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Copyright © 2021 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815

서 론

현대한국인을비롯한아시아인들의식품섭취경향은서구화 식습관으로인해비만

,

고혈압

,

뇌경색등의질병발생률이 증가하는추세이며어린아이들에게도소아비만이발생하여 조숙증으로이어진다

(Cho and Choi, 2010).

이러한성인병을 비롯한노화등을예방하기위해항산화생리기능성을 갖는천연생리활성물질에대한관심이점차높아지고있다

.

따라

,

·

식물을비롯한다양한생물유래천연생리활성 질에대한연구가활발히진행되고있다

(Cho and Choi, 2010;

Lee et al., 2016, 2020).

이러한생리활성물질에관한연구의 대부분은육상생물로부터많이이루어져왔는데연구대상

한계와환경오염등으로인하여최근에는특유의대사과정 독특한생육환경으로인하여다양한생리활성물질을가지 있는해양생물이육상생물의대체자원으로주목받고있다

(Byun and Kim, 2005; Lee, 2011; Hwang et al., 2013).

염생식물은해수와민물이공존하는바닷가해안사구혹은 습지등의염분의농도가계속해서변화하는독특한환경에서 염에내성을갖고생육하는식물이다

.

이러한식물들은염분 의한다양한스트레스를견딜있는방어체계를가지고 특이적인생리활성물질을내포할가능성이높다

.

염생식물 일종인갯씀바귀

(Ixeris repens)

쌍떡잎식물초롱꽃목 화과의여러해살이풀에속하며잎의길이와지름이

3-5 cm

염생식물이다

.

주로아시아해안사구와모래해변에서많이

갯씀바귀(Ixeris repens) 추출물의 항산화성 및 생리활성

김주성

1,2

·이연지

1

·김지윤

1

·최지원

1

·유선재

3

·김용태

1

*

1군산대학교 식품생명공학전공, 2중앙대학교 식품공학과, 3군산대학교 환경공학과

Comparison of Antioxidant and Physiological Activities in Various Solvent Extracts of Ixeris repens

Joo-Sung Kim1,2, Yeon-Ji Lee1, Ji-Youn Kim1, Ji-Won Choi1, Sun-Jae You3 and Yong-Tae Kim1*

1Department of Food Science and Biotechnology, Kunsan National University, Gunsan 54150, Korea

2Department of Food Engineering, Chung-Ang University, Anseong 17546, Korea

3Department of Environmental Engineering, Kunsan National University, Gunsan 54150, Korea

Ixeris repens is a type of halophyte that grows in high salinity sands found in coastal sand dunes and sandy shores.

This study was conducted to investigate the contents, antioxidant potency, and physiological activities of I . repens . In analyses of general composition, carbohydrate, protein, ash, and moisture content were 57.42%, 10.48%, 11.99% and 10.29%, respectively. Potassium, calcium, sodium, and magnesium were its most prevalent minerals. The solvents used to extract I . repens were 70% ethanol, 80% methanol, and distilled water. Among the resultant extracts, ethanol and methanol extracts displayed higher total polyphenol and flavonoid contents than the water extract. ABTS (IC50, 0.12 mg/mL) and FRAP (0.77 mM) radical scavenging activity were highest in the water extract, while methanol extract exhibited the strongest DPPH radical scavenging activity (IC50, 1.32 mg/mL), NO scavenging activity (IC50, 4.10 mg/mL), and reducing power (EC50, 0.14 mg/mL). Tyrosinase, elastase, and α-glucosidase inhibitory activities were highest in the ethanol extract. The ethanol extract also possessed the most potent acetylcholinesterase inhibitory activity. These results indicate that I . repens may be useful as an antioxidant, and a functional substance in food and pharmaceutical materials.

Keywords: Antioxidative activity, General component, Halophyte, Ixeris repens , Physiological activity

*Corresponding author: Tel: +82. 63. 469. 1824 Fax: +82. 63. 469. 7448 E-mail address: [email protected]

This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

Received 15 September 2021; Revised 17 October 2021; Accepted 18 October 2021 저자 직위: 김주성(대학원생), 이연지(대학원생), 김지윤(대학원생), 최지원(대 학원생), 유선재(교수), 김용태(교수)

https://doi.org/10.5657/KFAS.2021.0742

Korean J Fish Aquat Sci 54(5), 742-750, October 2021

(2)

분포하고있고

,

한국에서는

·

서해안제주도에서많이서식 하고있다

.

