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Copyright © 2015 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815
서 론
해조류는육상생물과는다른독특한서식환경조건으로인하 여다양한생리활성물질을함유하고있으며
,
현재해조류유 래 기능성소재로부터 항종양(Lee et al., 1992),
항바이러스(Kim et al., 2010),
항혈액응고(Scot et al., 1987)
및면역증강(Cho et al., 1990)
등의연구가활발히이루어지고있다(Kim et al., 2011).
이러한해조류중의대표적인기능성물질로세포 벽을구성하는점질다당류인알긴산,
푸코이단,
한천및카라 기난등이있다.
그중갈조류의세포벽구성점질다당류인알 긴산은β-D-mannuronic acid (M)
와α-L-guluronic acid (G)
가1,4-glycoside
결합으로노르말사슬분자를이루고존재하고있 으며,
해조류의종류,
계절및조체의부위에따라M
과G
의구성비율이달라지고
,
결합순서및구조에따라,
겔형성능,
흡착 능,
점도등의물리적특징이변하는것으로알려져있다(Horn et al., 1999; Moen et al., 1999; Zvyagintseva et al., 2005).
이와같은다양한기능성이알려진알긴산의이용을확대하 기위해식품
,
화장품및의료용소재측면에서많은연구가진 행되고있지만,
상온에서 용해시간이길고,
알코올류함유용 매에는난용이며,
농도가높아짐에따라고점도특성을보이는 단점으로인하여산업적으로이용하기에제한이따르고있다(Cho et al., 2003).
이러한단점을보완하고활용성을높이기위 해알긴산을저분자화시켜올리고당으로제조함으로써고점도의문제를해결하기위한연구가활발히진행되고있다
(Lee et
al., 1996; Lee et al., 1993).
이러한방법에는물리화학적및효 소적가수분해방법이있으며,
물리화학적분해방법인고온고Shewanella oneidensis PKA1008 유래 알긴산 분해 효소에 의해 제조된 알긴산 올리고당의 항염증 효과
김민지·배난영·박시우·김꽃봉우리
1·박지혜 ·박선희·안동현*
부경대학교 식품공학과/식품연구소, 1부경대학교 수산과학연구소
Anti-Inflammatory Effect of Alginate Oligosaccharides Produced by an Alginate-Degrading Enzyme from Shewanella oneidensis PKA1008 on
LPS-Induced RAW 264.7 Cells
Min-Ji Kim, Nan-Yong Bae, Si-Woo Bark, Koth-Bong-Woo-Ri Kim1, Ji-Hye Park, Sun-Hee Park and Dong-Hyun Ahn*
Department of Food Science & Technology/Institute of Food Science, Pukyong National University, Busan 48513, Korea
1Institute of Fisheries Sciences, Pukyong National University, Busan 46041, Korea
The anti-inflammatory effect of alginate oligosaccharides on LPS-induced RAW 264.7 cells was investigated at dif- ferent time points (0–60 h). The alginate oligosaccharides were produced by an alginate-degrading enzyme from Shewanella oneidensis PKA1008. The alginate oligosaccharides decreased the production of nitric oxide and pro- inflammatory cytokines [tumor necrosis factor-α, interleukin (IL)-1β, and IL-6] in a dose-dependent manner. The alginate oligosaccharides showed peak anti-inflammatory activity after 36 h of incubation; at that time point, reduced protein expression of NF-κB p65, iNOS, and COX-2 was detected. Furthermore, the alginate oligosaccharide treat- ment reduced the formation of ear edema at 36 h compared to samples examined at 0 h when the oligosaccharides were administered at 50 and 250 mg/kg body weight, as well as dermal thickness and mast cell numbers in a histo- logical analysis. These results suggest that alginate oligosaccharides are a promising anti-inflammatory agent.
Key words: Alginate oligosaccharides, Anti-inflammation, Ear edema, NF- kappaB
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2015.0888 Korean J Fish Aquat Sci 48(6) 888-897, December 2015
Received 11 November 2015; Revised 18 December 2015; Accepted 22 December 2015
*Corresponding author: Tel: +82. 51. 629. 5831 Fax: +82. 51. 629. 5824 E-mail address: [email protected]
알긴산 올리고당의 항염증 효과
889
압
(Kim et al., 2010),
방사선처리(Song et al., 2008),
산및알 칼리처리(Lee et al., 1975)
방법이있다.
