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류마티스 관절염에서 혈관형성 Angiogenesis in Rheumatoid Arthritis

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Vol. 8, No. 4, December, 2001

류마티스 관절염에서 혈관형성

전남대학교 의과대학 내과학교실*, 가톨릭대학교 의과대학 내과학교실

이신석*・조철수

─A b s t r a c t─

Angiogenesis in Rheumatoid Arthritis

Shin-Seok Lee, M.D.*, Chul-Soo Cho, M.D.

Department of Internal Medicine, Chonnam National University Medical School*, Kwangju, Korea, Department of Internal Medicine, Center for Rheumatic Diseases in Kangnam St. Mary’s hospital,

The Catholic University of Korea, Seoul, Korea

Rheumatoid arthritis (RA) is characterized by synovial cell hyperplasia and the overgrowth of a fibrovascular granulation tissue, known as pannus, which proliferates like tumor cells and destroys cartilage and bone within the joint.

Since neovascularization is necessary for the continual proliferation of synovial tissue, it is believed to play an important role in the development and progres- sion of RA. Angiogenesis in the inflamed joints represents the net balance between the effects of angiogenic and anti-angiogenic factors. A number of angiogenic factors have been described in RA, of which vascular endothelial growth factor (VEGF) and basic fibroblast growth factor are the most potent.

In RA, high levels of VEGF are present in synovial fluid and synovial tissue, which is produced by cells near endothelial cells and acts on endothelial cells via interaction with its receptors. VEGF is induced by hypoxia, which may occur in the inflamed joint. Not only do cytokines like interleukin (IL)-1β, IL-6, and T G F -βinduce fibroblast expression of VEGF, but so does engagement of CD40 ligand. Recently, specific inhibition of VEGF by soluble receptor, sflt-1, and by

<접수일 : 2001년 7월 3일, 심사통과일 : 2001년 11월 5일>

※통신저자 : 조 철 수

서울특별시 서초구 반포동 505

가톨릭대학교 강남성모병원 류마티스내과

Tel : 02) 590-2708, Fax : 02) 533-8450, E-mail : [email protected]

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서 론

혈관형성( a n g i o g e n e s i s )은 상처 치유, 월경 황체 의 형성과 같은 생리적인 기능을 유지하는데 반드시 필요할 뿐 만 아니라 종양 발생, 류마티스 관절염의 판누스(pannus) 형성과 같은 병리현상의 발생에도 중요한 역할을 한다1 - 3 ). 류마티스 관절염은 활막조직 의 비후와 증식을 특징으로 하는 만성 염증성 질환 으로 활막조직이 마치 종양세포처럼 증식하여 관절 내 연골과 골조직을 파괴시킨다4 ). 류마티스 관절염 에서 활막조직이 계속해서 증식하기 위해서는 무엇 보다 혈관형성을 필요로 하기 때문에 류마티스 관절 염의 발생과 그 진행에 있어 혈관형성이 중요한 역 할을 한다고 볼 수 있다. 실제로 관절염의 여러 동물 모형에서 혈관형성을 억제하는 물질을 투여하면 관 절염의 발생이 억제되고 이미 발생된 관절염에서는 판누스의 형성이 감소되어 관절염이 호전된다5 , 6 ). 이 러한 사실들은 혈관형성이 류마티스 관절염에서 상 당한 역할을 할 것이라는 것을 짐작케 한다.

일반적으로 정상 상태에서는 혈관형성을 유발하는 인자들에 비해 억제하는 인자들이 많기 때문에 혈관 형성이 억제되어 있지만, 류마티스 관절염과 같은 염 증상태에서는 혈관형성을 억제하는 인자들에 비해 유 발하는 인자들이 상대적으로 많아 혈관형성이 유도되 는 것으로 본다7 - 9 )(표 1). 류마티스 관절염과 관련이 있는 혈관형성 유발인자들로 여러 가지가 알려져 있 지만 그 가운데 basic & acidic fibroblast growth factor (bFGF & aFGF)1 0 , 1 1 )

, vascular endothe- lial growth factor (VEGF)1 2 , 1 3 )

, hepatocyte growth factor (HGF)1 4 , 1 5 ) 등이 다른 유발인자들에 비해 많은 연구가 되어져 있고 상대적으로도 중요한 것으로 되어 있다. 이들은 류마티스 관절염의 활막조 직에 많이 존재하는 혈관내피세포와 대식세포에서 유

리되어 세포외기질의 헤파린과 황산헤파란( h e p a r a n s u l f a t e )에 부착되어 있다가 혈관형성이 이루어지면 endothelial-derived heparanase와 플라즈민에 의 해 분리되어 작용을 나타낸다. 이들 외에 헤파린에 부착되지 않는 혈관형성 유발인자들로 p l a t e l e t - derived growth factor (PDGF)1 6 , 1 7 ), platelet- derived endothelial cell growth factor (PD- E C G F )1 8 , 1 9 ), epidermal growth factor (EGF)2 0 ), insulin-like growth factor (IGF)2 1 ), trans- forming growth factor-β( T G F -β)2 2 ) 등이 있고, tumor necrosis factor-α( T N F -α)2 3 ), inter- leukin-1 (IL-1)2 4 ), IL-82 5 ), IL-152 6 )와 같은 사이토 카인들도 혈관형성에 관여한다.

류마티스 관절염에서 혈관형성을 억제하는 것으로 알려져 있는 인자들로는 T G F -β, IL-1α, IL-1β, IL-4, IL-6, IL-12, interferon-γ( I F N -γ), IFN- α, leukemia inhibitory factor 등이 있고2 7 - 3 0 )

m e t h o t r e x a t e와 s u l f a s a l a z i n e과 같은 항 류마티 스 약물들도 혈관형성을 억제하는 작용이 있는 것으 로 보고되고 있다3 1 , 3 2 )

.

혈관형성 유발인자들

류마티스 관절염과 관련되어 가장 많은 연구가 이 루어져 있고 상대적으로 다른 혈관형성 유발인자들에 비해 중요한 역할을 하는 혈관형성 유발인자는 V E G F이다. bFGF와 a F G F는 종양과 관련되어 널 리 알려져 있는 혈관형성 유발인자들 인데 류마티스 관절염에서는 이들 유발인자들이 활막조직에서 발견 된다는 보고도 있지만 전혀 발견되지 않는다는 보고

도 있다7 , 1 1 ). HGF, PDGF, PD-ECGF와 같은 유발

인자들이 류마티스 관절염 환자에서 발견되기도 하지 만 어떤 자극에 의해 이들 유발인자들이 발현이 되고 어떤 경로를 통해 혈관형성이 이루어지는지 V E G F anti-VEGF monoclonal antibody has been shown to attenuate collagen-induced arthritis in mice, supporting the major role of VEGF in promoting angiogenesis.

Efforts are currently targeted at inhibiting angiogenic factors in RA.

Key Words : Angiogenesis, Rheumatoid arthritis, Vascular endothelial growth f a c t o r

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만큼 연구되어진 유발인자가 없다. 따라서 본 소고에 서는 V E G F를 중심으로 기술해보고자 한다.

