40(3) : 190 195 (2009)
190
생약의 조골 세포 증식과 분화 검색
이준원
*
배재대학교과학기술바이오대학생명유전공학과
Activity of Medicinal Plants on Proliferation and Differentiation of Osteoblasts
Junwon Lee*
Department of Life Science and Genetic Engineering, Paichai University, Daejeon, Korea, 302-735
Abstract −
Osteoblasts play an important role in bone metabolism by bone formation. Natural medicines having a stimulatory activity on osteoblast proliferation and differentiation can improve bone diseases such as osteoporosis. The methanol extracts of 159 herbal medicines were screened for the stimulatory activity on osteoblast proliferation by MTT assay and differentiation in the presence of ascorbic acid and
β-glycerophosphate. Among the tested extracts, Alpiniae Semen, Amomi Semen, Ane- marrhenae Rhizoma, Bambusae Folium, Cannabis Semen, Dalbergiae odoriferae Lignum, and Luffae Fructus Retinervus showed relatively strong stimulatory activity on osteoblast proliferation, whereas Amomi Semen showed strong stimulatory activity on osteoblast differentiation.
Key words −
osteoblast, medicinal plants, osteoporosis, proliferation, differentiation, Amomi Semen
골은골격으로서체형을만드는물리적인역할뿐만아니 라인체칼슘의
99%,
인의90%
를저장하고있으며,
골수에서는조혈작용을하는중요한기관이다
.
일생동안일어나는골조직의활발한대사는파골세포
(osteoclast),
조골세포
(osteoblast)
와같은뼈세포(bone cell)
의골흡수와골형성에의해골의재형성과항상성이유지된다
.
1,2)조골세포는골수에존재하며지방세포
(adipocyte),
연골세포
(chondrocyte),
근육세포(myocyte)
등으로분화할수있는전구세포인중간엽줄기세포
(mesenchymal stem cell)
로부터기원한다
.
골의재형성과정은활성비타민,
호르몬,
그리고국부적인성장인자들을포함하는다양한과정에의 해이루어진다
.
특히,
중간엽줄기세포에서조골세포로분화는
bone morphogenetic protein (BMP)
에의하여시작되며
Cbfa1/Runx2 (Runt family transcription factor)
라는 조골세포특이전사인자의발현을증가시킨다
. Runx2
는현재까지골의형성과재형성과정동안에줄기세포가조골세 포로성장하고분화하는과정에가장필수적인요소로알 려져있다
. Runx2
는조골세포의분화에필요한osteopontin, bone sialoprotein, osteocalcin, alkaline phosphatase
의 발현을조절한다
.
3,4)성숙한조골세포는결국기질안에갇히게되어골세포
(osteocyte)
로분화하거나세포자멸사(apoptosis)
에의해소멸된다
.
세포자멸사과정은골의발생과재형성에중요한것으로 알려져있다
.
파골세포의평균수명은2
주,
조골세포의평균수명은
3
개월로알려져있으며이들세포들중50%
이상이세포자멸사에의해제거된다
.
조골세포의수명과세포자멸사정도는골형성의재형성에중요한인자가된다
.
노화가진행될수록중간엽줄기세포의결핍및기능상실이 일어나고체내에산화스트레스가증가하는것으로알려져 있다
. H
2O
2에의해서발생하는산화스트레스는caspase
를활성화시켜조골세포의사멸을유도하는것으로여겨진다
.
5)또한
,
노화와관련있는부신피질호르몬사용,
갑상선중독증
,
폐경등에서볼수있듯이전신호르몬이골교체율에영향을주는것으로알려져있다
.
국소적으로는파골세포의분화에중요한 요소인
tumor necrosis factor (TNF)-related activation-induced cytokine (TRANCE, RANKL)
과OPG (osteoprotegerin)
의발현주체는조골세포이므로,
골대사불균형은일차적으로조골세포의기능저하때문인지파골세 포의분화와뼈를분해하는활성이증가한것때문인지에 대하여많은이론이제기되고있다
.