물리화학적처리방법 은처리시간이짧고간단하지만,
산또는알칼리처리를통해생 성되는독성부산물의작용및중화시발생하는염등에의해 영향을받을수있으며,
정제가어렵다는단점이있다.
반면,
효 소적가수분해방법은물리화학적방법에비하여비용이비싸 지만목적으로하는올리고당생성에유리하며다른부산물의 생성을줄일수있는장점이있다.
따라서알긴산의효소적가 수분해를통한올리고당이최근산업적으로자주이용(Uo et al., 2006)
되고있으며,
고점도문제의해결뿐만아니라항산화(Bark et al., 2015),
항염증(Iwamoto et al., 2003)
등의기능성 증진에관한연구가보고되고있다.
염증반응은물리적
,
화학적자극에의해손상된부위를회복 시키는생체방어기작중의하나를말하며매개인자의활성화 에따라열,
부종,
홍반등의질병반응을유발한다(Zamora et al., 2000).
대식세포(macrophage)
는lipopolysaccharide (LPS)
의자극에의하여활성화되어nitric oxide (NO), interleukin-6 (IL-6), tumor necrosis factor-α (TNF-α)
및IL-1β
등의염증매 개cytokine
을생성하여염증반응에관여하게된다(Higuchi et al., 1990).
이러한염증매개물질들의형성은arachidonic acid
가cyclooxygenase (COX)
의작용을거쳐leukotriene, throm- boxane, prostaglandin
등으로바뀌는과정및NO
의대량생성 에관여하여염증매개에역할을하며,
숙주에치명적인결과를 초래한다고알려져있다(Jeong et al., 2014).
이와같은NO
및 염증매개cytokine
은염증반응과밀접하게연결되어있으며,
이들의생성을억제하고조절할수있는물질은염증질환의치 료제및예방제로서활용될수있다(Cho et al., 2012).
지금까지 염증질환치료제로서주로사용된스테로이드및비스테로이 드성항염증제는부작용발생우려로인하여장기간사용이어 려워이를대체하기위한천연물유래항염증제의개발이많이 이루어지고있는실정이다(Kang et al., 2014).
이에 본 연구에서는 갈조류의 세포벽 점질 다당류이며 많 은기능성이 알려진알긴산을 이전연구에서
(Sunwoo et al., 2013)
보고된 알긴산분해능이 높은Shewanella oneidensis
PKA1008
유래조효소와반응시켜생성된알긴산올리고당의항염증활성을확인하고산업적이용가능성에대하여알아보 고자한다
.
재료 및 방법
시험균주
본 실험에서 사용한균주는부산연안송정 앞바다에서사 멸기에접어들어 분해가진행중인 녹조류구멍갈파래
(Ulva
pertusa)
를 채집하여 이로부터획득한 알긴산분해능이 뛰어난
S. oneidensis PKA1008
균주를이용하였다(Sunwoo et al., 2013).
조효소액 제조
조효소액은
S. oneidensis PKA1008
를marine broth (Difco, Sparks, MD, USA)
배지를이용하여30°C
에서24
시간배양후,
원심분리기(Supra 30K, Hanil Sciecne Co., Korea)
를이용하여4℃
에서10,000 g
로30
분간원심분리하여상층액으로하였다. 알긴산 올리고당 제조
알긴산
(7%)
과조효소액을1:1 (w/v)
로12 h
간격으로0-60 h
동안반응시켰다.
각시간별로반응이끝난후, 95-100℃
끊 는물에서10
분간반응시켜효소를불활성화시켰다.
그런다 음, 10,000 g, 10 min, 4℃
에서원심분리하여단백질을침전시 켜제거한후상층액을알긴산올리고당으로이용하였으며,
동결건조후
-20℃
에서보관하며사용하였다.
반응시간별알긴산 올리고당으로의 분해 정도는
thin-layer chromatography (TLC)
를이용하여확인하였으며, silica gel F
254plate
를이용하 여sample 3 μL
씩을spotting
하고1-butanol:acetic acid:water (2:1:1 v/v/v)
전개액을이용하여전개한다음silica gel plate
에10%
황산첨가에탄올용액을분무한후110℃
에서20
분간 가열하였다. Standard mixture
는cellooligosaccharide
를사용 하였으며, cellobiose, cellotriose, cellotetraose, cellopentaose, cellohexaose
는Megazyme (Megazyme Co., Wicklow, Ire- land)
및glucose
는Sigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis,
MO, USA)
에서구입하여사용하였다.