Vascular permeability factor (VPF), 또는 v a s c u l o t r o p i n으로 알려져 있는 V E G F는 A, B, C, D, E 다섯 가지 형태가 있고 이 중 V E G F - A가 가장 강력한 혈관형성 유발인자이다3 3 ). 나머지는 V E G F - A 에 비해 혈관형성 능력이 떨어지고 비교적 최근에 밝 혀진 탓으로 많은 것이 알려져 있지 않다3 4 - 3 6 )

. 일반적 으로 V E G F라고 할 때에는 V E G F - A를 의미하는데 V E G F - A는 하나의 유전자로부터 전사되는 과정에 다시 네가지( V E G F - A1 2 1 , 1 6 5 , 1 8 9 , 2 0 6 )

로 나뉜다. 조직이나 세포의 종류에 따라 주로 나타나는 V E G F - A의 i s o- f o r m이 다른데 그 중 V E G F - A1 6 5가 가장 흔한 것으

로 되어있다3 7 ).

V E G F는 다른 혈관형성 인자들과 달리 혈관주위 에 있는 세포들에서 생성되어 혈관내피세포에 선택 적으로 작용한다. 혈관내피세포에는 여러 종류의 VEGF 수용체가 있는데 F L T - 1은 V E G F - A와, F L K - 1은 VEGF-A 또는 V E G F - C와, FLT-4는 V E G F - C와 각각 결합한다3 8 ).

V E G F의 가장 중요한 역할은 혈관내피세포를 증 식시키고 내피세포의 자사( a p o p t o s i s )를 억제시키는

것이다3 9 ). 혈관 내 VEGF 농도가 일정 수준 이하로

떨어지게 되면 혈관내피세포의 자사가 일어나 내피 세포가 혈관 내로 떨어져 나오고 마침내는 혈관을 막게 되어 혈관이 사라지게 된다4 0 ). 또한 m a t r i x Table 1. Angiogenic mediators and inhibitors in rheumatoid arthritis

M e d i a t o r s I n h i b i t o r s

Growth factors Basic & acidic fibroblast growth factor (bFGF, aFGF) Transforming growth factor-β( T G F -β) * Vascular endothelial growth factor (VEGF)

Hepatocyte growth factor (HGF) Platelet-derived growth factor (PDGF)

Platelet-derived endothelial cell growth factor (PD-ECGF) Epidermal growth factor (EGF)

Insulin-like growth factor-1 (IGF-1) Transforming growth factor-β( T G F -β) *

C y t o k i n e s Tumor necrosis factor-α( T N F -α) I n t e r l e u k i n - 1α( I L - 1α) * I n t e r l e u k i n - 1β( I L - 1β) * Interleukin-4 (IL-4)

Interleukin-6 (IL-6)* Interleukin-6 (IL-6)*

Interleukin-15 (IL-15) I n t e r f e r o n -α,γ( I F N -α,γ)

C h e m o k i n e s Interleukin-8 (IL-8) Platelet factor 4 (PF4)

Epithelial-neutrophil activating protein-78 (ENA-78) I n t e r f e r o n -γ-inducible protein-10 (IP-10) Growth-related gene product α( G r oα) Monokine induced interferon-γ( M I G )

Matrix molecules Type I collagen RGD sequence

Fibronectin, laminin T h r o m b o s p o n d i n

Heparin, heparan sulfate

P r o t e o l y t i c Matrix metalloproteinases Metalloproteinase inhibitors

e n z y m e s / i n h i b i t o r s Plasminogen activators Plasminogen activator inhibitors

Adhesion molecules β1 , 3i n t e g r i n s RGD sequence

soluble E-selectin

soluble Vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1) E n d o g l i n

CD-31 (platelet-endothelial cell adhesion molecule)

O t h e r s A n g i o g e n i n Some antirheumatic drugs

Some antibiotics

*May be angiogenic or angiostatic under different conditions.

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m e t a l l o p r o t e i n a s e와 plasminogen activator의 생성을 증가시켜 혈관내피세포를 이동시킨다4 1 ). V E G F의 또 다른 역할은 유창 모세혈관( c a p i l l a r y f e n e s t r a t i o n )을 만들고 세포간 간격을 넓힘으로써 혈장 단백과 혈액 응고인자들이 혈관 밖으로 빠져나 가게 한다4 2 ). 이런 작용으로 암 환자에서는 악성 복 수와 흉수가 발생하고 류마티스 관절염에서는 관절 종창이 생기게 된다.

류마티스 관절염 환자에서는 활막표면세포( s y n- ovial lining cell)와 대식세포에서 VEGF mRNA 의 발현이 증가되어 있다1 3 , 4 3 )

. 활막조직을 면역조직 화학법( i m m u n o h i s t o c h e m i s t r y )으로 염색하여 관 찰하면 혈관주위의 대식세포와 섬유모세포, 그리고 활막표면세포에 VEGF 단백이 많이 나타나고4 4 ), 혈 관내피세포에서는 VEGF 수용체인 F L T 1과 F L K 1 의 m R N A가 발현된다. 이러한 소견을 보면 V E G F 는 활막표면세포와 대식세포에서 만들어져 혈관내피 세포에 있는 VEGF 수용체에 결합하여 류마티스 관 절염에서 혈관형성을 유발한다고 볼 수 있다.

류마티스 관절염 환자에서 V E G F는 관절조직 뿐 아니라 활액 내에 많은 양이 존재한다. Fava 등1 3 )은 1 0명의 류마티스 관절염 환자에서 활액 내 V E G F 농도가 다른 관절염 보다 증가되어 있고, 활막 대식 세포에서는 VEGF mRNA의 발현이 증가되어 있 다고 보고하였다. Koch 등4 3 )도 1 5명의 류마티스 관 절염 환자에서 활액 내 VEGF 농도가 증가되어 있 다고 하였다. 최근 Paleolog 등4 5 )은 류마티스 관절 염 환자의 혈청에서 VEGF 농도가 증가되어 있고 항 T N F -α단일클론성 항체에 의해 VEGF 농도가 감소된다고 하였다. 99명의 류마티스 관절염 환자들 을 대상으로 한 저자들의 연구에서도 활액 내 VEGF 농도가 골관절염 환자에 비해 증가되어 있었 고 혈청 VEGF 농도 역시 골관절염 환자와 대조군 에 비해 증가되어 있었다4 6 ). 또한 혈청 V E G F는 적 혈구 침강속도, C-반응단백과 유의한 상관관계를 보 여 류마티스 관절염의 활성도를 반영하는 유용한 지 표인 것으로 보고하였다.

V E G F는 I L - 1β4 7 ), IL-64 8 ), TGF-β4 9 )와 같은 사이 토카인들과 b F G F5 0 ), PDGF5 1 ), EGF5 2 )와 같은 성 장인자들에 의해 합성이 유도된다. TNF-α는 조건에 따라 V E G F의 합성을 유도하기도 하고 억제하기도 하는데 혈액에서 분리한 단핵구에서는 VEGF 합성

이 유도되는 반면 활막 섬유모세포에서는 VEGF 합 성이 유도되지 않는다5 3 - 5 5 )

. TNF-α는 혈관 내피세포 에 있는 VEGF 수용체를 하향조절하여 혈관형성을 억제하기도 한다5 6 ).

