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Copyright © 2014 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815
서 론
장염비브리오
(Vibrio parahaemolyticus)
는저도호염성해양 세균으로이균에오염된어패류또는불충분하게가열처리된 수산물을생식함으로써설사,
복통,
구토,
오한및미열등을동 반하는급성위장염증상을일으키며심한경우에는사망에이 르게하는식중독세균이다(Sakazaki et al., 1968; Blake et al., 1980; Honda and Iida, 1993).
일반적으로해수및어패류등의 자연계에서분리한대부분의장염비브리오는병원성유전자를 보유하지않는비병원성균주인반면부적절한수산물을섭취 하여급성위장염증상을나타내는환자의가검물에서분리한 장염비브리오의97%
이상은이균의대표적인병원성인자인 내열성용혈독(thermostable direct hemolysin, TDH)
또는내열 성용혈독관련용혈독(TDH-related hemolysin, TRH)
유전자 를보유하고있다(Shirai et al., 1990; Honda and Iida, 1993).
식품의약품안전처의식중독통계시스템자료에의하면
2002
년부터
2013
년까지12
년간우리나라에서발생한장염비브리오에의한식중독사고는주로여름철에집중적으로발생하며
사고건수 및환자수는 전체세균성식중독사고의
16.5%
및8.2%
를차지하고있다(MFDS, 2014).
사고건수로는병원성대 장균,
살모넬라에이어3
위에환자수로는병원성대장균,
황색 포도상구균,
살모넬라에이어4
위를차지하고있기때문에수 산물의안전성확보는국민보건위생상매우중요하다(MFDS,
2014).
해수에서장염비브리오의존재는수온과밀접하여수온이
17℃
이상으로상승하는하절기에는자유유영의형태로해수에서쉽게검출되나수온이
10℃
이하로낮아지면검출빈도는급격히떨어지며동절기에는저질또는동물성플랑크톤의 키틴질등에부착하여월동한다고보고되어있으나상세한내 용에대해서는아직규명되어있지않다
(Kaneko and Colwell, 1975; Makino et al., 2003).
장염비브리오는최적의조건에서 균의세대시간이8-12
분정도로어느세균보다도빨라단시간(3-4
시간)
에식중독을일으킬수있는균수에도달할수있기때 문에장염비브리오에의한식중독사고예방을위해서는신속 검출이매우중요하다(Makino et al., 2003).
수산물로부터장염MPN 및 H-NS 유전자를 표적으로 하는 PCR assay를 병용한 장염비브리오( Vibrio parahaemolyticus)의 정량
김태옥·박권삼*
군산대학교 식품생명공학과
Quantification of Vibrio parahaemolyticus Using a Most Probable Number-Polymerase Chain Reaction Assay Targeting the H-NS gene
Tae-Ok Kim and Kwon-Sam Park*
Department of Food Science and Biotechnology, Kunsan National University, Gunsan 573-701, Korea
We applied a combination of most probable number-polymerase chain reaction (MPN-PCR) methods using a PCR procedure targeting the H-NS (VP1133) gene to detect Vibrio parahaemolyticus presence and density in seawater as well as within short-necked clam Ruditapes philippinarum tissues collected from Gomso Bay, Korea. In 30 seawater samples, V. parahaemolyticus levels ranged from less than 1.8 to 1.1×10³ MPN/100 mL, and samples from August showed higher than those from other months. Furthermore, the levels of V. parahaemolyticus in six short-necked clam samples ranged from 7.8×10² to 2.1×10³ MPN/100 g, approximately 2.5 times higher than in seawater samples from the corresponding month. Our results provide data on V. parahaemolyticus contamination in seawater and short- necked clam tissues, and help to improve quantitative methods of assessing V. parahaemolytcius levels.
Key words: H-NS gene, Most probable number, Polymerase chain reaction, Vibrio parahaemolyticus
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/)which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2014.0556 Kor J Fish Aquat Sci 47(5) 556-561, October 2014
Received 26 September 2014; Revised 7 October 2014; Accepted 8 October 2014
*Corresponding author: Tel: +82. 63-469-1822 Fax: +82. 63-469-7448
E-mail address: [email protected]
비브리오의검출방법에는
PCR assay, most probable number (MPN) (Copin et al., 2012), DNA hybridization (Wang et al., 2011), Chromogenic agar (Su et al., 2005)
를이용하는 방법들이보고되어있으나이중에서
PCR assay
는다른방법에비해신속하며검출한계가뛰어난점등의장점으로 인하여많 이이용되고있다
(Kim et al., 1999; Kim et al., 2008; Yu et al., 2010).