세포배양
Murine
의대식세포주인RAW 264.7
세포는한국세포주은행(KCLB 40071)
에서분양받아사용하였으며, DMEM
에10%
inactivated fetal bovine serum
과1% penicillin-streptomycin
을첨가한배지를배양액으로37℃, 5% CO
2 조건에서배양하 였다.
실험과정의모든세포는80-90%
정도의밀도로자랐을 때계대배양하였고, 20 passages
를넘기지않은세포만사용 하였다.
실험동물
마우스귀조직관찰실험에서생후
8
주령의수컷, ICR
마우 스를오리엔트바이오(Seongnam, Korea)
에서구입하여사용하 였으며마우스는온도20±2°C,
습도50±10%, 12 h
명암주기 가유지되는동물사육실에서1
주일간예비사육한후실험에 사용하였다.
본실험은부경대학교동물실험윤리위원회로부터 동물실험승인을받아수행하였다(
승인번호2014-01).
세포 독성 측정
시료의세포독성을평가하기위해
Park et al. (2006)
의방법을 약간변형하여MTT assay
를실시하였다. RAW 264.7 cell
을1×10
6cells/mL
농도로well plate
에분주하고20 h
전배양후,
1 μg/mL
의LPS
와알긴산올리고당(10, 50, 100 μg/mL)
을첨가하여
37℃, 5% CO
2incubator (MCO-15AC, Sanyo, Osaka, Japan)
에서22 h
본배양하였다.
배양후5 mg/mL MTT (thia- zol blue tetrazolium bromide, Sigma-Aldrich Chemical Co.)
용액을첨가하고2 h
재배양하였다.
이를4℃, 879 g
에서10
분 간원심분리(UNION 32R, Hanil Co., Incheon, Korea)
하여상 층액을제거하였다.
그후,
각well
에DMSO
를첨가하고이를microplate reader(Model 550, Bio-rad, Richmond, CA, USA)
를이용하여540 nm
에서흡광도[optical density (O.D.)]
를측 정하였다.
세포증식능은다음식에의해계산하였다.
Proliferation index (%) = (sample O.D./ control O.D.)×100 Nitric oxide 생성량 측정
NO
의농도는배양액내의nitrite
농도를griess
반응을이용 하여측정하였다(Lee et al., 2000). RAW 264.7 cell
은DMEM
배지를이용하여2.5×10
5cells/mL
로조절한후24 well plate
에접종하고5% CO
2incubator (MCO-15AC, Sanyo, Osaka, Japan)
에서20 h
전배양하였다.
세포에1 μg/mL
의LPS
와10, 50, 100 μg/mL
의농도로알긴산올리고당을각각처리하여24 h
재배양하였다.
배양액의상층액을얻은후,
동량의griess
시 약(1% sulfanilamide + 0.1% naphthylendiamine dihydrochlo- ride, 1:1)
을첨가하여실온에서10
분간반응시키고, microplate reader (Model 550, Bio-rad)
를이용하여540 nm
에서흡광도 를측정하였다.
세포배양액내NO
의농도는sodium nitrite (NaNO
2)
의농도별표준곡선과비교하여산출하였다.
염증 관련 cytokines 분비량 측정
염증관련
cytokine
의분비량을측정하기위해RAW 264.7 cell
을DMEM
배지를이용하여2.5×10
5cells/mL
로조절한 후24 well plate
에접종하고5% CO
2incubator (MCO-15AC, Sanyo, Osaka, Japan)
에서18 h
전배양한후, 1 μg/mL
의LPS
와10, 50, 100 μg/mL
의알긴산올리고당을처리하여12 h
재배 양하였다.
세포배양액내의TNF-α, IL-6
및IL-1β cytokine
의 분비량을ELISA kit (Mouse ELISA set, BD Bioscience, San Diego, CA, USA)
를이용하여측정하였다.
