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Immuno-stimulating Activities of Skipjack Tuna Katsuwonus pelamis Cooking Juice Concentrates on Mouse Macrophages and Spleen Cells

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(1)

Kor J Fish Aquat Sci 47(6),776-784,2014

한수지 47(6), 776-784, 2014

Original Article

776

Copyright © 2014 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815

서 론

면역은인체의주요방어기전으로

,

외부물질의침입이나 염작용에대해다양한면역세포가작용하여인체를방어하는 기능을지칭하며

(Hancock and Diamond, 2000),

대식세포가 관련된비특이적면역반응과

, T

B cell

관여하는특이적 면역반응으로나뉜다

(Seo et al., 2009).

비특이적면역반응

,

자연면역에서대식세포는체내모든조직에널리분포하며

, 1

차적으로

bacteria

virus

같은감염성병원체또는암세포 노화된정상세포를탐식작용을통해제거함과동시에

inter- leukin (IL)-6, IL-1β

tumor necrosis factor-α (TNF-α)

등의

cytokine

분비하며

,

항원제시작용을하여면역반응을극대화

시키는매개역할을한다

(Yu et al., 2012a).

특이적면역은적응 면역이라고도하며

,

항원제시세포가포식제시한항원정보

T cell

인식하여일어나는면역반응으로

, T

B cell

여한다

(Yoon, 2008).

특히

CD4+ T cell

helper T (Th)

림프 구라고도하며

,

방어면역에서가장중요하게작용하는세포로 대식세포와함께

cytokine

분비를통해면역반응을유도한다

.

이러한

Th cell

Th1

Th2 cell

각각분화되며서로다른 면역작용에관여하게된다

(Mosmann and Coffman, 1989).

Th1 cell

유도

cytokine

IL-2, IL-12, interferon-γ (IFN-γ)

TNF-α

있으며

,

주로세포매개성면역작용을활성화하고

, Th2 cell

유도

cytokine

에는

IL-4, IL-5, IL-6, IL-10

있으며 주로항체생성에의해매개되는체액성면역작용을활성화한

참치(Katsuwonus pelamis) 자숙액 농축물의 마우스 대식세포 및 비장세포에 대한 면역증강활성

강보경·김꽃봉우리

1

·안나경·최연욱·김민지

1

·박시우·박원민 김보람·박지혜·배난영·안동현*

부경대학교 식품공학과/식품연구소 1부경대학교 수산과학연구소

Immuno-stimulating Activities of Skipjack Tuna Katsuwonus pelamis Cooking Juice Concentrates on Mouse Macrophages and Spleen Cells

Bo-Kyeong Kang, Koth-Bong-Woo-Ri Kim1, Na-Kyung Ahn, Yeon-Uk Choi, Min-ji Kim1, Si-Woo Bark, Won-Min Pak, Bo-Ram Kim, Ji-Hye Park, Nan-Young Bae and Dong-Hyun Ahn*

Deptartment of Food Science & Technology/Institute of Food Science, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea

1

Institute of Fisheries Sciences, Pukyong National University, Busan 619-911, Korea

Tuna cooking juice concentrate (TCJC) is by-produced during the canning processing of skipjack tuna Katsuwonus pelamis and it is well known that TCJC contains various nutritional components. Therefore, the immuno-stimulating activity of TCJC was investigated using macrophage RAW 264.7 cell line and the spleen cell isolated from BALB/c mice. The TCJC increased the production of IL-6, TNF-α, and IL-1β in a dose-dependent manner compared to the control in RAW 264.7 cells without any toxicity. In particular, the production of TNF-α was increased over 300-fold.

The production of both Th1 cytokine (such as IFN-γ, TNF-α, IL-2, and IL-12) and Th2 cytokine (IL-4, IL-6, IL-10) was also increased by TCJC treatment in splenocytes. Moreover, the TCJC increased the splenocyte proliferation in a concentration-dependent manner compared to control. These results indicate that TCJC may enhance immune func- tion by promoting various cytokine production.

Key words: Tuna Cooking Juice, Cytokines, Immune-stimulating Activities, Katsuwonus pelamis

This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/)which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2014.0776 Kor J Fish Aquat Sci 47(6) 776-784, December 2014

Received 14 November 2014; Revised 22 December 2014; Accepted 30 December 2014

*Corresponding author: Tel: +82. 51. 629. 5831 Fax: +82. 51. 629. 5824

E-mail address: [email protected]

(2)

참치 자숙액 농축물의 면역증강활성

777

.