세포외로분비된OPG
*교신저자(E-mail):[email protected] (Tel):82-42-520-5914
는
RANKL
과결합하고기능을억제함으로써파골세포의골흡수를억제한다
. OPG
의발현을제거한생쥐에게서는골다공증과동맥내석회화가진행되고파골세포의생성이증 가되었다
.
4)조골세포성장과분화를조절함으로써파골세포의분화를조절할수있기때문에이러한기본적인골대 사의정보들은골질환치료를위한신약후보물질을발굴 하는데에중요한단서를제공해주고있다
.
현재가장흔히골다공증치료제로사용되고있는비스포 스포네이드
(bisposphonate)
계열의약제들은실제로골흡수를억제하면골흡수과정은빠르게수주에걸쳐감소하지 만골형성과정은천천히수개월에걸쳐감소하게된다
.
결국골형성과정도억제되는효과가있으므로여기에부갑 상선호르몬제등과같은골형성촉진제를투여하면골흡수 억제제와는달리
2-3
년후에는계속골량이증가하는것으로알려져있다
.
고령으로갈수록골소실은조골세포의숫자및기능저하로인한골형성이감소되어발생하므로골 흡수를억제하는약제만으로는치료가불가능하다
.
특히,
골다공증의원인으로폐경후골다공증
,
비타민D
의결핍으로인한이차성골다공증과더불어가장흔한스테로이드 로인한골다공증은골형성의감소가원인이다
. Glucocorticoid
는조골세포의생성을감소시키고성숙된조골세포의세포 사멸도증가시킨다
.
여러가지원인에따라다양하게나타나는골다공증은그원인에따라 약제를사용하여야하지 만치료제의부족이현실이다
.
따라서골형성도강력하게촉진시키면서골절을예방할수있는약제의개발이절실 하다
.
이러한관점에서최근에연구자들은glutaredoxin 5
가free radical
을제거하여조골세포의성장을촉진하고세포자멸사를억제한다는신호전달체계를연구한보고를하 였다
.
6)또한,
폐경기골다공증의치료법으로시도되고있는에스트로겐은7)조골세포내에서
ER (estrogen receptor)
수용체와결합한후핵으로이동하여조골세포의골대사에관 여하는전사활성을조절한다
.
8)Isoflavone
계식물성에스트로겐은콩류에많이함유되어있으며이들중대두추출물
성분인
genistein
은에스트로겐과유사한구조를가지고있어에스트로겐효과를가지며조골세포의분화를촉진하는 것으로보고되었다
.
9)인체내에서전구조골세포는세포들의증식이멈춘후에 골특이적
alkaline phosphatase (ALP)
를표현하고분화조절 인자들인
osteocalcin, osteopontin, bone sialoprotein
등을합성하게된다
.
이렇게활성화된조골세포는ALP
와같은효소의합성을통해유기물인뼈기질위에칼슘과인산 의염이고도로조직화된
hydoxyapatite
결정을운반하고축적시키게해서골형성을이루게한다
.
따라서,
조골세포의염기성인산분해효소활성도는조골세포분화의표지인자 라고보고되었고
,
10)이후에많은 in vitro실험에서효율적으로 검정할수 있는 방법으로 사용 되었다
.
8-15)Mouse
calvaria
로부터유래한MC3T3-E1 osteoblastic
세포는생체내에서일어나는조골세포의증식
,
분화,
석회화등의유사한대사적인특징을가지고있으며
,
특히세포막에당단백질인
ALP
를가지고있으므로본실험에서는MC3T3-E1 osteoblastic cell
을이용하여현재까지미비한천연물유래의생약에서조골세포의증식과분화촉진제를개발해보
고자일차로
methanol
추출물에대한조골세포의증식과분화촉진효과를검정하였다
.
재료 및 방법
시약과 조골세포의 배양 − 조골세포배양에필요한 α
- Minimal essential medium (MEM), penicillin-streptomycin solution (5000units/mL penicillin; 50000
µg/mL streptomycin), fetal bovine serum (FBS)
는Gibco (Grand Island, NY,
U.S.A)
사에서구입하였다.
조골세포분화를유도하기위해사용한
ascorbic acid
와 β-glycerophosphate
은Sigma (St.