일반씀바귀는오래전부터뿌리와잎을나물의형태 식용하여왔다

(Yook, 1997).

주로김치나샐러드형태로 용되고

,

민간요법에서는건위

,

진정

,

소염제

,

식욕증진

,

이뇨

,

등의한약재로서이용되어왔으며

,

생즙은당뇨병이나간장 병과같은성인병치료에도사용하였다

(Lee et al., 2009).

씀바 귀에대해서는성분분석

(Soka, 1985; Seto et al., 1986),

항돌 연변이성

(Kim, 1995),

항암활성효과

(Kim et al., 2002b),

생리 활성

( Kim et al., 2002a)

쓴맛

(Lim, 1996)

등에대한연구가 보고되어있으나해안사구에서자라는갯씀바귀에대한항산화 생리기능성관련연구는미미한실정이다

.

따라서연구에서는수분이부족하고염분이다량함유된 해안사구에서식하는염생식물인갯씀바귀의항산화성 리기능성을구명하기위하여갯씀바귀를증류수

,

에탄올 탄올을용매로사용하여갯씀바귀추출물을제조하여이화학적 특성

,

항산화활성생리활성을비교분석하여항산화생리 기능성소재개발의기초자료로제공하고자하였다

.

재료 및 방법

실험 재료 및 시약

실험에사용된갯씀바귀

(Ixeris repens)

2020

6-7

청남도서천군연안에서채취하여실험실로운반한흐르는 물로수세하여염분과협잡물을제거한다음자연건조한 체를분쇄기

(FM700SS; Hanil, Seoul, Korea)

곱게분쇄하 추출물제조에사용하였다

.

항산화활성생리활성을측정 하기위하여

Folin-Ciocalteu’s reagent, gallic acid, quercetin, 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH), 2,2'-azino-bis(3-eth- ylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS), 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl, vitamin C, mushroom tyrosi- nase, 3,4-dihydroxy-L-phenylalamine (L-DOPA), kojic acid, angiotensin I-converting enzyme (ACE), hippuryl-his-leu (HHL) acetate salt, captopril, acetylcholinesterase (AChE), acetylthiocholine iodide (ATC), 5,5’-dithio-bis-2-nitrobenzoic acid (DTNB)

등은

Sigma-Aldrich Co. (St. Louis, MO, USA)

에서구입하여사용하였다

. Yeast α-glucosidase, ρ-nitrophenol- α-glucopyranoside

Wako Chemical Co. (Kanagawa, Japan)

에서구입하여사용하였다

.

밖의모든시약은분석용특급 약을구입하여사용하였다

.

일반성분 분석

갯씀바귀의일반성분은

AOAC

(AOAC, 1990)

따라 분함량은

105°C

상압건조법

,

조회분은

550°C

건식회화법

,

지방은

Soxhlet

추출법으로분석하였다

.

조단백질은

Kjeldahl

법을개량한방법인붕산에의한암모니아포집법에따라정량 하였다

.

탄수화물함량은고형분의총량에서수분

,

회분

,

단백질

지방의함량을값으로나타내었다

.

모든분석은

3

반복 측정하여평균값으로나타내었다

.

무기질 분석

시료의 무기질 함량은 군산대학교 친환경분석연구센터에 의뢰하여 유도결합 플라즈마방출분광기

(ICP-OES, iCAP- 7400DUO; Thermo Scientific Inc., Waltham, MA, USA)

석하였다

.

,

테프론분해용기에시료

0.3 g

취하여

10 mL

황산과질산혼합액

(1:1)

가한다음시료가완전히분해

때까지

Microwave digestion system

에서가열하였다

.

가열 분해한시료를증류수로최종

50 mL

정용한것을

0.45 μm membrane filter

여과한

,

이를유도결합플라즈마방출 광기로분석하였다

.

무기질의농도

(mg/100 g sample)

100 g

시료에대한

mg

으로환산하여나타내었다

.