이러한

Th1

Th2 cell

서로균형을이룸으로써면역작용 조절하게된다

(Liblau et al., 1995; Rengarajan et al., 2000).

최근경제성장공업화의추진

,

환경오염

,

식생활의변화 등이인체내부의항상성을변화시킴에따라

,

후천성면역결 핍증등의면역계질환이증가되고있다

(Park et al., 2006a).

러한면역계질환을치료하기위해예로부터많은면역요법 행해지고있으나

(Fahey and Myers, 1975; Oettgen, 1990;

Nikonenko et al., 1996),

임상적이용에는여러문제점을가지 있는실정이다

.

대표적예로

cytokine, lymphokine, growth

factor

등을직접투여하여생체면역계를조절하는방법이있는

(Oldham, 1995),

체내에서

cytokine

여러종류가상호 용을통해서로의작용을상승또는억제하여면역작용을조절 하기때문에

,

하나또는두가지의

cytokine

대량투입하여도 효과를기대할없고

,

독성이강하며혈중적정농도를 속해서유지하기어려운단점이있다

.

따라서체내에서여러 세포를자극함으로써

cytokine

유도하는보다안전한생리 활성물질탐색에대한노력이증가되고있다

(Bergelson, 1995;

Han et al., 1998; Kim et al., 2013).

한편

,

참치

(Katsuwonus pelamis)

농어목고등어과의바닷 물고기로

,

고단백 식품으로 영양학적으로 우수하며

, eicosa- pentaenoic acid (EPA, 20:5n-3)

docosahexaenoic acid

(DHA, 22:6n-3)

같은고도불포화지방산을다량함유하고

(Kim et al., 2013).

참치는우리나라에서연간

26

도가어획되고있으며

,

주로자숙처리가동반되는통조림 쓰오부시등의소재로이용되고있다

(Byun, 2012).

이러한 공정에서나오는참치자숙액은연간

2

7

톤에달하

,

단백질

, glycogen,

기능성

peptide

풍부한유리아미노산 콜라겐유래단백질인

carnosine

taurin

등을다량함유하 영양학적으로우수하나

(Kim et al., 2001; Oh, 2007; Shiau and Chai, 1990),

이의활용에대한연구로는항산화

(Lee et al., 2008; Jang et al., 2009),

항암

(Jang et al., 2009)

항고혈압

(Hwang, 2010)

대한연구만이진행되어있으며

,

면역계조절 면역증강작용에대한연구는진행된없다

.

따라서연구에서는수산가공부산물로발생하는참치 숙액의기능성소재로의이용가능성을살펴보고자참치자숙 액의마우스대식세포비장세포에대한면역증강작용을 펴보았다

.

재료 및 방법

실험 동물

실험에서비장세포분리배양을위해생후

5

주령의수컷

BALB/c

마우스를이용하였다

.

마우스는오리엔트바이오

(Ori- ent Co., Seongnam, Korea)

에서구입하여온도

20±2℃,

습도

50±10%, 12

시간의명암주기가유지되는동물사육실에서

1

주일간예비사육한실험에사용하였다

.

실험 재료

실험에사용한탈염참치자숙액은동원식품연구소에서

공받은것으로

31 Brix

농축액을

4℃

저장하며사용하였으

,

고형분함량은

25.51%

이였고

,

고형분에대한조단백

,

조지

,

조회분

,

함량은각각

96.2%, 0.2%, 6.8%, 7.2%

이였다

.

실험농도설정을위해

BCA protein assay kit (Thermo Fisher Scientific Inc., Rockford, IL, USA)

이용해

bicinchoninic

acid (BCA) assay

실시하여탈염참치자숙액의단백질

도를측정하였으며

,

단백질농도를기준으로

0.1, 1, 10, 50, 100

μg/mL

농도로실험을진행하였다

.

세포배양

Murine

대식세포주인

RAW 264.7

세포는한국세포주은

(KCLB 40071, Seoul, Korea)

에서분양받아사용하였으며

, Kim et al. (2013)

방법에따라

DMEM (GIBCO, Grand Is- land, NY, USA)

10% inactivated fetal bovine serum (FBS)

1% penicillin-streptomycin

첨가한배지를 배양액으로

37℃, 5% CO

2조건에서배양하였다

.

비장세포는

Ryu (2014)

방법을약간 변형하여 분리하였다

.

먼저 세포 유리를

BALB/c

마우스를마취사시킨

,

비장을무균적으로

출하였다

.

적출한비장은

RPMI 1640

배지로세척한

, tis-

sue grinder

균질화하여세포를유리시켰다

.