Louis, MO, USA)
제품을사용하였다.
MC3T3-E1 osteoblastic cell
은Lee
등의11)방법을참고하여
polystyrene
세포배양접시에부착시키고온도는37
oC
를유지하면서
5% CO
2를계속공급하며습도는95%
을유지시키고
2~3
일마다배양접시에서70~80%
의세포수가넘지않도록배양하였다
.
세포증식 측정 − 생약시료의세포증식과독성을측정하기 위해
3 - (4,5-dimethyl-thiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazoliumbromide (MTT) assay
를실시하였다.
조골세포는96-well plate
에각well
당5×10
3cells/200
µl
로분주하고24
시간배양후배지를제거한다
.
여기에농도별생약추출물이 혼합된α
- MEM
배지200
µL
를각well
에첨가하여48
시간배양한다
. MTT (5 mg/mL)
용액10
µL
를각well
에첨가하고5
시간동안배양한다
.
배양후에상등액을제거하고각well
에100
µL
의DMSO
를첨가하여550 nm
에서흡광도를측정하였다
.
세포증식과독성은3
회반복실험하여대조군의흡광도에대한시료의흡광도를백분율로나타내었다
.
ALP 활성 측정 − 조골세포는
96-well plate
에각well
당1×10
4cells/200
µl
로분주하고24
시간배양후배지를제거한다
.
여기에생약추출물, ascorbic acid (25
µg/mL),
그리고 β
-glycerophosphate (10 mM)
이혼합된α-MEM
배지200
µL
를 첨가하고7
일동안배양한다. PBS
로세척하고0.1% Trion X-100
을100
µL
첨가하여lysis
하였다.
새로운plate
에상등액50
µL
와100 mM p-nitrophenylphosphate (p- NPP, Sigma-Aldrich)
를첨가하여37
oC
에서30
분간반응시킨후
0.1 N NaOH 50
µL
로 반응을중지시켜405 nm
에서 흡광도를측정하였다
. ALP
활성은3
번의 반복실험후대조군의흡광도에대한시료의 흡광도를백분율로나 타내었다
.
생약 및 생약 시료의 조제 − 본실험에이용된생약은생 명공학연구원자생사업단에서조제한
stock solution
시료를구입하여사용하였다
.
건조한시료50 g
을methanol
로실온에서
7
일간추출한후40
oC
이하에서감압농축하여10 mg/
mL
농도가되도록100% methanol
에녹여stock solution
으로만들어진시료를일차탐색에사용하였다
. 결과 및 고찰
본실험에서는
159
종의식물생약methanol
추출물을이용하여
MTT
방법으로MC3T3-E1
세포의증식과세포독성을측정하였고강한조골세포증식효과를나타내는추출
물에대하여분화표지효소인
ALP
활성을조사하였다.
일차적으로생약시료를최종농도
20
µg/mL
에서조골세포의증식과세포독성을검색한결과
Alpiniae Semen (
익지인), Amomi Semen (
사인), Anemarrhenae Rhizoma (
지모), Bambusae Folium (
죽엽), Cannabis Semen (
마자인), Dalbergiae odoriferae Lignum (
강진향), Luffae Fructus Retinervus (
사과락)
는150%
이상의조골세포증식촉진활성을 나타내었다
. Aloe (
노회), Ampelopsis Radix (
백렴), Arecae Semen (
빈랑), Artemisiae Argyi Folium (
애엽), Artemisiae Iwayomogii Herba (
인진), Astragali Radix (
황기
), Aurantii Fructus (
지각), Caesalpiniae Lignum (
소목), Ecliptae Herba (
한련초) Lycii Fructus (
구기자)
는120%
이상의조골세포증식촉진활성을나타내었다
. (Table I)
일차검색결과선정된생약시료
7
종의methanol
추출물을희석하여최종농도
10
µg/mL, 5
µg/mL
에서조골세포의증식을측정한결과
7
종의모든추출물에서100%
이상의조골세포성장활성을나타내었다
. (Table II)
이들시료에대하여조골세포분화표지효소인
ALP
활성을조사하기위하여
ascorbic acid
와β-glycerophosphate
가혼합된배지에7
종의추출물을각각혼합하여
MC3T3-E1
세포에7
일동안처리한결과최종농도
20
µg/mL
에서약110%
에서130%
이상의조골세포분화를증가시켰다
. (Table III)
홍화씨
(safflower seeds)
는칼슘과백금이풍부하여골다공증과같은골질환에효능이있다고알려져있으며
,
홍화씨를증류수로
100
oC
에서2
시간가열하여얻어진증류액을이용하여분화활성을측정할결과그자체로분화활성과 조골세포 증식을높였음이 보고되었다
.