이를위해ELISA microplate
에capture antibody
로anti-mouse TNF-α, IL-6
및IL-1β
를분주하여4℃
에서하룻밤동안coating
시켰다.
이를0.05% Tween 20
이포함된PBST
로세척하고10% FBS
용액 으로blocking
하였다. PBST
로세척한뒤,
각microplate
에배 양상층액을분주하고실온에서2 h
반응시켰다.
다시PBST
로 세척한뒤희석한biotinylated anti-mouse TNF-α, IL-6 detec- tion antibody
와streptavidin-horseradish peroxidase conjugate
를첨가하여실온에서1 h
반응시켰다. IL-1β
의경우, biotinyl- ated anti-mouse IL-1β detection antibody
를첨가하고1 h
반 응후, streptavidin-horseradish peroxidase conjugate
를첨가하 여30
분반응시켰다.
그후,
이를다시PBST
로세척한다음, OPD
용액을첨가하여실온에서30
분동안암반응시켰다. 2 N
H
2SO
4로반응을종료시킨후, microplate reader (Model 550, Bio-rad)
를이용하여490 nm
에서흡광도를측정하였다. iNOS, COX-2 및 NF-κB 발현량 측정
알긴산 올리고당이 세포질내 생성되는
iNOS, COX-2
및NF-κB
의 발현량에 미치는 영향을 알아보기 위하여RAW
264.7
세포를배양하였다.
배양이끝난세포를수집하여3
회phosphate buffered saline (PBS)
으로세척한후, Sheeba and Asha (2009)
의방법에따라iNOS
및COX-2
의경우cytosol lysis buffer [50 mM HEPES (pH 7.4), 150 mM NaCl, 5 mM EDTA, 1% deoxycholate, 5 mM phenylmethylsulfonyl fluo- ride, 1 μg/mL aprotinin, 1% Triton X-100, 0.1% NP-40
을이용 하였으며, NF-κB
의경우nucleus lysis buffer (10 mM HEPES, 100 mM NaCl, 1.5 mM MgCl
2, 0.1 mM EDTA, 0.1 mM di- tiotreitol)
를첨가하여30
분간4°C
에서lysis
시킨후15,520 g
에 서20
분간원심분리하여세포막성분등을제거하였다. BCA protein assay kit (Pierce, Rockford, IL, USA)
을사용하여단 백질을정량하였으며, 30 μL
의lysate
를Laemmli (1970)
의방 법을 사용하여10% SDS-PAGE
로분리하였다.
분리된단백 질은Towbin et al. (1979)
의방법을참고하여polyvinylidene difluoride membrane (Bio-Rad)
에1
시간 동안전사시켜5%
skim milk
가포함된tris buffered saline (TBSS, pH 7.5)
용액 으로상온에서2
시간동안blocking
하였다. iNOS, COX-2
및NF-κB
의발현량을검토하기위한항체로는anti-mouse iNOS, COX-2
및NF-κB
를사용하여1:500
으로희석하고상온에서2
시간반응시킨후TBSS
로3
회세정하였다. 2
차항체로horse- radish peroxidase
가결합된anti-mouse IgG
및anti-rabbit IgG
를1:2,000
으로희석하여상온에서1
시간반응시킨다음TBSS
로3
회세정하여ECL
기질과1-3
분간반응후각각의단백질밴 드는Gene tool (GeneGnome5, Syngene, Cambridge, UK)
을 이용하여가시화하였다.
귀부종 측정 및 조직 관찰
알긴산올리고당의항염증효과를
in vivo
상에서알아보기위 하여Kim et al. (2002)
과Saraiva et al. (2011)
의방법에의거 하여귀부종억제율을측정하고조직관찰을실시하였다.
생후8
주령의수컷, ICR
마우스에알긴산0 h,
알긴산올리고당(36
h)
시료를10, 50
및250 mg/kg·body weight
농도로200 μL
씩경구투여하고한시간후오른쪽귀에2.5% croton oil
을20
μL/ear
농도로도포하였다.
도포5
시간후귀두께를측정하였 고croton oil
의처리로귀두께가증가한것을부종의형성으로 간주하였다.
귀조직관찰은ICR
마우스의오른쪽귀에샘플을100 mg/mL
농도로20 μL
씩도포하고15
분뒤, 5% croton oil
을20 μL
씩도포하였다. 6
시간뒤, diethylether
로마취사시키 고,
귀조직을절제하여10% formaldehyde
에72 h
고정하였다.