세포현탁액을

4℃, 1,800 rpm

에서

5

분간원심분리

(UNION 32R, Hanil Co., Incheon, Korea)

, red blood cell lysis buffer

10

분간 치시켜적혈구를제거하였다

.

10% FBS

포함된

RPMI 1640

배지를첨가하여

RAW 264.7

세포와동일한조건으로 양하였다

.

세포 독성 측정

참치자숙액농축물의세포독성을알아보기위해

Park et al.

(2006b)

방법을변형하여

MTT assay

실시하였다

.

먼저

RAW 264.7

세포를

1×10

6

cells/mL

농도로

96-well plate

분주하고

20

시간동안배양

,

시료를농도별

(0.1, 1, 10, 50, 100 μg/mL)

첨가하여

37℃, 5% CO

2

incubator (MCO- 15AC, Sanyo, Osaka, Japan)

에서

22

시간배양하였다

.

또한 장세포의경우

1×10

7

cells/mL

농도로

96-well plate

분주 하고시료를농도별로첨가한

37℃, 5% CO

2

incubator

에서

70

시간배양하였다

.

배양

, 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5- diphenyltetrazolium bromide (MTT)

시약을

5 mg/mL

농도로 첨가하여

2

시간배양하고이를

4℃, 2,000 rpm

에서

10

분간 원심분리하여상층액을 제거하였다

.

,

생성된

formazan

용해를위해

well

DMSO

첨가하고이를

microplate reader (Model 550, Bio-rad, Richmond, CA, USA)

540 nm

에서흡광도

[obtical density (O.D.)]

측정하였으며

,

세포증식 능은다음식에의해계산하였다

.

Proliferation Index (%) = sample

흡광도

/ control

흡광도

×100

(3)

강보경·김꽃봉우리·안나경·최연욱·김민지·박시우·박원민·김보람·박지혜 ·배난영·안동현

778

배양 상측액의 cytokine 측정

참치자숙액농축물이세포의

cytokine

분비에미치는영향

살펴보기위하여

RAW 264.7

세포마우스비장세포에

료를처리하여배양상층액의

cytokine

함량을측정하였다

(Seo and Shin, 2012).

먼저

RAW 264.7

세포를

2.5×10

5

cells/mL

24-well plate

접종하고

5% CO

2

incubator

에서

18

시간 배양하였다

.

마우스대식세포에시료를농도별

(0.1, 1, 10, 50, 100 μg/mL)

처리하여

12

시간배양하였다

.

비장세포 경우

2×10

6또는

5×10

6

cells/mL

48-well plate

접종 하고시료를처리하여

72

시간배양하였다

.

배양상층액내의

cytokine

분비량은

ELISA kit (Mouse ELISA set, BD Bio- science, San Diego, USA)

이용하여측정하였다

. ELISA mi- croplate

capture antibody

anti-mouse IL-6, TNF-α, IL-10, IFN-γ, IL-4, IL-12 (p70)

IL-1β

분주하여

4℃

에서하룻밤 동안

coating

시키고

,

이를

0.05% Tween 20

포함된

PBST

세척한

10% FBS

용액으로

blocking

하였다

. PBST

세척

,

배양상층액을분주하고실온에서

2

시간반응시켰다

.

다시

PBST

세척한희석한각각의

biotinylated anti-mouse detection antibody

streptavidin-horseradish peroxidase con- jugate

첨가하여실온에서

1

시간반응시켰다

. IL-1β

경우

, biotinylated anti-mouse IL-1β detection antibody

첨가하고

1

시간반응

, streptavidin-horseradish peroxidase conjugate

첨가하여

30

반응시켰다

.

,

이를다시

PBST

세척 다음

, OPD

용액을첨가하여실온에서

30

동안암반응 켰다

. 2 N H

2

SO

4반응을종료시킨

microplate reader

용하여

490 nm

에서흡광도를측정하였다

.

통계처리

모든실험결과에대한유의차검정은

SAS software (SAS Institute, Inc., Cary, NC, USA)

에서평균값을분산분석

, Duncan's multiple range test

법에따라

P<0.05

수준에서검정 하였다

.

결과 및 고찰

대식세포 증식에 미치는 효과

대식세포는탐식세포라고도하며

,

체내모든조직에분포하여 면역계에서매우중요한역할을담당하는세포이다

.