지금까지PCR assay
에사용된장염비브리오의표적유 전자로는tdh, trh, toxR, rpoS, irgB
및gyrB
등이있으나거짓양성또는거짓음성반응등의문제점을내포하고있다
(Ven-
kateswaran et al., 1998; Bej et al., 1999; Kim et al., 1999; Yu et al., 2010).
H-NS (histone-like nucleoid structuring)
단백질은저분자물질로
AT-rich DNA
에결합하여병원성유전자를포함한다수유전자의전사를양성또는음성적으로조절하는전사조절인 자로알려져있으며병원성대장균
,
살모넬라, V. cholerae
등다 수의병원성세균에서보고되어있다(Fang and Rimsky, 2008).
2003
년장염비브리오RIMD2210633
균주의염색체DNA
염 기서열해독결과큰염색체에H-NS (VP1133)
유전자의존재 가밝혀졌으며(Makino et al., 2003),
그유전자의DIG-labeling probe
를사용한dot-blot hybridization
법으로임상및환경유 래장염비브리오46
종을대상으로유전자존재여부를검토한결과실험에제공된모든균주에서
H-NS
유전자의존재가확인되어장염비브리오동정을위한표적유전자로서의가능성이 시사되었다
(Park et al., 2005). No et al. (2011)
는장염비브리 오의신속동정을위한PCR assay
의표적유전자로H-NS
유전 자의타당성을검토한결과이유전자는다수비브리오속의종 에서장염비브리오에서만특이성이확인되어H-NS
유전자는 장염비브리오의신속판정및동정을위한유전자로서의유용 성을보고하였다.
본논문은해수또는수산물에존재하는장염비브리오의정량 을위하여
most probable number (MPN)
와H-NS
유전자를표적으로하는
PCR assay
방법을병행하여해수및바지락중의 장염비브리오농도를정량하는조건을검토하였다.
재료 및 방법
시료채취 지점 및 시료채취
해수및바지락시료의채취지점은
Fig. 1
에제시하였다.
해 수는2013
년6
월부터11
월까지전라북도곰소만해역5
곳의 조사지점에서매월1
회씩총6
회에걸쳐채취하였으며,
바지 락은3
곳의조사지점에서2013
년7
월과8
월총2
회채취하였 다.
해수채취는만조시각조사지점에서표층용채수기를사용하여멸균된
250 mL
광구병에직접채취하였으며,
바지락은간조시각조사지점에서채취도구를사용하여직접채취하 였다
.
채취한해수및바지락시료는얼음이채워진아이스박스에넣어
10℃
이하로유지하여실험실로운반한후미생물시험을실시하였다
.
해수의수온, pH,
염분및용존산소는수질분석 기(YSI556 multiprobe system; Yellow Springs, YSI Life Sci- ence, OH, USA)
를사용하여현장에서측정하였다.
균수 조정
PCR assay
에의한장염비브리오의최소검출농도를측정하기 위하여
3% sodium chloride
이첨가된Luria-Bertani (1%
tryptone, 0.5% yeast-extract, 3% NaCl) broth
에서하룻밤배 양한장염비브리오RIMD2210633
균주를원심분리(12,000 rpm, 2 min)
하여집균하였다.
여기에1.0 mL
의PBS (phos- phate buffered saline, pH 7.2)
를가하여현탁후원심분리하여PBS
로재차현탁하였다.
균수측정은현탁액10 µL
를count- ing chamber (Paul Marienfeld Gmbh&Co, KG Lauda-Konig- shofen, Germany)
에넣고광학현미경(Olympus CX31RBSF, Olympus Optical Co., LTD. Tokyo, Japan)
하에서균수를직접 계측하여계산하였으며적절한농도까지10
진법으로희석하여PCR assay
에사용하였다.
장염비브리오의 정량시험
해수및 패류시료중의장염비브리오정량을위해
Recom- mended Procedures for the Sea Water and Shellfish (APHA, 1970)
에준하여시험하였다.