12)또한,
골쇄보(Drynariae Rhizoma)
13),
당귀(Angelica sinensis)
14),
토사자(Cuscuta chinensis)
15)의증류액도 조골세포의증식과분화활성을 증가시킨다고보고되었다
.
그러나,
본실험에서methanol
로추출한홍화씨,
홍화,
골쇄보,
당귀,
토사자의추출물에서는뛰어난조골세포증식효과가나타나지않았다
.
조골세포증식과분화활성검색을통해가장뛰어난활성 을보인생약인사인은최근연구에따르면에탄올과물의
Table I.
Survival rate of osteoblasts by the methanol extracts of natural plants
Samples Survival
rate (%)
a1 Acanthopanacis Cortex
오가피0
2 Achuranthis Radix
우슬0
3 Aconiti Jaluencis Tuber
초오0
4 Aconiti Tuber
천오-1
5 Acori Graminei Rhizoma
석창포0
6 Actinidiae Caulis
미후(
도)
등0
7 Actinidiae Fructus
미후도0
8 Ailanthi Radicis Cortex
저근백피0
9 Akebiae Caulis
목통0
10 Alismatis Rhizoma
택사(
토) 0
11 Allii tuberosi Semen
구자0
12 Aloe
노회+1
13 Alpiniae Officinari Rhizoma
고량강0
14 Alpiniae Semen
익지인+2
15 Amomi Tsao-ko Fructus
초과0
16 Amomi Cardamomi Fructus
백두구-1
17 Amomi Semen
사인+2
18 Ampelopsis Radix
백렴+1
19 Anemarrhenae Rhizoma
지모+2
20 Angelicae Dahuricae Radix
백지0
21 Angelicae Gigantis Radix
당귀-1
22 Angelicae koreanae Radix
강활-1
23 Angelicae tenuissimae Radix
고본0
24 Araliae Cordatae Radix
독활0
25 Arctii Semen
우방자-1
26 Arecae Pericarpium
대복피0
27 Arecae Semen
빈랑+1
28 Aristolchiae Fructus
마두령0
29 Armeniacae Semen
행인(
거피) 0
30 Artemisiae Argyi Folium
애엽+1
31 Artemisiae Iwayomogii Herba
인진+1
32 Asiasari Radix
세신(
근) 0
33 Asparagi Tuber
천문동0
34 Asteris Radix
자완0
35 Astragali Radix
황기(
토) +1
36 Atractylodis Rhizoma
창출0
37 Aurantii Fructus
지각+1
38 Aurantii Nobilis Pericarpium
진피0 39 Bambusae Caulis in Taeniam
죽여0
40 Bambusae Folium
죽엽+2
41 Belamcandae Rhizoma
사간0
Table I.