갯씀바귀 추출물의 제조

갯씀바귀분말을각각

3

가지용매

(

증류수

, 70% ethanol, 80%

methanol)

사용하여갯씀바귀추출물을제조하였다

.

증류수

용매로사용한추출은갯씀바귀

50 g

증류수를시료

20

배의양을첨가하여

autoclave (121°C)

에서

3

시간동안 가열추출하였다

.

유기용매를사용한추출은

70% ethanol

80% methanol

추출용매로사용하여시료

50 g

추출용 매를시료대비

20

배의양으로첨가하여

25°C

에서

24

시간동안

shaking incubator (120 rpm)

에서추출하였다

.

용매별로 출한갯씀바귀추출물을원심분리기

(SUPRA 30K; Hanil)

에서 원심분리

(1,800 g, 30

)

하여상등액을여과지

(Whatman no.1)

여과한여액을회수하였다

.

얻어진각각의추출물을감압 농축하고

,

동결건조한후에

-20°C

냉동고에보관하면서각종 험에사용하였다

.

색도 측정

추출물의 색도는색차계

(JC801; Color Techno System Co., Ltd., Tokyo, Japan)

사용하여

L (

명도

), a (

적색도

)

b (

황색도

)

값을측정하였다

.

시료

3

반복하여측정한 평균값을나타내었다

.

측정사용한표준백색판

(calibration plate)

L

값이

96.5, a

값은

-0.13, b

값은

-0.05

이었다

.

총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량 측정

갯씀바귀추출물의폴리페놀함량측정은

Folin-Denis

약간변형한

Shetty et al. (1995)

방법에준하여수행하였

.

시료

(1 mL)

95%

에탄올용액

1 mL

증류수

5 mL

넣어혼합한

50% Folin-Ciocalteu reagent 0.5 mL

넣고 온에서

5

분간반응시켰다

.

여기에

5% Na

2

CO

3용액

1 mL

실온

암소에서

1

시간동안반응시킨분광광도계

(Opti-

zen Pop; KLAB, Seoul, Korea)

이용하여파장

725 nm

에서 흡광도를측정하였다

.

이때표준검량곡선은

gallic acid

표준 물질로사용하여시료의폴리페놀함량을산출하였고

gallic

(3)

acid equivalents (mg GAE/g extract)

나타내었다

.

플라보노이드함량은

Moreno et al. (2000)

방법을 변형하여아래와같이측정하였다

.

시료용액

(0.5 mL)

1.5 mL, 95%

에탄올를혼합한다음

0.1 mL, 10% aluminum nitrate

0.1 mL, 1 M potassium acetate

차례로가하여 합한실온에서

3

분간반응시킨다음증류수

2.8 mL

가하 혼합한실온에서

30

분간반응시킨파장

415 nm

에서 흡광도를측정하였다

. Quercetin

표준물질로사용하여동일 방법으로작성된표준곡선으로부터플라보노이드함량 으로환산하였고

, quercetin equivalents (mg QE/g extract)

나타내었다

.

항산화 활성 측정

ABTS

라디칼소거활성은

ABTS radical decolorization as- say (Re et al., 1999)

방법을이용하여측정하였다

. 7.4 mM

ABTS

2.6 mM potassium persulfate

동량혼합하여실온

암소에서

24

시간동안방치하여

radical

형성시킨다음 직전에

ABTS

용액을

734 nm

에서흡광도가

1.000±0.030 (mean±SD)

되도록

phosphate-buffered saline (pH 7.4)

희석하여사용하였다

.

추출물

50 μL

ABTS

용액

950 μL

첨가하여암소에서

10

분간반응시킨

734 nm

에서흡광도 측정하여계산식

, ABTS

라디칼소거활성

(%)=[(Control

734

- Sample

734

)/Control

734

]×100

의하여 활성을 산출하였다

. IC

50

value (half maximal inhibitory concentration value)

50%

ABTS

라디칼소거활성을나타내는시료의농도

(mg/

mL)

정의하였다

.

시료의 산화방지 활성을 측정하기 위하여 자유라디칼인

DPPH

사용한라디칼소거활성의측정은

Lee et al. (2017)

방법에따라측정하였다

.