V E G F는 사이토카인과 관계없이 저산소증에 의해 서도 합성이 증가되는데 류마티스 관절염에서는 관 절 내 염증과 관절종창으로 인한 혈류장애로 산소농 도가 감소되어 있어 V E G F의 합성이 증가된다

5 4 , 5 7 , 5 8 )

. 저산소증은 I L - 1β, TGF-β와 같은 사이토카 인들과 함께 활막세포의 VEGF 합성을 서로 상승적 으로 증가시킨다. 저산소증에 의한 V E G F의 발현은 hypoxia-inducible factor 1 (HIF-1)에 의해 매 개되는데 저산소증에 의해 유도된 H I F - 1이 e r y- thropoietin enhancer와 결합하여 h y p o x i a response element를 구성하고 V E G F의 전사를 일

으킨다5 9 - 6 1 ). HIF-1외에 S P 1과 A P 1를 통해서도

V E G F의 합성이 유도된다는 보고도 있다.

저자들은 V E G F의 합성이 저산소증과 I L - 1β, T G F -β와 같은 사이토카인들에 의해 유도되는 경로 외에 활성화된 T 세포에서 발현된 CD40 ligand ( C D 4 0 L )와 활막 섬유모세포의 C D 4 0의 결합에 의 해서도 유도된다는 것을 밝힌 바 있다6 2 ). 또한 C D 4 0 L와 I L - 1β, TNF-α, TGF-β와 같은 사이토카 인을 함께 처치하면 V E G F의 합성이 상가적으로 증 가하고, CD40 결합에 의한 V E G F의 합성은 일부 N F -κB를 통해서 이루어짐을 알 수 있었다. 이러한 사실은 관절강내에 T 세포와 활막세포간에 c r o s s - talk 가 있음을 나타내는 소견으로, 활성화된 T 세 포는 C D 4 0 L를 통하여 활막세포를 자극하고, 이들 세포로부터 VEGF 가 증가됨으로서 주변에 새로운 혈관생성이 일어나게 된다. 이러한 신생혈관을 통하 여 T 세포를 비롯한 염증세포가 더욱더 유입됨으로 서 활막염이 심해지는 positive amplification loop 이 존재함을 알 수 있다.

말초혈액 단핵구에서 V E G F의 합성은 사람에 따 라 정도의 차이가 있는 것으로 보아 T N F -α처럼 V E G F의 합성도 유전적으로 조절될 가능성이 높다

6 3 ). 최근 V E G F의 p r o m o t o r와 5’UTR region에

1 5개의 유전자 다형성( p o l y m o r p h i s m )이 있고 이 들 가운데 일부가 V E G F의 과다합성과 관련이 있다 는 보고가 있다6 4 ). 그러나 실제 류마티스 관절염 환 자와 정상 대조군을 비교한 연구에서는 두 군간에

(5)

서로 유의한 유전자형( g e n o t y p e )의 차이가 없고 특 정 유전자형과 VEGF 합성의 정도도 서로 관계가

없었다6 5 ).

혈관형성 억제인자들

혈관형성을 억제하는 물질들은 대부분 우리 신체 에서 흔히 볼 수 있는 거대 단백질에서 유래된다. 여 기에 속 하 는 것 들 로 는 t h r o m b o s p o n d i n , fibronectin, 2형 콜라겐의 propeptide, platelet factor IV, EGF의 분절, prolactin의 16 kDa 분 절, angiostatin 등이 있다.

T h r o m b o s p o n d i n이 혈관형성을 억제한다는 것은 immortalized hamster cell line에서 종양억제 유 전자의 소실로 신생혈관이 생성되고 이 유전자와 관 련된 140 kDa의 억제제에 의해 혈관형성이 억제된 다는 점과 이 억제제가 t h r o m b o s p o n d i n과 비슷하 다는 점에서 기인한다6 6 ). 류마티스 관절염의 활막조 직에서 t h r o m b o s p o n d i n이 발현된다는 보고들이

있지만6 7 , 6 8 ) 쥐의 adjuvant-induced arthritis와 같

은 동물모형에서 t h r o m b o s p o n d i n이 혈관형성을 억제하거나 관절염을 호전 시키지 못하기 때문에 류 마티스 관절염에서는 종양세포에서와 달리 다른 역 할을 할 가능성이 높다6 9 ).

A n g i o s t a t i n은 p l a s m i n o g e n의 분절인데 p l a s- minogen 자체는 혈관형성을 억제하지 못하는 반면 a n g i o s t a t i n은 종양 성장을 강력하게 억제하는 혈관 형성 억제인자다7 0 - 7 2 ). Angiostatin은 A T P - s y n- t h a s e에 결합하여 혈관 성장에 필요한 에너지를 고 갈시키거나 focal adhesion kinase를 활성화시켜 혈관 내피세포의 자사를 유도한다7 3 , 7 4 )

. Angiostatin 과 유사한 혈관성장 억제인자로 e n d o s t a t i n이 있는 데 이는 제 1 8형 콜라겐의 분절이다7 5 ). Angio- s t a t i n과 e n d o s t a t i n이 류마티스 관절염과 관련되 어 어떠한 역할을 하는지에 대해서는 아직 밝혀진 바가 없지만 이들 억제인자들의 감소로 류마티스 관 절염에서 혈관형성이 증가되어 있을 가능성이 있다.

위에 언급된 혈관형성 억제인자들은 체내에 정상적 으로 존재하는 것들이지만 이들 외에 혈관형성을 억 제하기 위해 개발된 물질들이 있다. 대표적인 것으로 연골추출물을 들 수 있는데 연골은 혈관이 분포하지 않고 종양이 잘 발생하지 않는 부위로 혈관형성을 억

제하는 물질이 존재하는 것으로 알려져 있다7 6 - 8 0 )

. 상 어 연골과 소의 견갑골이 혈관형성을 억제하는 작용 이 있다고 보고된 바 있고8 1 ) 최근에는 사람 연골에 존재하는 troponin I이 a n g i o s t a t i n처럼 A T P a s e 를 억제하여 혈관형성을 억제한다고 한다8 2 ).

F u m a g i l l i n은 혈관내피세포를 배양하는 과정에서 우연히 내피세포의 성장을 억제하는 오염균을 발견 하게 되는데 이 오염균으로부터 만들어진 화합물이 다. Fumagillin의 유도체로 A G M - 1 4 7 0과 T N P - 4 7 0이 있는데 이들은 모두 쥐의 관절염 모형에서 관 절염의 발생을 억제하고 이미 진행된 관절염에서는 판누스의 형성을 억제하여 관절염의 증상을 호전시

킨다5 , 8 3 , 8 4 ). 사람을 대상으로 한 임상시험은 아직까지

진행된 적이 없지만 류마티스 관절염의 치료약제로 개발될 가능성이 높은 제제이다.