해수는최종농도2%
의sodium chloride
이첨가된alkaline peptone water (Merck, Darmstadt, Germany) 10 mL
에3
개시험관법으로10, 1, 0.1
및0.01 mL
씩 접종한후35℃
에서16
시간정치배양하였다.
또한바지락은무 균적으로탈각후육25 g
을멸균된Waring Blender cup (Tor- rington, USA)
에넣고여기에9
배 량의멸균인산완충희석액(phosphate buffered saline, pH7.4)
을첨가하여90
초동안균질 화한다음10
진법으로적절한단계까지희석하여해수와동일 하게3
개시험관법으로접종한후35℃
에서16
시간정치배양 하였다.
각배양액1.0 mL
를eppendorf tube
에취해원심분리 Fig. 1. Location of sample collection stations in Gomso Bay fromJune to November 2013. ○, seawater sampling stations; ●, short- necked clam sampling stations.
M 1 2 3 4 5
◀465 bp
W-1
S-1 S-2 S-3 W-2
Buan-gun
Gochang-gun
W-3W-5
W-4
1km
N S
W E
(12,000 rpm, 2 min)
한후배양액은완전히제거하여균체를회 수하였다.
여기에멸균증류수0.2 mL
를가하여현탁후98℃
에서
5
분간열처리후H-NS
유전자증폭을위한PCR assay
용 주형DNA
로사용하였다. H-NS
유전자의증폭산물이확인된 시험관은 양성으로판정하여 최확수(most probable number, MPN)
에적용하여100 mL
또는100 g
중에존재하는장염비브 리오의균수로계산하였다.
PCR assay 조건
유전자증폭에는
EmeraldAmp GT PCR Master Mix (Ta- kara, Japan)
를사용하였다. hns
및toxR
프라이머의최종농도 는반응액에각각2.0 pmol
이되도록조정하였으며,
반응액은 총50 µL
가되도록하였다. PCR
조건은95℃
에서1
회3
분간 열변성후95℃ 30
초, 55℃ 30
초, 72℃ 30
초를한단위로하여 이를30
회반복하여DNA
를증폭하였다.
증폭된DNA
산물은1.5% agarose gel
에서전기영동후ethidium bromide
로염색하 여Vilber Lourmat (Bio-Paint ST4, Marne-la-Vallee, France)
사Gel-Doc system
으로관찰하였다.
결과 및 고찰
PCR assay에 의한 장염비브리오의 검출 최소농도 의 검토
PCR assay
에의한장염비브리오의검출한계에관한보고는다수존재한다
.
염색체DNA
를주형으로groEL
유전자를표적 으로한경우, PCR assay
에의한검출한계농도는100 pg
이라 고보고하고있으며(Hossain et al., 2011), H-NS
유전자를표적 으로하는PCR assay
에의한검출한계농도는0.14 pg
이라고 보고하고있으며(No et al., 2011), O-serogroup
을표적으로한PCR assay
에의한검출최소농도는1.0 ng
이라고보고하고있 다(Chen et al., 2012).
또한균체를주형으로PCR assay
에의한 검출최소균수는10 colony forming unit (CFU)
였다고보고 되어있다(Wei et al., 2014).
H-NS
유전자를표적으로하는PCR assay
에의한장염비브 리오균체의검출최소농도를검토하기위하여균체농도를반 응액에0.8×10⁴CFU
에서0.8×10
0CFU
농도가되도록조정 하여첨가하였다. Fig. 2
에제시한바와같이H-NS
유전자의증 폭은0.8×10
0CFU
농도에서는DNA
의증폭산물이확인되지 않았지만나머지0.8×10⁴CFU
에서0.8×10¹ CFU
까지농도에서는예상증폭단편인
465 bp
의DNA
증폭산물이확인되었 다.
그러나0.8×10¹ CFU
농도의반응구에서는다른농도에비 해DNA
밴드는미약하게나타났다.
또한toxR
프라이머에의 한PCR assay
결과도H-NS
와동일하게확인되었다(
자료미제 시).
결론적으로PCR assay
를위한반응액중의장염비브리오농도가
8 CFU
이상이면검출은가능하다고판단되는결과이며이는기존의보고와유사한결과이다
(Wei et al., 2014).
장염 비브리오는세대시간이어느세균보다빠르고최소검출한계의균농도가
8 CFU
이상이면검출이가능하기때문에적절한배지를이용하여매우짧은시간증균하여도장염비브리오검출 에는문제는없을것으로판단된다
.