고정후파라핀블록을만들어박편을제조하고hematoxylin-
eosin (H&E)
및toluidine-blue (T&B)
염색을하여조직을관알긴산 올리고당의 항염증 효과
891
찰하였다
.
Edema formation (%) = Sample
의귀두께/ Control
의귀두 께×100
통계처리
실험결과의통계처리는
SAS program (Statistical analytical system V8.2, SAS Institute Inc., Cary, NC, USA)
을이용하여 평균값을분산분석한후, Duncan
의다중검정법으로P<0.05
수 준에서항목들간의유의적차이를검정하였다.
결과 및 고찰
반응시간에 따른 조효소에 의한 알긴산 분해 정도 S. oneidensis PKA1008
균주가생산하는조효소액을알긴산 에처리하였을시알긴산이분해되어올리고당이생성되는지를 확인하기위하여TLC
분석을실시하였다. 0-60 h
까지분해정 도를살펴본결과(Fig. 1),
알긴산과조효소액반응12
시간까지 는알긴산이분해되지않았으나,
반응24 h
부터분해가진행되 어36 h
까지는trisaccharide
와pentasaccharide
로분해되었으 며,
반응48 h
이후부터는monosaccharide
까지분해됨을확인 하였다.
따라서S. oneidensis PKA 1008
이생산하는조효소액 은알긴산을단당및올리고당으로분해시키는것을확인하였 으며,
각시간별시료들을이용하여항염증효과를측정하였다. 세포독성 측정
0-60 h
동안분해시킨알긴산올리고당을대식세포에대한세포독성을알아보고항염증효과실험을위한농도조건설정을 위하여
RAW 264.7
세포에대해MTT assay
를실시하였다.
시료를
10, 50
및100 μg/mL
농도로첨가하여실험한결과(Fig.
2), RAW 264.7
세포의증식능이모든처리농도에서PBS
처 리구와유의적인차이를보이지않아세포독성을가지지않음 을확인하였다.
따라서이후의RAW 264.7
세포를이용한항염 증효과실험은10, 50
및100 μg/mL
의농도로처리하여실험 을진행하였다.
Nitric Oxide 생성량 측정
NO
는인체내생리적이나병적인반응에서중요한물질로서 체내염증반응시대식세포와같은면역세포에서iNOS
에의해L
-arginine
이L-citrulline
으로전환되는과정에서주로생성된다(Lee et al., 2006).
적절한수준에서는혈소판억제,
면역조절,
신경전달,
혈관확장등의역할을하지만과도한NO
의증가는peroxynitrite, nitrogen dioxide
와같은유해물질을생성하여면 역질환을포함한관절염,
기관지염,
다발성경화증과같은병적 반응을일으킨다(Jeong et al., 2012; Kim et al., 2012).
또한미 토콘드리아로부터cytochrome C, apoptosis inducing factor
를 방출시켜세포자연사를일으키기도한다(Hippeli and Elastner, 1999). 0-60 h
동안분해시킨알긴산올리고당처리에의한NO
생성억제효과를살펴보기위하여RAW 264.7
세포를LPS
로 활성화시켰다.
그후알긴산올리고당시료를10, 50
및100 μg/
mL
농도로처리하여생성된NO
를griess
시약을이용하여측 정하였다(Fig. 3). PBS
처리구에서는5.88±0.13 μM
로낮은 분비를보였으나, LPS
자극에의해55.31±1.22 μM
로분비량 이약10
배증가하였다.
반응시간별NO
분비량은24 h
처리이Fig. 1. TLC analysis of alginate oligosaccharides obtained from crude alginate degrading enzyme in S. oneidensis PKA 1008 with various incubation time. Reaction time : lane 1, standard; lane 2.
0 h; lane 3, 12 h; lane 4, 24 h; lane 5, 36 h; lane 6, 48 h, lane 7, 60 h. Standard mixture of monomer glucose, dimer cellubiose, trimer cellotriose, tetramer cellotetraose, pentamer cellopentaose, and hexamer cellohexaose.