시료액

(1.5 mL)

동량의

0.4 mM DPPH radical ethanolic solution (1.5 mL)

혼합하고

, 37°C

30

분간반응시킨

,

파장

516 nm

에서흡광도를측정하였

. DPPH

라디칼소거활성은 아래의계산식

, DPPH

라디칼 소거활성

(%)=[(Control

517

-Sample

517

)/Control

517

]×100

의하 활성을산출하였으며

, IC

50

value (mg/mL)

50%

DPPH

소거활성을나타내는시료의농도

(mg/mL)

정의하였다

.

,

대조구는

(Control

517

)

시료용액대신이온수를가하여 측정한흡광도를나타내었다

.

시료의아질산염소거활성은

1 mM NaNO

2용액

1 mL

소정농도의시료

1 mL

첨가하 여기에

0.1 N HCl (pH 1.2)

용액을사용하여반응용액의

pH

각각

1.2

조정한다음반응용액의부피를

10 mL

하였

.

이렇게다음

37°C

에서

1

시간반응시켜얻은반응용액을 각각

1 mL

취하고여기에

2%

초산용액

5 mL

첨가한다음

Griess

시약

(30%

초산으로각각조제한

1% sulfanilic acid

1% naphthylamine

1:1

혼합

) 0.5 mL

가하여혼합시 다음실온에서

15

분간방치시킨분광광도계를사용하여

520 nm

에서흡광도를측정하여잔존하는아질산량을구하였

.

대조구는

Griess

시약대신증류수를

0.5 mL

가하여상기 동일하게행하였다

.

아질산염소거작용은시료를첨가한 우와첨가하지않은경우의백분율로나타내었다

.

아질산염 거활성

(%)=[1-(A-C)/B]×100, (A, 1 mM nitrite

용액에시료 첨가한흡광도

; B, 1 mM nitrite

용액의흡광도

; C,

시료의 광도

). IC

50

value (mg/mL)

50%

아질산염소거활성을 타내는시료의농도

(mg/mL)

정의하였다

.

환원력

(reducing power)

Oyaizu (1988)

방법을일부 정한

Lee et al. (2017)

방법으로측정하였다

.

시료용액

(1 mL)

1 mL

0.2 M sodium phosphate

완충액

(pH 6.6)

1 mL

1% (w/v) potassium ferricyanide

차례로가하여 혼합한

, 50°C

항온수조에서

20

동안반응시켰다

.

응액에

1 mL

10% (w/v) trichloroacetic acid (TCA)

가하 반응을정지시킨

,

원심분리

(1,890 g, 10

)

하였다

.

상층

1.5 mL

1.5 mL

증류수

0.3 mL

0.1% (w/v) ferric chloride

용액을혼합하여

, 10

동안실온에서정치한

,

파장

700 nm

에서흡광도를측정하여환원력으로나타내었으며

,

광도가높을수록환원력이것을의미한다

. EC

50

value (half maximal effective concentration value)

흡광도값이

0.5

나타내는시료의농도

(mg/mL)

정의하였다

.

FRAP (ferric reducing antioxidant power)

의한환원력 정은

Benzie and Strain (1996)

방법을사용하여 측정하였

. 300 mM acetate buffer (pH 3.6), 40 mM HCl

용해한

10 mM TPTZ (2,4,6-tripyridyl-s-triazine)

20 mM FeCl

3

·6H

2

O

각각

10:1:1 (v/v/v)

비율로혼합하여

FRAP

시약을제조 하였다

.

이어서여러가지농도의시료액

0.15 mL

3.0 mL

FRAP

시약을혼합하여

37°C

에서

5

분간반응시킨

593 nm

에서 흡광도를 측정하였다

. FeSO

4

·7H

2

O

표준물질로사용 하여동일한방법으로얻은표준검량선으로부터

FRAP valve (mM)

계산하였다

.

Tyrosinase 저해활성 측정

시료용액의

tyrosinase

저해활성은

Iida et al. (1995)

법을다소수정하여다음과같이측정하였다

. 300 μL

시료용 액은

900 μL

mushroom tyrosinase (50 Unit/mL)

1.5 mL

50 mM phosphate buffer (pH6.8)

혼합하여실온에서

30

동안단계반응을실시한

, 300 μL

10 mM L-DOPA

용액을가하여

,

파장

475 nm

에서

20

동안

1

간격으로

성되는

dopachrome

흡광도를모니터링하면서측정하였다

.