최근 thalidomide, taxol, 2-methoxyestrodiol 과 같이 혈관형성 억제작용이 있다고 알려져 있는 약제들이 관절염의 여러 동물모형에서 시도되어지고 있다. Thalidomide는 지아(limb bud) 형성을 억 제하여 기형을 초래하고 T N F -α를 차단하는 작용이

있는데8 5 ) 쥐의 collagen-induced arthritis에서는

관절염의 임상증상과 방사선 소견을 호전시킨다8 6 ). 이 모형에서는 t h a l i d o m i d e의 투여로 T N F -α와 V E G F의 농도가 감소되지 않고 T N F -α와 V E G F 의 농도가 지속적으로 증가되어 있음에도 불구하고 관절염의 증상이 호전되기 때문에 아직 밝혀지지 않 은 다른 기전을 통하여 t h a l i d o m i d e가 혈관형성을 억제한다고 판단된다. 미세소관( m i c r o t u b u l e )의 안 정제( s t a b i l i z e r )인 taxol 역시 c o l l a g e n - i n d u c e d a r t h r i t i s에서 관절염의 발생을 억제시키고 이미 발 생된 관절염의 증상을 완화시킨다8 7 ). 또한 조직학적 으로 증가되어 있는 혈관의 용적과 신생혈관들을 거 의 관절염이 없는 수준으로 환원시켜준다8 8 ). 2- m e t h o x y e s t r a d i o l도 마찬가지로 c o l l a g e n - induced arthritis의 발생을 억제시키고 혈관내피 세포의 산화질소 합성을 감소시켜 항염증작용을 나

타낸다8 9 , 9 0 ).

정상 혈관에서는 cyclooxygenase (COX)-1이 발 현되어 있는데 혈관형성이 일어나기 시작하면 C O X - 2가 발 현 된 다 . COX-2에 의 해 prostaglandin (PG) E2와 같은 P G들이 합성되고 이들은 혈관형성을 유도하는 매개체로 잘 알려져 있

(6)

9 1 ). 쥐의 corneal micropocket assay에서 비선 택적인 COX 억제제인 i n d o m e t h a c i n과 선택적 COX-2 억제제인 S C - 2 3 6은 동일하게 혈관형성을 억제하지만 i n d o m e t h a c i n은 혈관형성을 억제하는 용량에서 심각한 위장관 부작용을 나타낸다9 2 ). 선택 적 COX-1 억제제인 S C - 5 6 0은 혈관형성을 억제하 는 작용이 거의 없기 때문에 혈관형성에서 C O X - 2 의 작용이 중요하다고 볼 수 있고 비선택적인 C O X 억제제보다 선택적 COX-2 억제제가 치료목적으로 혈관형성을 억제하는데 좀 더 효과적이라고 할 수 있겠다. 대장암의 몇몇 동물모형에서 선택적 C O X - 2 억제제가 종양의 성장과 폐로의 전이를 감소시킨 다는 보고가 있고 전립선암, 유방암에서도 비슷한 연구결과들이 있다9 3 - 9 6 ). 가족성 선종성 용종증 환자 에서는 대장암의 발생을 억제하기 위해 선택적 COX-2 억제제가 실제로 처방되어지고 있다9 7 ). 류마 티스 관절염의 활막조직에서는 C O X - 1과 C O X - 2가 발현이 되며 P G E2가 증가되어 있고 P G E2는 V E G F의 발현을 증가시킨다9 8 , 9 9 )

. 최근에 저자들의 보고에 의하면 선택적 COX-2 억제제인 N S - 3 9 8을 활막세포에 처리하였을 경우 V E G F의 생성을 감소 됨을 관찰한 바 있다. 이러한 소견은 비스테로이드 성 항염제의 치료기전의 일부는 혈관형성 억제 작용 과 관계가 있을 것으로 생각된다.

류마티스 관절염의 치료에 사용되는 항류마티스 약물들도 어느 정도 혈관형성을 억제하는 작용을 가 지고 있는 것으로 보고되고 있다. 사람의 혈관 내피 세포를 대상으로 한 실험에서 C h l o r o q u i n e1 0 0 ), sul- f a s a l a z i n e의 활성 대사물인 s u l f a p y r i d i n e1 0 1 , 1 0 2 )

, m e t h o t r e x a t e1 0 3 ), D-penicillamine1 0 4 ), 금 제제

1 0 5 , 1 0 6 )

는 혈관형성을 억제시킨다. 반면 류마티스 관절 염 환자의 배양된 활막 섬유모세포에서는 b u c i l- l a m i n e과 금 제제는 V E G F의 합성을 억제하지만 m e t h o t r e x a t e와 s u l f a p y r i d i n e은 V E G F의 합성 을 억제시키지 못한다1 0 7 ). 이러한 차이는 실험조건에 따른 차이일 것으로 생각되고 좀 더 많은 연구가 진 행되어져야 할 필요가 있다고 본다. 저자들은 류마 티스 관 절 염 환 자 의 활막 섬 유 모 세 포 에 서 cyclosporin A (CSA)를 in vitro에서 투여하여 VEGF 합성 정도를 살펴보았는데, CSA는 T G F -β 및 IL-1 자극에 의한 VEGF 의 생성을 단백질 및 mRNA 수준에서 모두 억제하였으며, 이러한 억제

효과는 calcineurin 의존적이었다. 또한 CSA 은 cAMP 의 상승을 유발하고, 이를 통하여 AP-1 전 사인자를 억제함으로서 VEGF 유전자의 발현을 하 향 조절하여 VEGF 합성을 억제한다는 것을 알 수

있었다1 0 8 ). 이러한 사실은 류마티스 관절염 환자에서

CSA 의 치료효과가 단순히 T 세포 수준에서 일어 나는 것 뿐만 아니라 활막세포에서 VEGF 의 생성 을 감소시킴으로 활막염의 진전을 억제하는 새로운 기전으로 생각된다.

앞으로의 전망

지금까지 혈관형성을 억제하는 작용이 있다고 기 술되어진 여러 약제들은 처음부터 혈관형성을 억제 하기 위한 목적으로 개발된 것들이 아니고 다른 목 적으로 개발된 약제들이 여러 실험을 통해 혈관형성 억제작용이 있다고 밝혀진 경우가 대부분이다. 사실 선택적 COX-2 억제제와 항류마티스 약물들도 어느 정도 혈관형성을 억제한다고 할 수 있지만 이것이 류마티스 관절염에서 효과를 나타나는 주된 작용기 전이라고 보기는 어렵다. 따라서 류마티스 관절염에 서 증가되어 있는 혈관형성 유발인자를 대상으로 이 를 직접적으로 차단하는 방법들이 모색되어질 필요 가 있다고 본다. 류마티스 관절염과 관련된 여러 혈 관형성 유발인자 가운데 가장 강력한 유발인자가 V E G F이기 때문에 V E G F가 가장 우선적인 고려대 상이 될 수 있겠다. VEGF를 차단할 수 있는 가장 일반적인 방법은 VEGF monoclonal antibody를 사용하거나 V E G F의 soluble receptor인 s f l t - 1을 이용하여 V E G F가 VEGF 수용체에 결합하지 못하 도록 할 수 있겠고 tyrosine kinase 억제제를 사용 하여 VEGF 수용체의 신호전달을 차단하는 것도 가 능한 방법으로 생각된다. 최근 들어 V E G F를 차단 하는 여러 방법들이 암 환자들을 대상으로 시도되어 지고 있고 이러한 방법들이 효과가 있는 것으로 판 명된다면 류마티스 관절염 환자들을 대상으로 한 연 구도 앞으로 진행되어질 전망이다6 5 , 1 1 0 ).