Time of enzyme reaction
PBS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h
0 20 40 60 80 100
120 10 μg/mL
50 μg/mL 100 μg/mL
10 μg/mL 50 μg/mL 100 μg/mL ND
Time of enzyme reaction
PBS LPS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h
Nitric Oxide (μM)Proliferation index (%)
0 10 20 30 40 50 60 70
a A
d F
b bC b b c c
D E D E
c
f d e de
Bb a
g
1 2 3 4 5 6 7 1 Monomer
Dimer Trimer Tetramer Pentamer Hexamer
% Edema formation
0 20 40 60 80 100 120
a
d f
b c
d b
d e
10 50 10 50 250 10 50 250 mg/kg Control
Prednisolone 0 h sample 36 h sample
Fig. 2. Effect of alginate (0 h) and alginate oligosaccharides (12, 24, 36, 48, and 60 h) on the proliferation of RAW 264.7 cells. Cells were incubated in the presence of samples (10, 50, and 100 μg/
mL) for 24 h. Cell proliferation was determined by MTT assay.
Proliferation index (%) = (sample O.D./ control O.D.)×100. ND:
not significantly different. Data represent the mean ± S.D. from three experiments.
Time of enzyme reaction
PBS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h
0 20 40 60 80 100
120 10 μg/mL
50 μg/mL 100 μg/mL
10 μg/mL 50 μg/mL 100 μg/mL ND
Time of enzyme reaction
PBS LPS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h
Nitric Oxide (μM)Proliferation index (%)
0 10 20 30 40 50 60 70
a A
d F
b bC b b c c
D E D E
c
f d e de
Bb a
g
1 2 3 4 5 6 7 1 Monomer
Dimer Trimer Tetramer Pentamer Hexamer
% Edema formation
0 20 40 60 80 100 120
a
d f
b c
d b
d e
10 50 10 50 250 10 50 250 mg/kg Control
Prednisolone 0 h sample 36 h sample
김민지
ㆍ
배난영ㆍ
박시우ㆍ
김꽃봉우리ㆍ
박지혜ㆍ
박선희ㆍ
안동현892
후에
, 50-100 μg/mL
농도에서알긴산(0 h)
시료와비교시농 도의존적으로감소하는것을확인하였다.
특히, 36 h
반응시 킨알긴산올리고당시료가100 μg/mL
농도에서30.93±0.88 μ M
의분비량을보이며LPS
단독처리구에비해44%
억제율 을나타내가장높은NO
분비억제효과를가지는것을확인하 였다.
이는24 h
이후알긴산이trisaccharide
와pentasaccharide
로, 48
시간이후부터monosaccharide
로알긴산올리고당화에 따른NO
생성억제효과로사료된다.
이와유사한결과로Yang et al. (2010)
은키토산유래올리고당이NO
분비를농도의존적 으로감소시켰으며,
분자량이작을때보다분자량이더높은경 우에조금더NO
분비를억제시켰다고보고하였다.
염증 관련 cytokines 분비량 측정
대식세포는
LPS
와 같은 항원의 자극을 받아 활성화 되면TNF-α, IL-6
및IL-1β
등의분비를촉진하여면역반응을조절한다
. IL-1β
는 국소염증반응을 매개하며,
종양괴사인자인TNF-α
는종양세포를파괴시키는물질로잘알려져있다(Din-
arello et al., 1990; Stankiewicz et al., 2002).
또한, IL-6
는T
세 포의활성화및염증매개물질의발현을통해후천성면역을개 시하는물질이다(Liu et al., 1998).
따라서본연구에서는,
알긴 산올리고당화시료의염증성cytokine
의분비에대한억제효과 를살펴보았다.