정상상태 보다체외의

bacteria

virus

의하여활성화되었을잠재 병원체를제거하는데더욱효율적으로작용하며

,

대표적으 식세포작용

(phagocytosis)

면역매개물질

(inflammatory mediator)

분비하고

, T cell

활성화기능을한다

(Park et al.,

2012).

외에도활성화된대식세포가분비하는세포독성

단백질은암세포

,

바이러스감염세포

,

세균등을제거하는 능을함과동시에

antigen-presenting cell (APC)

로써세포표면

class Ⅱ MHC protein

발현함으로써

, Th cell

상호활성

화를일으킨다

(Park, 2008).

따라서시료의면역활성능을측정

하는다수의연구에서대식세포의증식능에대한시료의효과 측정하고있다

(Kim et al., 2011).

연구에서는

MTT assay

이용하여 참치 자숙액농축물의 처리 농도에따른

RAW

264.7

세포의생존률을측정하였다

.

결과

(Fig. 1),

참치자숙 농축물을단백질농도기준으로농도별

(0.1, 1, 10, 50, 100

μg/mL)

처리모든처리농도에서무처리구에비해세포

증식률이증가함을보여세포독성을가지지않고대식세포의 증식능을 농도의존적으로활성화시키는것을확인하였으며

,

이는

Kim et al. (2011)

연구결과와동일하였다

.

따라서마우 대식세포주인

RAW 264.7 cell

대하여참치자숙액농축

물을단백질농도기준으로

100 μg/mL

처리시까지세포독성

가지지않는것을확인하여이후의실험에서단백질농도

준으로

100 µg/mL

까지시료를처리하여실험을진행하였다

.

대식세포 cytokine (IL-6, TNF-α, IL-1β) 분비 변화

참치자숙액 농축물이 대식세포를 자극하여

cytokine

비에관여하는지알아보기위해

mouse

단핵구기원의

RAW 264.7 cell line

이용하여참치자숙액농축물에의한

cytokine

분비변화를측정하였다

.

결과

,

세가지

cytokine

모두 자숙액농축물의첨가에따라농도의존적으로분비량이 가하는것을확인하였다

. IL-6

TNF-α

경우

(Fig. 2A, B),

시료를처리하지않은

control

세포에서는분비를보이지않았

으나참치자숙액농축물의처리에의해농도의존적인증가를 보였으며

,

특히

100 μg/mL

농도에서는각각

106.49±4.76 pg/

mL, 303.50±4.71 pg/mL

현저한증진효과를가지는것으 나타났다

.

다음으로

IL-1β

경우

(Fig. 2C), control

에서는 낮은분비량을보였으나

,

시료를

100 μg/mL

농도로처리

2

0 50 100 150 200

(µµ 100 g/mL) c

bc ab a a ab

50 10 1 0.1 Control

IL-6 (pg/ m L)

0 20 40 60 80 100 120

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

e e

d c

b a

A

TNF- αα (pg/ m L)

0 100 200 300 400 500

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d d

c b

a

B

IL-1 ββ (pg/ m L)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d cd

bc ab a

C Proliferation index (%) TN F- α (pg/ mL) α

0 20 40 60 80 100

Control 0.1 50 100 (µµg/ m L)

d

1 10

d cd

bc b

D

a

IL -12 (p 70 ) ( pg/mL)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 50 100 (µµg/ m L)

e

10 de

cd c

b a

C

IF N -γ (pg/mL)

0 25 50 75 100 125 150

Control 10 50 100 200 (µµg/ m L)

d d

cd bc

b a

A

IL -2 (pg/ mL)

0 50 100 150

Control 100 (µµg/ m L)

e

0.1 1 10 50

e d

c b

a

B

IL -4 (pg /mL)

0 20 40 60 80

0.1 50 100 (µµg/ m L)

Control

d d

c c

b a

1 10

A

IL -6 (pg /mL)

0 25 50 75 100 125 150

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

a

0.1 1

cd d

bc ab

B

IL -10 (pg/mL)

0 100 200 300 400

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

0.1 1

d cd c

b

C

a

P rol ife ra tion ind ex (% )

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/mL)

d cd bcd bc b

a

Fig. 1. Effect of concentrates of skipjack tuna Katsuwonus pelamis cooking juice on the proliferation of RAW 264.7 cells. a-cMeans with different superscripts are significantly different (P<0.05).

Proliferation index (%) = (sample O.D./control O.D.)×100

(4)

참치 자숙액 농축물의 면역증강활성

779

이상의증진효과를보였다

.