혈관형성은 이를 유발하는 인자들과 억제하는 인 자들 사이의 균형이 깨어져서 혈관형성을 유발하는 인자들이 억제하는 인자들에 비해 상대적으로 많기 때문에 발생한다. 따라서 V E G F와 같은 한 가지 혈 관형성 유발인자를 차단하면 b F G F와 같은 다른 혈

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관형성 유발인자들이 활성화되어 전체적으로는 혈관 형성이 억제되지 않을 가능성이 있다. 마우스의 c o l- lagen-induced arthritis 모형에서는 V E G F monoclonal antibody와 s f l t - 1을 사용하여 관절염 의 임상증상과 골 미란을 감소시킬 수 있었다는 보

1 1 0 , 1 1 1 )도 있지만 사람을 대상으로 한 임상실험에서

도 동일한 결과를 얻을 수 있을는지 앞으로 지켜보 아야 할 필요가 있겠다.

결론적으로, 류마티스 관절염은 V E G F와 같은 혈 관형성 유발물질들이 증가되어 활막조직이 증식하는 질환으로 류마티스 관절염을 지금보다 더 잘 조절하 기 위해서는 혈관형성을 억제하는 약제들이 개발되 어야 할 필요가 있다고 본다.

감사의 글

본 논문은 한국과학재단 목적기초연구(과제번호 2 0 0 0 - 2 - 2 1 2 0 0 - 0 0 1 - 3 )지원으로 수행되었음.

R E F E R E N C E S

11 ) Folkman J. How is blood vessel growth regu- lated in normal and neoplastic tissue? Cancer Res 1986;46:467-73.

12 ) Colville-Nash PR, Scott DL. Angiogenesis and rheumatoid arthritis: pathogenic and therapeutic implications. Ann Rheum Dis 1992;51:919-25.

13 ) Dvorak HF, Detmar M, Claffey KP, Nagy JA, van de Water L, Senger DR. Vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor: an important mediator of angiogenesis in malignancy and inflammation.

Int Arch Allergy Immunol 1995;107:233-5.

14 ) Paleolog EM. Angiogenesis: a critical process in the pathogenesis of RA--a role for VEGF?

Br J Rheumatol 1996;35:917-9.

15 ) Peacock DJ, Banquerigo ML, Brahn E. Angio- genesis inhibition suppresses collagen arthritis.

J Exp Med 1992;175:1135-8.

16 ) Oliver SJ, Banquerigo ML, Brahn E. Suppres- sion of collagen-induced arthritis using an angio- genesis inhibitor, AGM-1470, and a microtubule stabilizer, taxol. Cell Immunol 1994;157:291-9.

17 ) Koch AE. Angiogenesis: implications for rheuma- toid arthritis. Arthritis Rheum 1998;41:951-62.

18 ) Koch AE. The role of angiogenesis in rheuma- toid arthritis: recent developments. Ann Rheum Dis 2000;59(Suppl 1):i65-71.

19 ) Szekanecz Z, Koch AE. Chemokines and angio- genesis. Curr Opin Rheumatol 2001;13:202-8.

1 0 ) Shing Y, Folkman J, Sullivan R, Butterfield C, Murray J, Klagsbrun M. Heparin affinity:

purification of a tumor-derived capillary endothelial cell growth factor. Science 1984;223:

1 2 9 6 - 9 .

1 1 ) Qu Z, Huang XN, Ahmadi P, Andresevic J, Planck SR, Hart CE, et al. Expression of basic fibroblast growth factor in synovial tissue from patients with rheumatoid arthritis and degener- ative joint disease. Lab Invest 1995;73:339-46.

1 2 ) Connolly DT, Heuvelman DM, Nelson R, Olan- der JV, Eppley BL, Delfino JJ, et al. Tumor vascular permeability factor stimulates endothelial cell growth and angiogenesis. J Clin Invest 1989;84:1470-8.

1 3 ) Fava RA, Olsen NJ, Spencer-Green G, Yeo KT, Yeo TK, Berse B, et al. Vascular perme- ability factor/endothelial growth factor (VPF/VEGF): accumulation and expression in human synovial fluids and rheumatoid syn- ovial tissue. J Exp Med 1994;180:341-6.

1 4 ) Bussolino F, Di Renzo MF, Ziche M, Bocchi- etto E, Olivero M, Naldini L, et al. Hepato- cyte growth factor is a potent angiogenic fac- tor which stimulates endothelial cell motility and growth. J Cell Biol 1992;119:629-41.

1 5 ) Koch AE, Halloran MM, Hosaka S, Shah MR, Haskell CJ, Baker SK, et al. Hepatocyte growth factor. A cytokine mediating endothelial migration in inflammatory arthritis. Arthritis Rheum 1996;39:1566-75.

1 6 ) Antoniades HN, Galanopoulos T, Neville-Gold- en J, Kiritsy CP, Lynch SE. Injury induces in vivo expression of platelet-derived growth factor (PDGF) and PDGF receptor mRNAs in skin epithelial cells and PDGF mRNA in connective tissue fibroblasts. Proc Natl Acad Sci U S A 1 9 9 1 ; 8 8 : 5 6 5 - 9 .

1 7 ) Reuterdahl C, Tingstrom A, Terracio L, Funa K, Heldin CH, Rubin K. Characterization of platelet-derived growth factor beta-receptor expressing cells in the vasculature of human rheumatoid synovium. Lab Invest 1991;64:321-9.

1 8 ) Ishikawa F, Miyazono K, Hellman U, Drexler

(8)

H, Wernstedt C, Hagiwara K, et al. Identifica- tion of angiogenic activity and the cloning and expression of platelet-derived endothelial cell growth factor. Nature 1989;338:557-62.

1 9 ) Takeuchi M, Otsuka T, Matsui N, Asai K, Hirano T, Moriyama A, et al. Aberrant pro- duction of gliostatin/platelet-derived endothelial cell growth factor in rheumatoid synovium.

Arthritis Rheum 1994;37:662-72.

2 0 ) Shiozawa S, Shiozawa K, Tanaka Y, Morimoto I, Uchihashi M, Fujita T, et al. Human epider- mal growth factor for the stratification of syn- ovial lining layer and neovascularisation in rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis 1989;

4 8 : 8 2 0 - 8 .

2 1 ) Dunn SE. Insulin-like growth factor I stimulates angiogenesis and the production of vascular endothelial growth factor. Growth Horm IGF Res 2000;10(Suppl A):S41-2.

2 2 ) Taketazu F, Kato M, Gobl A, Ichijo H, ten Dijke P, Itoh J, et al. Enhanced expression of trans- forming growth factor-beta s and transforming growth factor-beta type II receptor in the syn- ovial tissues of patients with rheumatoid arthri- tis. Lab Invest 1994;70:620-30.

2 3 ) Leibovich SJ, Polverini PJ, Shepard HM, Wise- man DM, Shively V, Nuseir N. Macrophage- induced angiogenesis is mediated by tumour necrosis factor-alpha. Nature 1987;329:630-2.

2 4 ) Buchan G, Barrett K, Turner M, Chantry D, Maini RN, Feldmann M. Interleukin-1 and tumour necrosis factor mRNA expression in rheumatoid arthritis: prolonged production of IL-1 alpha. Clin Exp Immunol 1988;73:449-55.

2 5 ) Koch AE, Polverini PJ, Kunkel SL, Harlow LA, DiPietro LA, Elner VM, et al. Inter- leukin-8 as a macrophage-derived mediator of angiogenesis. Science 1992;258:1798-801.