Continued
Samples Survival
rate (%)
a42 Benincasae Semen
동과자0
43 Biotae Orientalis Folium
측백0
44 Bletillae Rhizoma
백급0
45 Broussonetiae Fructus
저실자0
46 Buddlejae Flos
밀몽화0
47 Bupleuri Radix
시호-1
48 Caesalpiniae Lignum
소목+1
49 Cannabis Semen
마자인+2
50 Carthami Flos
홍화0
51 Carthami Semen
홍화자0
52 Caryophylli Cortex
정향수피0
53 Caryophylli Flos
정향0
54 Cassiae Semen
결명자0
55 Celosiae Semen
청상자0
56 Chaenomelis Fructus
모과(
목과) 0 57 Chaenomelis Langenariae
Radix
해당근0
58 Chelidonii Herba
백굴채0
59 Chrysanthemi sibirici Herba
구절초0
60 Chrysanthemi Flos
감국0
61 Cibotii Rhizoma
구척(
금모구척
,
초) 0
62 Cimicifugae Rhizoma
승마0
63 Cinnamomi Ramulus
계지0
64 Cistanchis Herba
육종용0
65 Citri tangerinae Semen
귤핵-1
66 Cnidii Rhizoma
천궁(
토) 0
67 Coicis Semen
의이인0
68 Coptidis Rhizoma
천황련0
69 Corni Fructus
산수유0
70 Corydalis Tuber
현호색0
71 Crassirhizomae Rhizoma
관중0
72 Curculiginis Rhizoma
선모0
73 Curcumae longae Rhizoma
강황-1
74 Curcumae longae Radix
울금-2
75 Cuscutae Semen
토사자0
76 Cynanchi Radix
백미0
77 Cynomorii Herba
쇄양0
78 Cyperi Rhizoma
향부자0
79 Dalbergiae odoriferae Lignum
강진향+2
80 Dendrobii Herba
석곡0
81 Desmodii Herba
광금전초0
82 Dioscoreae Rhizoma
산약-1
Table I.
Continued
Samples Survival
rate (%)
a83 Dipsaci Radix
천속단-2
84 Drabae Semen
정력자0
85 Drynariae Rhizoma
골쇄보0
86 Echinopsis Radix
누로-1
87 Ecliptae Herba
한련초+1
88 Ephedrae Herba
마황0
89 Ephedrae Radix
마황근0
90 Equiseti Herba
목적0
91 Eriobotryae Folium
비파엽0
92 Erycibae Caulis
정공등0
93 Eucommiae Folium
두충엽-1
94 Eucommiae Ramulus
두충지0
95 Euphorbiae kansui Radix
감수-1
96 Evodiae Fructus
오수유0
97 Fagopyri Semen
교맥0
98 Farfarae Flos
관동화0
99 Forsythiae Fructus
연교-1
100 Fraxini Cortex
목진피0
101 Gardeniae Fructus
치자0
102 Gastrodiae Rhizoma
천마0
103 Gentianae Macrophyllae Radix
진범(=
진교) 0
104 Ginseng Radix
인삼0
105 Gleditsiae Fructus
조협0
106 Gleditsiae Semen
조각인0
107 Gleditsiae Spina
조각자0
108 Glycine Semen nigra
흑두0
109 Glycyrrhizae Radix
감초-1
110 Gossypii Semen
면화자(=
면실자) -1 111 Hedyotidis Diffusae Herba
백화사설초-1 112 Hordei Fructus Germinatus
맥아0
113 Hoveniae Lignum
지구자나무0
114 Hydnocarpi Semen
대풍자0
115 Illicii Veri Fructus
팔각향(
대회향) 0
116 Imperatae Rhizoma
모근(
백모근) 0
117 Inulae Flos
선복화0
118 Inulae Radix
토목향0
119 Isatidis Radix
판람근0
120 Kochiae Fructus
지부자0
121 Ledebouriellae Radix
방풍0
추출물이수지상세포
(Dendritic cells)
의면역활성을높였으며동물모델에서종양세포의성장을저해하였다고보고 되었다
.
16)또한,
사인의증류추출물은alloxan
에의해야기된췌장의베타세포의산화스트레스
,
세포질내의Ca
2+,
그리고
DNA
절단을저해함으로써베타세포의파괴를방어하는작용을한다고보고되었다
.
17)지금까지알려진바와같이사인추출물의세포보호와증식효과는뛰어나다
.
따라서
,
사인추출물의조골세포증식과분화효과를생화학적으로증명하고동물모델을통한골다공증치료효과를검증 하여치료제로써응용할수있는가능성을제시할필요가 있다
.
이후에추출물로부터순수물질을분리정제하여조골세포증식에미치는영향과표적분자를연구하게될것 이다
.
또한
,
본실험에서사인이외에생약에대한조골세포증식과분화촉진물질의검색은아직까지미비한상태이므 로향후에조골세포가관여하는골다공증등의치료약물 들의개발을위한기초연구로활용될수있을것이다
.
