of bovine fetal
Neosporainfection with an indirect fluorescent antibody test. Vet Rec 1995, 137 , 611-613.
9. Buxton D, McAllister MM, Dubey JP. The comparative pathogenesis of neosporosis. Trends Parasitol 2002, 18 , 546-552.
10. Costa KS, Santos SL, Uzda RS, Pinheiro AM,
Almeida MAO, Arajo FR, McAllister MM, Gondim LFP. Chickens (
Gallus domesticus) are natural intermediate hosts of
Neospora caninum. Int J Parasitol 2008, 38 , 157-159.
11. Conrad PA, Barr BC, Sverlow KW, Anderson M, Daft B, Kinde H, Dubey JP, Munson L, Ardans A.
In vitro
isolation and characterization of a
Neosporasp.
from aborted bovine foetuses. Parasitology 1993, 106 , 239-249.
12. De Marez T, Liddell S, Dubey JP, Jenkins MC, Gasbarre L. Oral infection of calves with
Neospora caninumoocysts from dogs: humoral and cellular immune responses. Int J Parasitol 1999, 29 , 1647-1657.
13. De Meerschman F, Speybroeck N, Berkvens D, Rettigner C, Focant C, Leclipteux T, Cassart D, Losson B. Fetal infection with
Neospora caninumin dairy and beef cattle in Belgium. Theriogenology 2002, 58 , 933-945.
14. Dubey JP. Recent advances in
Neosporaand neosporosis. Vet Parasitol 1999, 84 , 349-367.
15. Dubey JP, Buxton D, Wouda W. Pathogenesis of bovine neosporosis. J Comp Pathol 2006, 134 , 267-289.
16. Dubey JP, Carpenter JL, Speer CA, Topper MJ, Uggla A. Newly recognized fatal protozoan disease of dogs. J Am Vet Med Assoc 1988, 192 , 1269-1285.
17. Dubey JP, Hattel AL, Lindsay DS, Topper MJ.
Neonatal
Neospora caninuminfection in dogs: Isolation of the causative agent and experimental transmission.
J Am Vet Med Assoc 1988, 193 , 1259-1263.
18. Dubey JP, Lindsay DS. A review of
Neospora caninumand neosporosis. Vet Parasitol 1996, 67 , 1-59.
19. Dubey JP, Lindsay DS, Adams DS, Gay JM, Baszler TV, Blagburn BL, Thulliez P. Serologic responses of cattle and other animals infected with
Neospora caninum. Am J Vet Res 1996, 57 , 329-336.
20. Dyer RM, Jenkins MC, Kwok OCH, Douglas LW, Dubey JP. Serologic survey of
Neospora caninuminfection in a closed dairy cattle herd in Maryland: risk of serologic reactivity by production groups. Vet Parasitol 2000, 90 , 171-181.
21. Gondim LFP.
Neospora caninumin wildlife. Trends Parasitol 2006, 22 , 247-252.
22. Hemphill A, Gottstein B. A European perspective on
Neospora caninum. Int J Parasitol 2000, 30 , 877-924.
23. Kim JH, Kang MS, Lee BC, Hwang WS, Lee CW,
So BJ, Dubey JP, Kim DY. Seroprevalence of
antibodies to
Neospora caninumin dogs and raccoon
dogs in Korea. Korean J Parasitol 2003, 41 , 243-245.
24. Kim JH, Lee JK, Hwang EK, Kim DY. Prevalence of antibodies to
Neospora caninumin Korean native beef cattle. J Vet Med Sci 2002, 64 , 941-943.
25. Kim JH, Sohn HJ, Hwang WS, Hwang EK, Jean YH, Yamane I, Kim DY.
In vitroisolation and characterization of bovine
Neospora caninumin Korea.
Vet Parasitol 2000, 90 , 147-154.
26. McAllister MM, Dubey JP, Lindsay DS, Jolley WR, Wills RA, McGuire AM. Dogs are definitive hosts of
Neospora caninum. Int J Parasitol 1998, 28 , 1473-1478.
27. Moore DP, Campero CM, Oden AC, Posso MA, Cano D, Leunda MR, Basso W, Venturini MC, Sp
äth E. Seroepidemiology of beef and dairy herds and fetal study of
Neospora caninumin Argentina. Vet Parasitol 2002, 107 , 303-316.
28. Ortega YR, Torres MP, Mena KD. Presence of
Neospora caninumspecific antibodies in three dairy farms in Georgia and two in Texas. Vet Parasitol 2007, 144 , 353-355.
29. Osawa T, Wastling J, Acosta L, Ortellado C, Ibarra J, Innes EA. Seroprevalence of
Neospora caninuminfection in dairy and beef cattle in Paraguay. Vet Parasitol 2002, 110 , 17-23.
30. Otranto D, Llazari A, Testini G, Traversa D, Frangipane di Regalbono A, Badan M, Capelli G.
Seroprevalence and associated risk factors of
neosporosis in beef and dairy cattle in Italy. Vet Parasitol 2003, 118 , 7-18.
31. Par
éJ, Hietala SK, Thurmond MC. Interpretation of an indirect fluorescent antibody test for diagnosis of
Neosporasp. infection in cattle. J Vet Diagn Invest 1995, 7 , 273-275.
32. Quintanilla-Gozalo A, Pereira-Bueno J, Tabar
és E, Innes EA, González-Paniello R, Ortega-Mora LM.
Seroprevalence of
Neospora caninuminfection in dairy and beef cattle in Spain. Int J Parasitol 1999, 29 , 1201- 1208.
33. Razmi GR, Mohammadi GR, Garrosi T, Farzaneh N, Fallah AH, Maleki M. Seroepidemiology of
Neospora caninuminfection in dairy cattle herds in Mashhad area, Iran. Vet Parasitol 2006, 135 , 187-189.
34. Sanderson MW, Gay JM, Baszler TV.
Neosporacaninum
seroprevalence and associated risk factors in beef cattle in the northwestern United States. Vet Parasitol 2000, 90 , 15-24.
35. Williams DJ, McGarry J, Guy F, Barber J, Trees AJ. Novel ELISA for detection of
Neospora-specific antibodies in cattle. Vet Rec 1997, 140 , 328-331.
36. Yamane I, Kokuho T, Shimura K, Eto M, Shibahara T, Haritani M, Ouchi Y, Sverlow K, Conrad PA.
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