2 6 ) Angiolillo AL, Kanegane H, Sgadari C, Reaman GH, Tosato G. Interleukin-15 promotes angio- genesis in vivo. Biochem Biophys Res Commun 1 9 9 7 ; 2 3 3 : 2 3 1 - 7 .

2 7 ) Walsh DA. Angiogenesis and arthritis. Rheuma- tology 1999;38:103-12.

2 8 ) Friling R, Yassur Y, Levy R, Kost J, Schwartz B, Mikhailowsky R, et al. A role of transforming growth factor-beta 1 in the con- trol of corneal neovascularization. In Vivo 1 9 9 6 ; 1 0 : 5 9 - 6 4 .

2 9 ) Sidky YA, Borden EC. Inhibition of angiogene- sis by interferons: effects on tumor- and lym- phocyte-induced vascular responses. Cancer Res 1 9 8 7 ; 4 7 : 5 1 5 5 - 6 1 .

3 0 ) Pepper MS, Ferrara N, Orci L, Montesano R.

Leukemia inhibitory factor (LIF) inhibits angiogenesis in vitro. J Cell Sci 1995;108:73-83.

3 1 ) Hirata S, Matsubara T, Saura R, Tateishi H, Hirohata K. Inhibition of in vitro vascular endothelial cell proliferation and in vivo neo- vascularization by low-dose methotrexate.

Arthritis Rheum 1989;32:1065-73.

3 2 ) Volin MV, Harlow LA, Woods JM, Campbell PL, Amin MA, Tokuhira M, et al. Treatment with sulfasalazine or sulfapyridine, but not 5- aminosalicyclic acid, inhibits basic fibroblast growth factor-induced endothelial cell chemo- taxis. Arthritis Rheum 1999;42:1927-35.

3 3 ) Neufeld G, Cohen T, Gengrinovitch S, Poltorak Z. Vascular endothelial growth factor (VEGF) and its receptors. FASEB J 1999;13:9-22.

3 4 ) Olofsson B, Pajusola K, Kaipainen A, von Euler G, Joukov V, Saksela O, et al. Vascu- lar endothelial growth factor B, a novel growth factor for endothelial cells. Proc Natl Acad Sci U S A 1996;93:2576-81.

3 5 ) Joukov V, Pajusola K, Kaipainen A, Chilov D, Lahtinen I, Kukk E, et al. A novel vascular endothelial growth factor, VEGF-C, is a ligand for the Flt4 (VEGFR-3) and KDR (VEGFR-2) receptor tyrosine kinases. EMBO J 1996;15:

2 9 0 - 9 8 .

3 6 ) Yamada Y, Nezu J, Shimane M, Hirata Y.

Molecular cloning of a novel vascular endothe- lial growth factor, VEGF-D. Genomics 1997;42:

4 8 3 - 8 .

3 7 ) Neufeld G, Cohen T, Gitay-Goren H, Poltorak Z, Tessler S, Sharon R, et al. Similarities and differences between the vascular endothelial growth factor (VEGF) splice variants. Cancer Metastasis Rev 1996;15:153-8.

3 8 ) Terman BI, Dougher-Vermazen M. Biological properties of VEGF/VPF receptors. Cancer Metastasis Rev 1996;15:159-63.

3 9 ) Alon T, Hemo I, Itin A, Pe’er J, Stone J, Keshet E. Vascular endothelial growth factor acts as a survival factor for newly formed reti- nal vessels and has implications for retinopathy of prematurity. Nat Med 1995;1:1024-8.

(9)

4 0 ) Benjamin LE, Keshet E. Conditional switching of vascular endothelial growth factor (VEGF) expression in tumors: induction of endothelial cell shedding and regression of hemangioblas- toma-like vessels by VEGF withdrawal. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997;94:8761-6.

4 1 ) Mignatti P, Rifkin DB. Plasminogen activators and matrix metalloproteinases in angiogenesis.

Enzyme Protein 1996;49:117-37.

4 2 ) Roberts WG, Palade GE. Increased microvascu- lar permeability and endothelial fenestration induced by vascular endothelial growth factor.

J Cell Sci 1995;108:2369-79.

4 3 ) Koch AE, Harlow LA, Haines GK, Amento EP, Unemori EN, Wong WL, et al. Vascular endothelial growth factor. A cytokine modulat- ing endothelial function in rheumatoid arthritis.

J Immunol 1994;152:4149-56.

4 4 ) Nagashima M, Yoshino S, Ishiwata T, Asano G. Role of vascular endothelial growth factor in angiogenesis of rheumatoid arthritis. J Rheumatol 1995;22:1624-30.

4 5 ) Paleolog EM, Young S, Stark AC, McCloskey RV, Feldmann M, Maini RN. Modulation of angiogenic vascular endothelial growth factor by tumor necrosis factor alpha and interleukin- 1 in rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum 1 9 9 8 ; 4 1 : 1 2 5 8 - 6 5 .

4 6 ) Lee SS, Joo YS, Kim WU, Min DJ, Min JK, Park SH, et al. Vascular endothelial growth factor levels in the serum and synovial fluid of patients with rheumatoid arthritis. Clin Exp Rheumatol 2001;19:321-4.

4 7 ) Li J, Perrella MA, Tsai JC, Yet SF, Hsieh CM, Yoshizumi M, et al. Induction of vascular endothelial growth factor gene expression by interleukin-1 beta in rat aortic smooth muscle cells. J Biol Chem 1995;270:308-12.

4 8 ) Cohen T, Nahari D, Cerem LW, Neufeld G, Levi BZ. Interleukin 6 induces the expression of vascular endothelial growth factor. J Biol Chem 1 9 9 6 ; 2 7 1 : 7 3 6 - 4 1 .

4 9 ) Pertovaara L, Kaipainen A, Mustonen T, Orpana A, Ferrara N, Saksela O, et al. Vas- cular endothelial growth factor is induced in response to transforming growth factor-beta in fibroblastic and epithelial cells. J Biol Chem. 1994;269:6271-4.

5 0 ) Stavri GT, Zachary IC, Baskerville PA, Mar-

tin JF, Erusalimsky JD. Basic fibroblast growth factor upregulates the expression of vascular endothelial growth factor in vascular smooth muscle cells. Synergistic interaction with hypoxia. Circulation 1995;92:11-4.

5 1 ) Stavri GT, Hong Y, Zachary IC, Breier G, Baskerville PA, Yla-Herttuala S, et al. Hypox- ia and platelet-derived growth factor-BB syner- gistically upregulate the expression of vascular endothelial growth factor in vascular smooth muscle cells. FEBS Lett 1995;358:311-5.

5 2 ) Goldman CK, Kim J, Wong WL, King V, Brock T, Gillespie GY. Epidermal growth fac- tor stimulates vascular endothelial growth factor production by human malignant glioma cells: a model of glioblastoma multiforme pathophysiology. Mol Biol Cell 1993;4:121-33.

5 3 ) Bottomley MJ, Webb NJ, Watson CJ, Holt PJ, Freemont AJ, Brenchley PE. Peripheral blood mononuclear cells from patients with rheumatoid arthritis spontaneously secrete vascular endothelial growth factor (VEGF):

specific up-regulation by tumour necrosis fac- tor-alpha (TNF-alpha) in synovial fluid. Clin Exp Immunol 1999;117:171-6.