Table I.
Continued
Samples Survival
rate (%)
a122 Leonuri Herba
익모초0
123 Licii Radicis Cortex
지골피0
124 Ligustici Rhizoma
천궁0
125 Ligustri Fructus
여정실0
126 Lilii Bulbus
백합0
127 Linderae Ramulus
황매목0
128 Lini Semen
아마자(
아마인) 0
129 Lithosperrmi Radix
자초0
130 Longanae Arillus
용안육(
말린것) 0
131 Lonicerae Flos
금은화-1
132 Lonicerae Folium
인동0
133 Loranthi Ramulus
상기생0
134 Luffae Fructus Retinervus
사과락+2
135 Lycii Fructus
구기자+1
136 Lycopi Herba
택란0
137 Lygodii Spora
해금사0
138 Lysimachiae Foenumgraeci
Herba
영릉향0
139 Magnoliae Cortex
후박0
140 Magnoliae Flos
신이(
화) 0
141 Malvae Semen
동규자0
142 Massa Medicata Fermentata
신곡0
143 Maydis Stigma
옥촉서예(
옥발) 0
144 Melandrii Herba
왕불유행0
145 Meliae Cortex
고련피0
146 Meliae Fructus
천련자0
147 Melonis Calyx
과체0
148 Menthae Herba
박하0
149 Mori Folium
상엽0
150 Mori Fructus
상심자0
151 Mori Cortex Radicis
상백피0
152 Morindae Radix
파극천(
거심) 0
153 Moutan Cortex Radicis
목단피0
154 Mucunae Caulis
계혈등0
155 Mume Fructus
오매0
156 Myristicae Semen
육두구-1
157 Nardostachyos Rhizoma
감송향0
158 Nelumbinis Semen
연자육0
159 Nepetae Spica
형개-1
a
Final concentration: 20
µg/ml; +2> 150%, +1> 120%, 0=120- 80%, -1<80%, -2<50%.
Table II.
Survival rate of osteoblasts by each concentration of natural plants
Samples Concentration
a10 5
Alpiniae Semen (
익지인) +2 0
Amomi Semen (
사인) +3 0
Anemarrhenae Rhizoma (
지모) +2 0
Bambusae Folium (
죽엽) +1 0
Cannabis Semen (
마자인) +1 0
Dalbergiae odoriferae Lignum (
강진향) 0 0 Luffae Fructus Retinervus (
사과락) +1 0
a
Unit:
µg/ml, Survival rate : +3> 140%, +2> 130%, +1>
120%, 0> 100%.
Table III.
Osteoblasts differentiation by each concentration of natural plants
Samples Concentration
a20 10
Alpiniae Semen (
익지인) +1 0
Amomi Semen (
사인) +3 +1
Anemarrhenae Rhizoma (
지모) +2 0
Bambusae Folium (
죽엽) +2 0
Cannabis Semen (
마자인) +2 0
Dalbergiae odoriferae Lignum (
강진향) +1 0 Luffae Fructus Retinervus (
사과락) +1 0
a
Unit:
µg/ml. ALP activity : +3> 130%, +2> 120%, +1>
110%, 0> 100%.
결 론
생약
159
종의추출물로부터조골세포의증식과분화표지효소인
ALP
활성효과를조사하였다.
그결과Alpiniae Semen (
익지인), Amomi Semen (
사인), Anemarrhenae Rhizoma (
지모), Bambusae Folium (
죽엽), Cannabis Semen (
마자인), Dalbergiae odoriferae Lignum (
강진향), Luffae Fructus Retinervus (
사과락)
는150%
이상의조골세포증식촉진활성을나타내었다
. 감사의 글
본논문은
2008
학년도배재대학교교내학술연구신진교수연구비지원에의해서수행된결과로연구비지원에감 사드립니다
.
인용문헌
1. Roodman, G. D. (2004) Mechanisms of bone metastasis. N Engl J Med
350: 1655-1664.
2. Lorenzo, J., Horowitz, M., and Choi, Y. (2008) Osteoim- munology: interactions of the bone and immune system.
Endocr Rev
29: 403-440.