Tyrosinase

저해활성

(%)

다음

, Tyrosinase inhibitory ac- tivity (%)=[(Control

475

-Sample

475

)/Control

475

]×100

통하여 계산하였다

.

여기서대조구

(Control

475

)

시료대신증류수를 가하여측정한흡광도를의미하였다

.

Elastase 저해활성 측정

Elastase

저해활성은

Kraunsoe et al. (1996)

방법에따라 정하였다

.

, 50 mM Tris-HCl buffer (pH 8.2) 90 μL

시료

(4)

10 μL

elastase (1 unit/mL) 50 μL

넣고혼합한실온 에서

10

분간정치한다음기질인

0.5 mM N-succinyl-Ala-Ala- Ala-p-nitroaniline 50 μL

첨가하여파장

415 nm

에서

20

1

간격으로흡광도를측정하였다

. Elastase

저해활성은 음의

, Elastase inhibition activity (%)=[1-S(OD

20 min

-OD

0 min

) /C(OD

20 min

-OD

0 min

)]×100

으로계산하였다

(S,

시료첨가구의 흡광도

; C,

시료대신

DW

첨가구의흡광도

).

α-Glucosidase 저해활성 측정

시료의

α-glucosidase

저해활성은

Watanabe et al. (1997)

chromogenic assay

법에 따라

ρ-nitrophenol glucoside

이용하여 측정하였다

. Yeast α-glucosidase

반응용액

(100 mM phosphate buffer, pH 7.0, 0.2% bovine serum albumin

0.02% NaN

3

)

녹여

0.7 U/mL

제조하여효소용액으로 사용하였고

,

기질용액은

ρ-nitrophenyl-α-glucopyranoside (5 mM)

동일한반응용액에녹여서제조하였다

.

반응은효소용

100 μL

시료용액

20 μL

well

넣고혼합하여

405 nm

에서흡광도

(time zero)

측정하였다

.

실온에서

5

분간

incu- bation

다음

,

기질용액

100 μL

첨가하여실온에서

5

분간

incubation

흡광도를측정하여증가된흡광도변화를

산하였다

.

이때실험의대조군으로는

α-glucosidase

저해제로 알려진

acarobose

사용하였다

.

효소활성의저해정도는다음

, α-glucosidase inhibitory activity (%)=[1-(Sample

405

/Con- trol

405

)]×100

따라산출하였으며

, control

시료무첨가구 흡광도변화값을나타내었다

.

AChE 저해 활성 측정

시료의

AChE

저해활성은

Ellman (1961)

방법을다소

수정하여측정하였다

. 96 well plate

100 mM phosphate buf- fer (pH 8.0) 50 μL,

시료용액

25 μL, AChE (0.25 Unit/mL) 25 μL

첨가하여혼합한실온에서

10

분간정치한다음

, 10 mM DTNB 125 μL

75 mM acetythiocholine iodide 25 μL

첨가하여파장

412 nm

에서

10

분간흡광도를측정하여 증가된흡광도변화를계산하였다

.

효소활성의저해정도는

, Acetylcholinesterase inhibitory activity(%)=[100-(ST/

CT)]×100

같이산출하였다

(ST,

시료존재하에서의반응속

; CT,

시료무첨가구의초기반응속도

).

통계처리

실험결과는

SPSS 22.0 package program (SPSS Inc., Chi- cago, IL, USA)

으로통계처리하여

3

측정한값의평균

±

준편차로 나타내었다

.

시료간의유의성검정은분산분석

(ANOVA)

P<0.05

수준에서

Duncan’s multiple range test

따라분석하여시료유의적차이를검증하였다

.

결과 및 고찰

갯씀바귀의 일반성분 및 무기질 함량

갯씀바귀의일반성분분석결과는

Table 1

같다

.

시료는 부안군해안가에서채취하여수세한다음자연건조하여 쇄기로곱게분쇄하여일반성분분석에사용하였다

.

결과

,

씀바귀의수분함량은

10.29%,

조단백질은

10.84%,

조지방은

9.46%,

조회분은

11.99%,

탄수화물은

57.42%

나타났다

.