5 4 ) Jackson JR, Minton JA, Ho ML, Wei N, Winkler JD. Expression of vascular endothe- lial growth factor in synovial fibroblasts is induced by hypoxia and interleukin 1beta. J Rheumatol 1997;24:1253-9.

5 5 ) Berse B, Hunt JA, Diegel RJ, Morganelli P, Yeo K, Brown F, et al. Hypoxia augments cytokine (transforming growth factor-beta (TGF-beta) and IL-1)-induced vascular endothelial growth factor secretion by human synovial fibroblasts.

Clin Exp Immunol 1999;115:176-82.

5 6 ) Patterson C, Perrella MA, Endege WO, Yoshizumi M, Lee ME, Haber E. Downregu- lation of vascular endothelial growth factor receptors by tumor necrosis factor-alpha in cultured human vascular endothelial cells. J Clin Invest 1996;98:490-6.

5 7 ) Shweiki D, Itin A, Soffer D, Keshet E. Vas- cular endothelial growth factor induced by hypoxia may mediate hypoxia-initiated angio- genesis. Nature 1992;359:843-5.

5 8 ) Levick JR. Hypoxia and acidosis in chronic inflammatory arthritis; relation to vascular sup- ply and dynamic effusion pressure. J Rheuma-

(10)

tol 1990;17:579-82.

5 9 ) Semenza GL, Nejfelt MK, Chi SM, Antonarakis SE. Hypoxia-inducible nuclear factors bind to an enhancer element located 3’

to the human erythropoietin gene. Proc Natl Acad Sci U S A 1991;88:5680-4.

6 0 ) Forsythe JA, Jiang BH, Iyer NV, Agani F, Leung SW, Koos RD, et al. Activation of vas- cular endothelial growth factor gene tran- scription by hypoxia-inducible factor 1. Mol Cell Biol 1996;16:4604-13.

6 1 ) Levy NS, Goldberg MA, Levy AP. Sequencing of the human vascular endothelial growth factor (VEGF) 3’untranslated region (UTR): conserva- tion of five hypoxia-inducible RNA-protein bind- ing sites. Biochim Biophys Acta. 1997;1352:167- 7 3 .

6 2 ) Cho CS, Cho ML, Min SY, Kim WU, Min DJ, Lee SS, et al. CD40 engagement on syn- ovial fibroblast up-regulates production of vascular endothelial growth factor. J Immunol 2000;164:5055-61.

6 3 ) Schultz A, Lavie L, Hochberg I, Beyar R, Stone T, Skorecki K, et al. Interindividual heterogeneity in the hypoxic regulation of VEGF: significance for the development of the coronary artery collateral circulation. Cir- culation 1999;100:547-52.

6 4 ) Watson CJ, Webb NJ, Bottomley MJ, Brench- ley PE. Identification of polymorphisms within the vascular endothelial growth factor (VEGF) gene: correlation with variation in VEGF pro- tein production. Cytokine 2000;12:1232-5.

6 5 ) Brenchley PEC. Antagonising angiogenesis in rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis 2 0 0 1 ; 6 0 : 7 1 - 4 .

6 6 ) Good DJ, Polverini PJ, Rastinejad F, Le Beau MM, Lemons RS, Frazier WA, et al. A tumor suppressor-dependent inhibitor of angiogenesis is immunologically and functionally indistin- guishable from a fragment of thrombospondin.

Proc Natl Acad Sci U S A 1990;87:6624-8.

6 7 ) Hanahan D, Folkman J. Patterns and emerg- ing mechanisms of the angiogenic switch dur- ing tumorigenesis. Cell 1996;86:353-64.

6 8 ) Koch AE, Friedman J, Burrows JC, Haines GK, Bouck NP. Localization of the angiogene- sis inhibitor thrombospondin in human syn- ovial tissues. Pathobiology 1993;61:1-6.

6 9 ) Koch AE, Szekanecz Z, Friedman J, Haines GK, Langman CB, Bouck NP. Effects of thrombospondin-1 on disease course and angiogenesis in rat adjuvant-induced arthritis.

Clin Immunol Immunopathol 1998;86:199-208.

7 0 ) O’Reilly MS, Holmgren L, Shing Y, Chen C, Rosenthal RA, Moses M, et al. Angiostatin: a novel angiogenesis inhibitor that mediates the suppression of metastases by a Lewis lung carcinoma. Cell 1994;79:315-28.

7 1 ) Gately S, Twardowski P, Stack MS, Patrick M, Boggio L, Cundiff DL, et al. Human prostate carcinoma cells express enzymatic activity that converts human plasminogen to the angiogenesis inhibitor, angiostatin. Cancer Res 1996;56:4887-90.

7 2 ) Cao Y, Ji RW, Davidson D, Schaller J, Marti D, Sohndel S, et al. Kringle domains of human angiostatin. Characterization of the anti-prolifer- ative activity on endothelial cells. J Biol Chem 1 9 9 6 ; 2 7 1 : 2 9 4 6 1 - 7 .

7 3 ) Moser TL, Stack MS, Asplin I, Enghild JJ, Hojrup P, Everitt L, et al. Angiostatin binds ATP synthase on the surface of human endothe- lial cells. Proc Natl Acad Sci U S A 1999;96:

2 8 1 1 - 6 .

7 4 ) Claesson-Welsh L, Welsh M, Ito N, Anand- Apte B, Soker S, Zetter B, et al. Angiostatin induces endothelial cell apoptosis and activa- tion of focal adhesion kinase independently of the integrin-binding motif RGD. Proc Natl Acad Sci U S A 1998;95:5579-83.

7 5 ) O’Reilly MS, Boehm T, Shing Y, Fukai N, Vasios G, Lane WS, et al. Endostatin: an endogenous inhibitor of angiogenesis and tumor growth. Cell 1997;88:277-85.

7 6 ) Brem H, Folkman J. Inhibition of tumor angiogenesis mediated by cartilage. J Exp Med 1 9 7 5 ; 1 4 1 : 4 2 7 - 3 9 .

7 7 ) Langer R, Brem H, Falterman K, Klein M, Folkman J. Isolations of a cartilage factor that inhibits tumor neovascularization. Sci- ence 1976;193:70-2.

7 8 ) Kuettner KE, Pauli BU. Inhibition of neovas- cularization by a cartilage factor. Ciba Found Symp 1983;100:163-73.

7 9 ) Moses MA, Sudhalter J, Langer R. Identifica- tion of an inhibitor of neovascularization from cartilage. Science 1990;248:1408-10.

(11)

8 0 ) Moses MA. A cartilage-derived inhibitor of neovascularization and metalloproteinases. Clin Exp Rheumatol 1993;11(Suppl 8):S67-9.

8 1 ) Lee A, Langer R. Shark cartilage contains inhibitors of tumor angiogenesis. Science 1983;

2 2 1 : 1 1 8 5 - 7 .

8 2 ) Moses MA, Wiederschain D, Wu I, Fernandez CA, Ghazizadeh V, Lane WS, et al. Troponin I is present in human cartilage and inhibits angio- genesis. Proc Natl Acad Sci U S A 1999;96:2645- 5 0 .

8 3 ) Peacock DJ, Banquerigo ML, Brahn E. A novel angiogenesis inhibitor suppresses rat adjuvant arthritis. Cell Immunol 1995;160:178-84.