대식세포로부터생산되는염증

cytokine

IL-6

염증을유발하여대식세포를포함하는 식세포

(phagocytes)

탐식작용보체생산을증가시키는 할을하며

(Inatsu et al., 2009), TNF-α

경우대표적인

multi- functional cytokine

으로

IL-1β

함께작용하여면역세포들을 염증부위로모이게하고

, T

세포의분화와증식에관여하는

할을한다

(Knutson and Disis, 2005; Weis et al., 2007).

구와동일하게시료의대식세포의활성화를통해면역증진능을 보고한결과로는

Seo and Shin (2012)

연구에서천년초유래 점질다당이대식세포를자극하여

IL-6

TNF-α

분비를 가시킨다고보고한있으며

, Cho et al. (2014)

막걸리에서 분리한다당이대식세포의

IL-6

TNF-α

대한증진효과를 가짐을보고한있다

.

또한

Kim et al. (2006)

상황버섯추출 물이

IL-6

IL-1β

대해

, Yu et al. (2012b)

영지버섯다당

TNF-α

IL-1β

대해증진효과를가져대식세포를활성 화시켜면역증강효과를가진다고보고하였다

.

따라서연구 결과를통해참치자숙액농축물이면역반응의개시단계인 식세포와같은선천면역계

(innate immune system)

직접 성화시켜

IL-6, TNF-α

IL-1β

같은

cytokine

생산을 가시키는것을확인하였다

.

비장세포 증식에 미치는 효과

비장은혈액으로부터항원을수집하고

, T

B cell

성숙과 항원으로부터자극을받은이들의분열분화가이루어지 주요림프기관으로비장세포의증식은면역시스템활성화 매우중요한의미를가진다

(Seo and Shin, 2012).

연구에 마우스비장세포의증식능에대한참치자숙액농축물의 과를살펴보기위해참치자숙액농축물을단백질농도기준으 농도별

(0.1, 1, 10, 50, 100 μg/mL)

처리한

MTT assay

통하여증식능을관찰하였다

.

결과

(Fig. 3), 100 μg/mL

농도까지세포독성을가지지않고농도의존적으로유의적인 증가를보여면역활성능을가지는것을확인하였다

. Choi et al.

(2008)

장미무당버섯에서분리한조다당류가비장세포의

대조군에비해

2

증가시켰으며

, Jin (1996)

잣나무버

Fig. 3. Effect of concentrates of skipjack tuna Katsuwonus pelamis cooking juice on the proliferation of mice splenocytes. a-dMeans with different superscripts are significantly different (P<0.05).

Proliferation index (%) = (sample O.D./control O.D.)×100

0 50 100 150 200

100 (µµg/mL) c

bc ab a a ab

50 10 1 0.1 Control

IL-6 (pg/ m L)

0 20 40 60 80 100 120

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

e e

d c

b a

A

TNF- αα (pg/ m L)

0 100 200 300 400 500

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d d

c b

a

B

IL-1 ββ (pg/ m L)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d cd

bc ab a

C Proliferation index (%) TN F- α (pg/ mL) α

0 20 40 60 80 100

Control 0.1 50 100 (µµg/ m L)

d

1 10

d cd

bc b

D

a

IL -12 (p 70 ) ( pg/mL)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 50 100 (µµg/ m L)

e

10 de

cd c

b a

C

IF N -γ (pg/mL)

0 25 50 75 100 125 150

Control 10 50 100 200 (µµg/ m L)

d d

cd bc

b a

A

IL -2 (pg/ mL)

0 50 100 150

Control 100 (µµg/ m L)

e

0.1 1 10 50

e d

c b

a

B

IL -4 (pg /mL)

0 20 40 60 80

0.1 50 100 (µµg/ m L)

Control

d d

c c

b a

1 10

A

IL -6 (pg /mL)

0 25 50 75 100 125 150

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

a

0.1 1

cd d

bc ab

B

IL -10 (pg/mL)

0 100 200 300 400

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

0.1 1

d cd c

b

C

a

P rol ife ra tion ind ex (% )

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/mL)

d cd bcd bc b

a

Fig. 2 Enhancing effects of concentrates of skipjack tuna Katsu- wonus pelamis cooking juice on the production of IL-6 (A), TNF-α (B), and IL-1β (C) of RAW 264.7 cells. a-eMeans with different superscripts are significantly different (P<0.05).