생식물의경우일반적으로탄수화물을제외하고조회분함량이 높지만조지방함량은적은것으로알려져있으나

(Yang, 2011),

갯씀바귀의경우조회분

,

조단백질조지방함량은차이가

Table 3. Comparison of the extraction yields and color values of various solvent extracts from Ixeris epens

Sample Yield (%) Color value

Lightness (L) Redness (a) Yellowness (b)

70% EtOH extract 33.76 67.43±0.07b,1,2 15.41±0.06a 82.97±0.13a

80% MeOH extract 33.82 74.11±0.03a 12.72±0.02c 52.96±0.02c

Water extract 32.77 64.60±0.07c 14.59±0.04b 63.03±0.02b

1Value are mean±SD (n=3). 2Means with different letters in a column are significantly different at P<0.05 by Duncan's multiple range test.

Table 1. Proximate composition of Ixeris repens (%)

Sample Moisture Ash Crude protein Crude lipid Carbohydrate

Ixeris repens 10.29±0.141 11.99±0.03 10.84±0.02 9.46±1.22 57.42±1.07

1Values are mean±SD (n=3).

Table 2. Mineral contents of Ixeris repens (mg/100 g)

Sample Na Mg Ca Mn Fe Cu Zn K

Ixeris repens 343.63±13.401 320.40±9.06 571.98±41.13 8.56±0.21 5.57±0.09 0.54±0.02 3.38±0.08 2255.11±123.20

1Values are mean±SD (n=3).

(5)

없이유사한것으로확인되었다

.

갯씀바귀의무기질함량을 석한결과는

Table 2

나타내었다

.

갯씀바귀

100 g

함유되어 있는나트륨

(Na),

마그네슘

(Mg),

칼슘

(Ca),

망간

(Mn),

(Fe),

구리

(Cu),

아연

(Zn)

칼륨

(K)

함량을분석한결과

,

칼륨이

2,255.11 mg/100 g

으로가장높은함량을나타내었다

.

두번째 높은함량은칼슘으로

571.98 mg

이고

,

세번째이하는나트

343.63 mg,

마그네슘

320.40 mg,

망간

8.56 mg,

5.57 mg,

아연

3.38 mg,

구리

0.54 mg

순으로나타났다

.

염생식물은

,

사구내륙의염습지의염분이풍부한땅에서자라는 염성식물로각종미네랄이다량함유되어있는것으로알려 있다

. Yang (2011)

염생식물의종류에따라염도미네 함량차이가크지만

,

육상식물에비해전체적으로나트륨 량이높고칼륨

,

칼슘마그네슘등의미네랄함량이높게 타나는것으로보고하였다

.

갯씀바귀의무기질함량측정결과

, Yang (2011)

보고와유사하게칼륨

,

칼슘

,

나트륨마그네 함량이다른미네랄함량보다월등히많이함유되어있는 으로확인되었다

.

갯씀바귀 추출물의 수율 및 색도

갯씀바귀에함유되어있는생리활성물질유용성분을대량 획득하기위해

70% EtOH, 80% MeOH

증류수를추출 매로사용하여각각의갯씀바귀추출물을제조하였다

.

갯씀바 추출물의수율색도측정결과는

Table 3

같다

. EtOH

사용한갯씀바귀추출물의수율은

33.76%, MeOH

사용

경우에는

33.82%,

증류수를사용한고온고압추출조건에서

32.77%

나타났다

.

용매에따른갯씀바귀추출물의 율을비교하면추출용매에따른차이는없는것으로확인되었

.

갯씀바귀추출물의색도를비교

·

분석한결과

,

명도를나타 내는

L (lightness)

값의경우

EtOH

추출물과증류수추출물의 경우각각

67.43

64.60

으로낮은경향을나타냈으나

, MeOH

추출물은

74.11

3

가지추출물가장높은값을보였으며

,

첨가량간에유의적인차이를보였다

(P<0.05).

적색도를 타내는

a (redness)

값은

EtOH

추출물이

15.41

가장높았고

, MeOH

추출물이

12.72

가장낮았다

.

또한황색도를나타낸

b (yellowness)

값은

MeOH

추출물이

52.96

으로가장낮았으나

, EtOH

증류수추출물은

82.97

63.03

으로높은값을나타 내었다

.