해수 중의 장염비브리오 정량
전라북도부안군곰소만표층해수중의장염비브리오농도를 측정하기위하여최확수법과
H-NS
유전자의primer set
를사용 한PCR assay
의병용에의해2013
년6
월부터11
월까지6
개월 동안총30
개의해수시료를대상으로장염비브리오의농도를 측정하였다.
각해수시료의온도,
염분, pH
및용존산소에대 한측정치는Table 2
에제시하였다.
수온은6
월에21-23℃
였으나점점상승하여
8
월에는30℃
전후로가장높게측정되었으며이후점차하락하여
11
월에는15-16℃
전후로측정되었다.
염분과pH
는월별에따른차이는거의나타나지않는안정한값 을나타내었으며,
용존산소는수온이높은8
월이다른월에비 해가장낮게측정되었다.
해수채취지점이곰소만으로한정되 어있기때문에정점에따른수온,
염분, pH
및용존산소등의수Table 1. Oligonucleotide primers used in this study
Gene Oligonucleotide sequence Amplicon size (bp) Reference
toxR(VP0820) 5'-AGCCCGCTTTCTTCAGACTC-3'
5'-AACGAGTCTTCTGCATGGTG-3' 399 Kim et al., 1999
hns(VP1133) 5'-AAACACGTTAACCTATTAATAGG-3'
5'-AACGGGAGCCTTTTTAAACAAGA-3' 465 No et al., 2011
M 1 2 3 4 5
◀465 bp
W-1
S-1 S-2 S-3 W-2
Buan-gun
Gochang-gun
W-3W-5
W-4
1km
N S
W E
Fig. 2. Agarose gel electrophoresis of DNA products amplified in PCR assay using hns primers. M, 100 bp ladder marker (Ta- kara, Japan); lane 1, 0.8×10⁴CFU; lane 2, 0.8×10³ CFU; lane 3, 0.8×10² CFU; lane 4, 0.8×10¹ CFU; lane 5, 0.8×100 CFU.
치는거의차이가없는것으로파악되었다
.
장염비브리오의농 도는수온이21-23℃
전후인6
월의경우20-78 MPN/100 mL (
평균48.4 MPN/100 mL), 7
월에는200-780 MPN/100 mL (
평균472 MPN/100 mL), 8
월에는780-1,100 MPN/100 mL (
평균972 MPN/100 mL), 9
월에는110-170 MPN/100 mL (
평 균134 MPN/100 mL), 10
월에는11-46 MPN/100 mL (
평균27 MPN/100 mL), 11
월에는<1.8-2.0 MPN/100 mL (
평균1.9 MPN/100 mL)
로측정되었다.
곰소만해수중의장염비브리오 농도는수온이가장높은8
월에가장높게측정되었으며수온저하와동반하여장염비브리오의농도도낮아지는것으로확인 되었다
. DePaola et al. (1990)
은미국연안해수중의장염비브 리오농도는17 CFU/100 mL
이며,
다른요인보다수온이장염 비브리오농도형성에가장밀접하게작용한다고보고하고있 다.
또한Cantet et al. (2013)
은프랑스지중해연안해수중의 장염비브리오농도는1.0
에서>1.1×10²MPN/100 mL
로측정 되었다는보고도있는데이결과는곰소만해수보다약10
배정 도낮은수치이다. Table 2
의결과를종합해보면해수중의염분
, pH
및용존산소와장염비브리오의검출농도와는상관관계Table 2. Levels of Vibrio parahaemolytcius in surface seawater in Gomso Bay from June to November 2013
Month St. Temp.
(℃) Sal.
(ppm) pH DO
(mg/L) V. parahaemolyticus (MPN/100 mL)
June
W-1 21.85 30.23 8.08 7.55 78
W-2 21.29 30.55 8.13 8.14 46
W-3 21.20 30.54 8.12 8.34 20
W-4 23.31 29.71 8.04 7.56 20
W-5 22.22 30.15 8.08 7.86 78
July
W-1 26.87 29.29 7.73 6.53 460
W-2 24.99 29.48 7.72 6.06 780
W-3 25.06 29.06 7.75 6.52 200
W-4 25.94 29.42 7.73 6.54 460
W-5 26.75 29.72 7.68 6.52 460
Aug.