0 50 100 150 200

100 (µµg/mL) c

bc ab a a ab

50 10 1 0.1 Control

IL-6 (pg/ m L)

0 20 40 60 80 100 120

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

e e

d c

b a

A

TNF- αα (pg/ m L)

0 100 200 300 400 500

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d d

c b

a

B

IL-1 ββ (pg/ m L)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d cd

bc ab a

C Proliferation index (%) TN F- α (pg/ mL) α

0 20 40 60 80 100

Control 0.1 50 100 (µµg/ m L)

d

1 10

d cd

bc b

D

a

IL -12 (p 70 ) ( pg/mL)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 50 100 (µµg/ m L)

e

10 de

cd c

b a

C

IF N -γ (pg/mL)

0 25 50 75 100 125 150

Control 10 50 100 200 (µµg/ m L)

d d

cd bc

b a

A

IL -2 (pg/ mL)

0 50 100 150

Control 100 (µµg/ m L)

e

0.1 1 10 50

e d

c b

a

B

IL -4 (pg /mL)

0 20 40 60 80

0.1 50 100 (µµg/ m L)

Control

d d

c c

b a

1 10

A

IL -6 (pg /mL)

0 25 50 75 100 125 150

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

a

0.1 1

cd d

bc ab

B

IL -10 (pg/mL)

0 100 200 300 400

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

0.1 1

d cd c

b

C

a

P rol ife ra tion ind ex (% )

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/mL)

d cd bcd bc b

a

(5)

강보경·김꽃봉우리·안나경·최연욱·김민지·박시우·박원민·김보람·박지혜 ·배난영·안동현

780

섯의

lepidan

비장세포를

10

증가시켜면역증진능을 지는것으로보고한있다

.

연구에서참치자숙액농축물 비장세포를자극하여증식능을증가시킴을확인하였으며

,

또한

100 μg/mL

농도까지세포독성을가지지않는것을확인

하여

,

이후의참치자숙액농축물의처리에따른비장세포

Th1

Th2 cytokine

분비변화에대해서는단백질농도기준으

100 μg/mL

농도까지실험을진행하였다

.

비장세포의 Th1 cytokine (IFN-γ, TNF-α, IL-2, IL-12) 분비 변화

IFN-γ, TNF-α, IL-2

IL-12

초기염증반응에서세포 호전달을수행함으로써면역반응에서중요한역할을담당하며

(Barnes and Liew, 1995; Ryu, 2010),

따라서많은식품의면역 작용을살펴보는연구에서면역증진능을나타내는지표로 발히이용되고있다

(Brubaker et al., 1996),

따라서연구에 참지자숙액농축물이세포수준에서면역증강효과를가지

는지를판단하기위하여마우스비장세포의

helper T

세포가 비하는

Th1 cytokine

IFN-γ, TNF-α, IL-2

IL-12

분비 량을

ELISA assay kit

측정하였다

.

참치자숙액농축물을 도별로비장세포에처리한결과

, IFN-γ, TNF-α, IL-2

IL-12 (p70)

cytokine

대해농도의존적증가를보였다

. IFN-γ

(Fig. 4A), control

구에서

66.68±2.90 pg/mL

분비량을 였으나

, 100 μg/mL

으로처리하였을

125.62±6.79 pg/mL

으로

1.8

배의분비증가를보임을확인하였다

. IFN-γ

Th1

에서생성되는전염증성사이토카인의일종으로

,

거의모든 포를표적기관으로하여분비되며

,

대식세포에대하여강력한 활성화기능을가진다

(Sypek et al., 1993).

또한다양한

antigen presenting cells (APCs)

에서

MHC class I

II

발현을유도 하고

, NK

T cell

분화를촉진시키며호중구와혈관내피세 포를활성화시킨다

(Lee et al., 2013).

이외에도

IL-4

IL-10

억제하는기능을가짐으로써체내의

Th1

세포우세반응인

type-1 response

Th2

세포우세반응인

type-2 response

간의

Fig. 4. Enhancing effects of concentrates of skipjack tuna Katsuwonus pelamis cooking juice on the production of Th1 cytokines such as IFN-γ (A), IL-2 (B), IL-12(p70) (C), and TNF-α (D) on mice splenocytes. a-eMeans with different superscripts are significantly different (P<0.05)

0 50 100 150 200

100 (µµg/mL) c

bc ab a a

ab

50 10 1 0.1 Control

IL-6 (pg/ m L)

0 20 40 60 80 100 120

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

e e

d c

b a

A

TNF- αα (pg/ m L)

0 100 200 300 400 500

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d d

c b

a

B

IL-1 ββ (pg/ m L)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d cd

bc ab a

C Proliferation index (%) TN F- α (pg/ mL) α

0 20 40 60 80 100

Control 0.1 50 100 (µµg/ m L)

d

1 10

d cd

bc b

D

a

IL -12 (p 70 ) ( pg/mL)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 50 100 (µµg/ m L)

e

10 de

cd c

b a

C

IF N -γ (pg/mL)