3. Ducy, P., Zhang, R., Geoffroy, V., Ridall, A. L. and Karsenty, G. (1997) Osf2/Cbfa1: a transcriptional activator of osteoblast differentiation. Cell
89: 747-754.
4. Komori, T. (2006) Regulation of osteoblast differentiation by transcription factors. J Cell Biochem
99: 1233-1239.
5. Kikuyama, A., Fukuda, K., Mori, S., Okada, M., Yamaguchi, H. and Hamanishi, C. (2002) Hydrogen peroxide induces apoptosis of osteocytes: involvement of calcium ion and caspase activity. Calcif Tissue Int
71: 243-248.
6. Linares, G. R., Xing, W., Govoni, K. E., Chen, S. T. and Mohan, S. (2009) Glutaredoxin 5 regulates osteoblast apo- ptosis by protecting against oxidative stress. Bone
44: 795- 7. Yasui, T., Uemura, H., Takikawa, M. and Irahara, M. (2003) 804.
Hormone replacement therapy in postmenopausal women. J Med Invest
50: 136-145.
8. Sasaki-Iwaoka, H., Maruyama, K., Endoh, H., Komori, T.,
Kato, S. and Kawashima, H. (1999) A trans-acting enhancer modulates estrogen-mediated transcription of reporter genes in osteoblasts. J. Bone Miner Res
14: 248-255.
9. Pan, W., Quarles, L. D., Song, L. H., Yu, Y. H., Jiao, C., Tang, H. B., Jiang, C. H., Deng, H. W., Li, Y. J., Zhou, H. H. and Xiao, Z. S. (2005) Genistein stimulates the osteoblastic dif- ferentiation via NO/cGMP in bone marrow culture. J Cell Biochem
94: 307-316.
10. Stein, G. S., Lian, J. B. and Owen, T. A. (1990) Relationship of cell growth to the regulation of tissue-specific gene expres- sion during osteoblast differentiation. FASEB J .
4: 3111-3123.
11. Lee, J. W., Kim, J. H., Kim, K., Jin, H. M., Lee, K. B., Chung, D. J. and Kim, N. (2007) Ribavirin enhances osteoclast for- mation through osteoblasts via up-regulation of TRANCE/
RANKL. Mol Cell Biochem
296: 17-24.
12. Kim, K. W., Suh, S. J., Lee, T. K., Ha, K. T., Kim, J. K., Kim, K. H., Kim, D. I., Jeon, J. H., Moon, T. C. and Kim, C. H.
(2008) Effect of safflower seeds supplementation on stim- ulation of the proliferation, differentiation and mineralization of osteoblastic MC3T3-E1 cells. J. Ethnopharmacol
115: 42- 13. Jeong, J. C., Lee, J. W., Yoon, C. H., Lee, Y. C., Chung, K. 49.
H., Kim, M. G. and Kim, C. H. (2005) Stimulative effects of Drynariae Rhizoma extracts on the proliferation and differ- entiation of osteoblastic MC3T3-E1 cells. J. Ethnopharmacol
96
: 489-495.
14. Yang, Q., Populo, S. M., Zhang, J., Yang, G. and Kodama, H.
(2002) Effect of Angelica sinensis on the proliferation of human bone cells. Clin Chim Acta
324: 89-97.
15. Yang, H. M., Shin, H. K., Kang, Y. H. and Kim, J. K. (2009) Cuscuta chinensis extract promotes osteoblast differentiation and mineralization in human osteoblast-like MG-63 cells. J.
Med Food
12: 85-92.
16. Fukui, H., Mitsui, S., Harima, N., Nose, M., Tsujimura, K., Mizukami, H. and Morita A. (2007) Novel functions of herbal medicines in dendritic cells: role of Amomi Semen in tumor immunity. Microbiol Immunol
51: 1121-1133.
17. Lee, J. H., Park, J. W., Kim, J. S., Park, B. H. and Rho, H. W.
(2008) Protective effect of Amomi semen extract on alloxan- induced pancreatic beta-cell damage. Phytother Res
22: 86- 90.
(2009년 7월 31일 접수)