8 4 ) de Bandt M, Grossin M, Weber AJ, Chopin M, Elbim C, Pla M, et al. Suppression of arthritis and protection from bone destruction by treatment with TNP-470/AGM-1470 in a transgenic mouse model of rheumatoid arthri- tis. Arthritis Rheum 2000;43:2056-63.

8 5 ) Corral LG, Kaplan G. Immunomodulation by thalidomide and thalidomide analogues. Ann Rheum Dis 1999;58(Suppl 1):I107-13.

8 6 ) Oliver SJ, Cheng TP, Banquerigo ML, Brahn E. The effect of thalidomide and 2 analogs on collagen induced arthritis. J Rheumatol 1 9 9 8 ; 2 5 : 9 6 4 - 9 .

8 7 ) Brahn E, Tang C, Banquerigo ML. Regression of collagen-induced arthritis with taxol, a microtubule stabilizer. Arthritis Rheum 1 9 9 4 ; 3 7 : 8 3 9 - 4 5 .

8 8 ) Arsenault AL, Lhotak S, Hunter WL, Ban- querigo ML, Brahn E. Taxol involution of col- lagen-induced arthritis: ultrastructural correla- tion with the inhibition of synovitis and neo- vascularization. Clin Immunol Immunopathol 1 9 9 8 ; 8 6 : 2 8 0 - 9 .

8 9 ) Fotsis T, Zhang Y, Pepper MS, Adlercreutz H, Montesano R, Nawroth PP, et al. The endogenous oestrogen metabolite 2-methoxy- oestradiol inhibits angiogenesis and suppresses tumour growth. Nature 1994;368:237-9.

9 0 ) Josefsson E, Tarkowski A. Suppression of type II collagen-induced arthritis by the endogenous estrogen metabolite 2-methoxyestradiol. Arthri- tis Rheum 1997;40:154-63.

9 1 ) Form DM, Auerbach R. PGE2 and angiogene- sis. Proc Soc Exp Biol Med 1983;172:214-8.

9 2 ) Masferrer JL, Koki A, Seibert K. COX-2

inhibitors. A new class of antiangiogenic agents. Ann N Y Acad Sci 1999;889:84-6.

9 3 ) Tsujii M, Kawano S, Tsuji S, Sawaoka H, Hori M, DuBois RN. Cyclooxygenase regulates angiogenesis induced by colon cancer cells.

Cell 1998;93:705-16.

9 4 ) Sawaoka H, Tsuji S, Tsujii M, Gunawan ES, Sasaki Y, Kawano S, et al. Cyclooxygenase inhibitors suppress angiogenesis and reduce tumor growth in vivo. Lab Invest 1999;79:1469-77.

9 5 ) Masferrer JL, Leahy KM, Koki AT, Zweifel BS, Settle SL, Woerner BM, et al. Antiangio- genic and antitumor activities of cyclooxyge- nase-2 inhibitors. Cancer Res 2000;60:1306-11.

9 6 ) Kirschenbaum A, Liu X, Yao S, Levine AC.

The role of cyclooxygenase-2 in prostate can- cer. Urology 2001;58(2 Suppl 1):127-31.

9 7 ) Davies NM, Gudde TW, de Leeuw MA. Cele- coxib: a new option in the treatment of arthropathies and familial adenomatous poly- posis. Expert Opin Pharmacother 2001;2:139- 5 2 .

9 8 ) Crofford LJ, Wilder RL, Ristimaki AP, Sano H, Remmers EF, Epps HR, et al. Cyclooxygenase-1 and -2 expression in rheumatoid synovial tissues.

Effects of interleukin-1 beta, phorbol ester, and corticosteroids. J Clin Invest 1994;93:1095-101.

9 9 ) Ben-Av P, Crofford LJ, Wilder RL, Hla T.

Induction of vascular endothelial growth fac- tor expression in synovial fibroblasts by prostaglandin E and interleukin-1: a potential mechanism for inflammatory angiogenesis.

FEBS Lett 1995;372:83-7.

1 0 0 )Inyang AL, Bikfalvi A, Lu H, Tobelem G.

C h l o r o q u i n e’s modulation of endothelial cell activity induced with basic fibroblast growth factor and human serum: effect on mitogene- sis, protease production and cell migration.

Cell Biol Int Rep 1990;14:35-46.

1 0 1 )Madhok R, Wijelath E, Smith J, Watson J, Sturrock RD, Capell HA. Is the beneficial effect of sulfasalazine due to inhibition of synovial neovascularization? J Rheumatol 1991;18:199- 2 0 2 .

1 0 2 )Volin MV, Harlow LA, Woods JM, Campbell PL, Amin MA, Tokuhira M, et al. Treatment with sulfasalazine or sulfapyridine, but not 5- aminosalicyclic acid, inhibits basic fibroblast growth factor-induced endothelial cell chemo-

(12)

taxis. Arthritis Rheum 1999;42:1927-35.

1 0 3 )Hirata S, Matsubara T, Saura R, Tateishi H, Hirohata K. Inhibition of in vitro vascular endothelial cell proliferation and in vivo neovas- cularization by low-dose methotrexate. Arthritis Rheum 1989;32:1065-73.

1 0 4 )Matsubara T, Saura R, Hirohata K, Ziff M.

Inhibition of human endothelial cell prolifera- tion in vitro and neovascularization in vivo by D-penicillamine. J Clin Invest 1989;83:158-67.

1 0 5 )Matsubara T, Ziff M. Inhibition of human endothelial cell proliferation by gold com- pounds. J Clin Invest 1987;79:1440-6.

1 0 6 )Koch AE, Cho M, Burrows J, Leibovich SJ, Polverini PJ. Inhibition of production of macrophage-derived angiogenic activity by the anti-rheumatic agents gold sodium thiomalate and auranofin. Biochem Biophys Res Commun 1 9 8 8 ; 1 5 4 : 2 0 5 - 1 2 .

1 0 7 )Nagashima M, Yoshino S, Aono H, Takai M, Sasano M. Inhibitory effects of anti-rheumatic drugs on vascular endothelial growth factor in

cultured rheumatoid synovial cells. Clin Exp Immunol 1999;116:360-5.

1 0 8 )Cho ML, Cho CS, Min SY, Kim SH, Lee SS, Kim WU, et al. Cyclosporine inhibition of vascu- lar endothelial growth factor production in rheumatoid synovial fibroblasts. Arthritis Rheum (In press).

1 0 9 )Chen HX, Gore-Langton RE, Cheson BD. Clini- cal trials referral resource: Current clinical trials of the anti-VEGF monoclonal antibody beva- cizumab. Oncology (Huntingt) 2001;15:1017-26.

1 1 0 )Miotla J, Maciewicz R, Kendrew J, Feldmann M, Paleolog E. Treatment with soluble VEGF receptor reduces disease severity in murine colla- gen-induced arthritis. Lab Invest 2000;80:1195- 2 0 5 .

1 1 1 )Sone H, Kawakami Y, Sakauchi M, Nakamura Y, Takahashi A, Shimano H, et al. Neutraliza- tion of vascular endothelial growth factor pre- vents collagen-induced arthritis and ameliorates established disease in mice. Biochem Biophys Res Commun 2001;281:562-8.

참조

관련 문서