0 25 50 75 100 125 150

Control 10 50 100 200 (µµg/ m L)

d d

cd bc

b a

A

IL -2 (pg/ mL)

0 50 100 150

Control 100 (µµg/ m L)

e

0.1 1 10 50

e d

c b

a

B

IL -4 (pg /mL)

0 20 40 60 80

0.1 50 100 (µµg/ m L)

Control

d d

c c

b a

1 10

A

IL -6 (pg /mL)

0 25 50 75 100 125 150

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

a

0.1 1

cd d

bc ab

B

IL -10 (pg/mL)

0 100 200 300 400

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

0.1 1

d cd c

b

C

a

P rol ife ra tion ind ex (% )

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/mL)

d cd bcd bc b

a

0 50 100 150 200

(µµ 100 g/mL) c

bc ab a a ab

50 10 1 0.1 Control

IL-6 (pg/ m L)

0 20 40 60 80 100 120

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

e e

d c

b a

A

TNF- αα (pg/ m L)

0 100 200 300 400 500

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d d

c b

a

B

IL-1 ββ (pg/ m L)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d cd

bc ab a

C Proliferation index (%) TN F- α (pg/ mL) α

0 20 40 60 80 100

Control 0.1 50 100 (µµg/ m L)

d

1 10

d cd

bc b

D

a

IL -12 (p 70 ) ( pg/mL)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 50 100 (µµg/ m L)

e

10 de

cd c

b a

C

IF N -γ (pg/mL)

0 25 50 75 100 125 150

Control 10 50 100 200 (µµg/ m L)

d d

cd bc

b a

A

IL -2 (pg/ mL)

0 50 100 150

Control 100 (µµg/ m L)

e

0.1 1 10 50

e d

c b

a

B

IL -4 (pg /mL)

0 20 40 60 80

0.1 50 100 (µµg/ m L)

Control

d d

c c

b a

1 10

A

IL -6 (pg /mL)

0 25 50 75 100 125 150

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

a

0.1 1

cd d

bc ab

B

IL -10 (pg/mL)

0 100 200 300 400

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

0.1 1

d cd c

b

C

a

P rol ife ra tion ind ex (% )

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/mL)

d cd bcd bc b

a

(6)

참치 자숙액 농축물의 면역증강활성

781

세포면역항상성유지여부를판단하는주요한척도로이용되 있다

(Pisa et al., 1992).

다음으로

IL-2

IL-12 (p70)

(Fig. 4B, C), control

비해

100 μg/mL

으로처리각각

2.4

3.5

배의증진효과를보였다

. IL-2

활성화된

T

세포에 분비되며

,

주로세포분열을증진시켜

T cell growth factor

작용하는

cytokine

으로

(Grabstein et al., 1994; Howard et al., 1994), IL-2

증가효과를통해

T

림프구의증가를확인할

있는지표가된다

(Ryu et al., 2010).

또한

IL-12

p35

p40

소단위가하나의이황화결합으로결합된헤테로이합체 백질

(p70)

대식세포와수지상세포

Th1 cell

에서분비되는 사이토카인이며

, NK

T cell

자극하여

IFN-γ

분비를 가시키는역할을하여종양의성장이나전이를억제하는기능 한다

(Waldner and Neurath, 2009).

다음으로

TNF-α

경우

(Fig. 4D), 100 μg/mL

농도에서

3.3

배의분비증가효과 보여참치자숙액농축물의비장세포의

TNF-α

분비증진능 매우우수함을확인하였다

.

이러한

TNF-α

전신성염증과

급성반응을조절하는

cytokine

으로활성화된대식세포이외에

, CD4+ T cell

이나

natural killer (NK) cell

에서도생성되어 면역세포를조절하는주요

cytokine

이며

,

특히

T cell

상호 용하여

T cell

활성과성숙을조절한다

(Beutler et al., 1985;

Carswell et al., 1975; Ryu, 2014).

이들

Th1 cytokine

분비는 주로자연면역에의해활성화되며

(Seo et al., 2013),

IFN-γ, TNF-α

IL-2

T cell

성장인자로

,

특히

TNF-α

대식세포와같은백혈구를유도해급성염증반응과적응면 역반응의주요연결체로작용하여자연면역과적응면역의 개반응을조절하는것으로알려져있다

(Asadulah et al., 2003).