분비량을측정한결과(Fig. 4),
시료를10, 50
및100 μg/mL
농도로처리시농도의존적으로각각의cytokine
의 분비가유의적으로억제됨을확인하였다. TNF-α
의경우0-60
h
샘플이10-50 μg/mL
농도에서는분비억제에큰효과가없 었으나, 12-36 h
시료가100 μg/mL
농도에서LPS
단독처리구와비교시약
30%
정도로분비억제효과가가장크게나타났다
. IL-1β
의경우에는0
및12 h
시료에서는분비억제효과가크지않았으나
, 24 h
이후부터분비감소에효과를보이는것으로나타났다
. 100 μg/mL
농도에서는24-60 h
샘플이유의적인 차이가없었으나, 36 h
시료가10
및50 μg/mL
농도에서다른 시료에비해분비억제효과가가장좋았으며,
약30%
및40%
정도의분비감소효과를나타냈다
. IL-6
의경우LPS
단독처리 시557.52±18.48 pg/mL
으로분비량이증가하였고,
모든시료 처리에의해분비감소효과를나타내었지만, 24-60 h
처리시 분비량억제에더효과를나타내었으며,
특히, 48-60 h
시료가100 μg/mL
농도에서약60%
정도의감소효과를나타내었다. Yoon et al. (2007)
은키토산올리고당이TNF-a
와IL-6
의분비 량을효과적으로감소시켰다고보고하였다. Yang et al. (2010)
의연구에서는키토산올리고당의분자량별항염증효과에대 해측정한결과, IL-1β
분비량감소에효과가있었지만,
분비량 감소효과가분자량이작은경우(1-3 kDa)
에는분비억제에효 과가없었다고보고하여본연구결과와유사하였다.
이상의결 과,
조효소와알긴산을시간별로반응시킨결과, 36 h
시료에서 가장좋은항염증효과를나타냄을확인하였다.
iNOS, COX-2 발현에 미치는 영향
iNOS
는 세포내 존재하지 않으나 외부자극에 의해 유도된iNOS
는장시간다량의NO
분비를촉진하며,
조직의손상,
혈 관투과성,
부종등의염증반응을유발하는염증매개성물질들 의과잉생산에큰영향을미친다(Guha and Mackman, 2001).
또한
COX-2
는cytokine,
자외선,
세균성내독소등에의해과 발현되어각종퇴행성질환의발병과진행에영향을미치며,
특 히체내에발생되는prostaglandin E
2(PGE
2)
등의염증인자등 과관련되어염증반응을촉진한다(Chun and Surh, 2004).
따라 서알긴산올리고당화시료가세포질내에서의iNOS
및COX- 2
단백질발현에미치는영향을알아보기위해western blot
방 법을시행하였다(Fig. 5).
앞선NO
와pro-inflammatory cyto- kine
의분비억제결과에서36 h
시료가가장좋은항염증효과 를나타내어iNOS
및COX-2
의발현변화를알아보았다.
그결 과, RAW 264.7
세포에LPS (1 μg/mL)
처리하였을경우iNOS
및
COX-2
의단백질발현이증가하였고알긴산올리고당화시료
10 μg/mL
에서는발현의변화가거의없었지만, 50 μg/mL
및100 μg/mL
에서억제되는것을확인하였다.
이는36 h
시료 에의한NO
분비억제가iNOS
활성저해에의한것임을확인 하였고,
또한COX-2
의발현도저해됨을 확인하여COX-2
에 의한염증조절에도효과를나타낼것으로사료된다. NF-κB p65 활성화에 미치는 영향
LPS, TNF-α
또는외부자극에의해활성화된NF-κB p65
는 세포핵내로이동되어전사조절인자로서작용하면서iNOS
및Time of enzyme reaction
PBS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h
0 20 40 60 80 100
120 10 μg/mL
50 μg/mL 100 μg/mL
10 μg/mL 50 μg/mL 100 μg/mL ND
Time of enzyme reaction
PBS LPS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h
Nitric Oxide (μM)Proliferation index (%)
0 10 20 30 40 50 60 70
a A
d F
b bC b b c c
D E D E
c
f d e de
Bb a
g
1 2 3 4 5 6 7 1 Tetramer
Pentamer Hexamer
% Edema formation
0 20 40 60 80 100 120
a
d f
b c
d b
d e
10 50 10 50 250 10 50 250 mg/kg Control
Prednisolone 0 h sample 36 h sample
Fig. 3. Inhibitory effect of alginate (0 h) and alginate oligosaccha- rides (12, 24, 36, 48, and 60 h) on the production of nitric oxide in LPS-induced RAW 264.7 cells. Cells were incubated in the pres- ence of LPS (1 μg/mL) alone or in combination with samples (10, 50, and 100 μg/mL) for 24 h. The culture media of the treated cells were used to measure NO levels. Means with different letters (a-d : 10 μg/mL, A-F : 50 μg/mL, a-g : 100 μg/mL) above the bars are significantly different (P<0.05).