W-1 30.28 30.71 7.88 5.84 780
W-2 29.24 30.84 7.86 5.52 1,100
W-3 29.48 30.46 7.88 5.57 780
W-4 30.11 30.28 7.87 6.38 1,100
W-5 29.51 30.20 7.86 5.18 1,100
Sep.
W-1 22.91 30.19 7.72 6.16 110
W-2 22.98 30.34 7.73 6.62 110
W-3 23.15 30.22 7.74 6.69 170
W-4 24.18 30.85 7.73 6.23 140
W-5 23.27 30.61 7.78 6.18 140
Oct.
W-1 20.52 29.60 7.89 6.76 46
W-2 20.38 29.55 7.96 7.35 11
W-3 20.30 29.56 7.94 7.31 46
W-4 20.84 29.50 7.85 6.94 20
W-5 20.54 29.27 7.90 7.27 11
Nov.
W-1 15.97 30.52 8.09 6.03 <1.8
W-2 16.22 30.56 7.99 6.18 2.0
W-3 16.14 30.64 8.03 6.14 2.0
W-4 15.19 30.15 8.07 6.03 <1.8
W-5 15.63 30.43 8.07 6.01 <1.8
Total 15.19~30.28 29.06~30.85 7.68~8.13 5.18~8.34 <1.8~1,100
St., Station; Temp., Temperature; Sal., Salinity; DO., Dissolved oxygen.
는희박하였다
.
또한해수채취지점에따른장염비브리오농도 에는약간의차이는있었지만대체로안정적으로분포하고있 었다.
결론적으로해수에서장염비브리오의검출농도는해수 의온도와상관관계가가장밀접하여해수의온도가높아질수 록장염비브리오농도는높아지고수온이낮아지면장염비브리 오의농도도함께낮아지는것으로확인되었다.
수온이16℃
이 하인11
월의경우에는장염비브리오의검출은거의확인되지않았으며이는기존의보고와거의동일한결과이다
(Kaneko
and Colwell, 1975).
바지락 중의 장염비브리오 정량
곰소만에서생산되는패류종인바지락중의장염비브리오농 도를측정하기위하여
2013
년7
월과8
월2
개월간Fig. 1
에제시 한지점에서바지락을채취하여총6
점의바지락에대해장염비 브리오의농도를MPN-PCR assay
를병행하여측정하였다.
그 결과7
월의경우,
장염비브리오는780-1,700 MPN/100 g (
평 균1,193 MPN/100 g)
이였으며, 8
월시료에서는1,700-2,100 MPN/100 g (
평균1,967 MPN/100 g)
로측정되었다. 8
월바지 락이7
월바지락보다평균약1.8
배정도의높은농도의장염비 브리오가검출되었는데이는수온상승에의하여해수중의장 염비브리오의농도가높았기때문인것으로판단된다.
동일시 점의해수와바지락에존재하는장염비브리오의농도를비교해 보면7
월시료의경우,
바지락이해수보다약2.5
배정도장염 비브리오의농도가높았으며, 8
월시료에서도바지락이해수보 다약2.45
배정도높은것으로확인되었다.
결과적으로해수보 다는바지락에약2.5
배정도높은농도로장염비브리오가존재 하는데이는바지락의먹이섭취방식인여과섭식때문에바지 락체내에장염비브리오의축적이용이하였거나또는바지락의 생활환경인저질이해수보다영양성분이많아장염비브리오증 식에유리하게작용하였을가능성이제기된다. DePaola et al.
(1990)
는동일장소에서채취한굴중의장염비브리오농도가해수보다
100
배높았다는보고가있으나본연구의결과와는 매우다른결과이다.
따라서수온이상승하는하절기에는해수및수산물에높은농도로장염비브리오가존재하고있다는점 에서장염비브리오유래식중독사고의예방을위하여지속적 인모니터링과적절한예방대책이요구된다
.
사 사
이 논문은
2013
년도 정부(
교육부)
의 재원으로 한국연구재 단의 지원을 받아 수행된 기초연구사업입니다(2013R1A1A 2061851).
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Ruditapes philippinarum in Gomso Bay from July to August 2013
Month St. V. parahaemolyticus
(MPN/100 g) July
S-1 1,700
S-2 1,100
S-3 780
Aug.
S-1 2,100
S-2 2,100
S-3 1,700
St., Station.
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