이러한결과는해조류추출물제조추출방법 용매에따라해조류에함유되어있는다양한천연색소 리활성물질의용출유무용출양의차이에따라추출물의

색도에영향을미친다는보고와일치하는것으로생각된다

(Lee

et al., 2017, 2020).

갯씀바귀 추출물의 총 폴리페놀 및 총 플라보노이드 함량

갯씀바귀추출물제조추출용매를달리한추출물들의 폴리페놀플라보노이드함량을측정한결과는

Table 4

같다

.

갯씀바귀를

70% EtOH

추출한갯씀바귀추출물의

폴리페놀함량은

56.57 mg GAE/g

이고

, 80% MeOH

갯씀바귀 추출물은

62.36 mg GAE/g,

증류수갯씀바귀추출물은

49.08 mg GAE/g

확인되었다

.

,

갯씀바귀추출물의폴리페놀 량은

MeOH>EtOH>

증류수추출물순으로폴리페놀함량 높게나타났다

. Yang (2011)

서해안지역에서자생하는

28

종의염생식물에관한연구에의하면염생식물의종류에 폴리페놀함량이

11.7-145.6 mg GAE/g

것으로알려져 있다

.

중에서해당화가

145.6,

갯질경

117.5,

비쑥

96.5,

씀바

59.7 mg GAE/g

으로높은폴리페놀을함유하고있는것으 보고되어져있다

(Yang, 2011).

이와같이염생식물이일반 육상식물보다페놀성화합물의함량이높은경향을나타내는 것은염생식물이고염환경에서염스트레스에적응하고자신 보호하려는목적으로페놀성화합물과같은기능성이우수

2

대사산물을다량함유하고있기때문인것으로추정되 있다

(Yang, 2011).

한편

,

플라보노이드는주로

anthocyani- dins, flavonols, flavones, cathechins

flavanones

등으로 성되어있고구조에따라특정플라보노이드는항산화 양한생리활성을갖고있는것으로알려져있다

(Middleton and Kandaswami, 1994).

각종용매에따라추출한갯씀바귀추출 물의플라보노이드함량을측정한결과

, 70% EtOH

추출물

80% MeOH

추출물은각각

113.85 mg QE/g

102.05 mg QE/g

으로높은플라보노이드함유량을나타냈으나

,

증류수 출물은

69.40 mg QE/g

으로다른추출용매에비하여상태적으 낮은함유량을나타내었다

.

따라서갯씀바귀추출물제조 추출용매에따른플라보노이드함량은추출용매에따라 의적인차이가있는것으로생각된다

.

염생식물갯메꽃

,

래지치

,

순비기나무해당화의잎과줄기의플라보노이드 함량은

14.7-38.1

2.56-6.6 mg QE/g

으로염생식물의잎에 높은플라보노이드를함유하고있는것으로알려져있다

(Kim and Cha, 2017).

따라서갯씀바귀의플라보노이드 량을

4

종의염생식물과비교해보면갯씀바귀의플라보노 이드함량이월등히높은것으로나타났다

.

갯씀바귀 추출물의 항산화 활성

갯씀바귀추출물의추출용매에따른항산화활성을비교하

Table 4. Total polyphenol and flavonoid contents of various sol- vent extracts from Ixeris repens

Sample Total polyphenol

(mg GAE/g)1 Total flavonoid (mg QE/g)2 70% EtOH extract 56.57±1.17b,3,4 113.85±6.67a 80% MeOH extract 62.36±1.18a 102.05±2.16b Water extract 49.08±1.26c 69.40±2.44c

1GAE, gallic acid equivalent mg/g. 2QE, quercetin equivalent mg/g. 3Values are mean±SD (n=3). 4Means with different letters in a column are significantly different at P<0.05 by Duncan's multiple range test.

수치

Table 3. Comparison of the extraction yields and color values of various solvent extracts from Ixeris epens
Table 4. Total polyphenol and flavonoid contents of various sol- sol-vent extracts from Ixeris repens
Table 5. Antioxidant activities of various solvent extracts from Ixeris repens
Table 6. Tyrosinase and elastase inhibitory activities of various sol- sol-vent extracts from Ixeris repens

참조

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