결과에따라서참치자숙액이비장세포의

Th1 cytokine

분비를증가시키는효과를가짐을확인하였다

.

이와같은결과

Ha et al. (2006)

BALB/c

마우스비장세포에동충하초 추출물을처리한경우

IFN-γ, TNF-α

IL-2

같은

Th1 cytokine

동시에

IL-10

대해서도증진효과를가진다고 고하였고

, Choi et al. (2010)

노루궁뎅이자실체의조다당류 비장세포의

TNF-α

IL-2

증진효과가있다고보고하였

.

또한

Seo et al. (2013)

발효꾸지뽕열매추출물이마우스 비장세포의

IL-2

IL-4

대하여증진효과가있다고보고하 였으며

, Kim et al. (2012)

동충하초추출물을마우스에투여 하였을

,

비장세포에서

IFN-γ, TNF-α, IL-2

IL-12

분비 증가됨을보고하였고

, Cha et al. (2011)

신령버섯의조다 당류를투여한생쥐의비장세포에서

TNF-α, IL-2

현저히 가함을확인하여면역증진효과를보고하였다

.

따라서연구 에서도이러한

Th1 cytokine

대하여현저한증진효과를가져 참치자숙액이세포성면역력을증진시키는것을확인하였다

. 비장세포의 Th2 cytokine (IL-4, IL-6, IL-10) 분비 변화

Th2 cell

항체에의한체액성면역에주로작용하며

, Th1 cell

작용을억제하는기능을한다

.

이러한작용을하는

Th2 cytokine

에는

IL-4, IL-6, IL-10

있으며

,

면역계는 이러한

Th1/Th2 cell

균형에의해항상성을가지며유지된다

(Seo et

al., 2013).

따라서연구에서는참치자숙액농축물의면역조

절작용메커니즘을이해하기위해

, Th2 cytokine

분비에 치는영향을알아보았다

.

결과

(Fig. 5),

모든

cytokine

참치 자숙액농축물의첨가농도의존적으로증가하는경향을보였 Fig. 5. Enhancing effects of concentrates of skipjack tuna Katsu-

wonus pelamis cooking juice on the production of Th2 cytokines such as IL-4 (A), IL-6 (B), and IL-10 (C) on mice splenocytes.

a-dMeans with different superscripts are significantly different (P<0.05)

0 50 100 150 200

100 (µµg/mL) c

bc ab a a ab

50 10 1 0.1 Control

IL-6 (pg/ m L)

0 20 40 60 80 100 120

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

e e

d c

b a

A

TNF- αα (pg/ m L)

0 100 200 300 400 500

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d d

c b

a

B

IL-1 ββ (pg/ m L)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/ m L)

d d cd

bc ab a

C Proliferation index (%) TN F- α (pg/ mL) α

0 20 40 60 80 100

Control 0.1 50 100 (µµg/ m L)

d

1 10

d cd

bc b

D

a

IL -12 (p 70 ) ( pg/mL)

0 10 20 30 40

Control 0.1 1 50 100 (µµg/ m L)

e

10 de

cd c

b a

C

IF N -γ (pg/mL)

0 25 50 75 100 125 150

Control 10 50 100 200 (µµg/ m L)

d d

cd bc

b a

A

IL -2 (pg/ mL)

0 50 100 150

Control 100 (µµg/ m L)

e

0.1 1 10 50

e d

c b

a

B

IL -4 (pg /mL)

0 20 40 60 80

0.1 50 100 (µµg/ m L)

Control

d d

c c

b a

1 10

A

IL -6 (pg /mL)

0 25 50 75 100 125 150

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

a

0.1 1

cd d

bc ab

B

IL -10 (pg/mL)

0 100 200 300 400

10 50 100 (µµg/ m L) Control

d

0.1 1

d cd c

b

C

a

P rol ife ra tion ind ex (% )

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Control 0.1 1 10 50 100 (µµg/mL)

d cd bcd bc b

a

수치

Fig. 1. Effect of concentrates of skipjack tuna Katsuwonus pelamis  cooking juice on the proliferation of RAW 264.7 cells
Fig. 3. Effect of concentrates of skipjack tuna Katsuwonus pelamis  cooking juice on the proliferation of mice splenocytes
Fig. 4. Enhancing effects of concentrates of skipjack tuna Katsuwonus pelamis cooking juice on the production of Th1 cytokines such as  IFN-γ (A), IL-2 (B), IL-12(p70) (C), and TNF-α (D) on mice splenocytes

참조

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