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Anti-Inflammatory Effect of Alginate Oligosaccharides Produced by an Alginate-Degrading Enzyme from Shewanella oneidensis PKA1008 on LPS-Induced RAW 264.7 Cells

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Academic year: 2021

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888

Copyright © 2015 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815

서 론

해조류는육상생물과는다른독특한서식환경조건으로인하 다양한생리활성물질을함유하고있으며

,

현재해조류 기능성소재로부터 항종양

(Lee et al., 1992),

항바이러스

(Kim et al., 2010),

항혈액응고

(Scot et al., 1987)

면역증강

(Cho et al., 1990)

등의연구가활발히이루어지고있다

(Kim et al., 2011).

이러한해조류중의대표적인기능성물질로세포 벽을구성하는점질다당류인알긴산

,

푸코이단

,

한천카라 기난등이있다

.

갈조류의세포벽구성점질다당류인 긴산은

β-D-mannuronic acid (M)

α-L-guluronic acid (G)

1,4-glycoside

결합으로노르말사슬분자를이루고존재하고 으며

,

해조류의종류

,

계절조체의부위에따라

M

G

비율이달라지고

,

결합순서구조에따라

,

형성능

,

흡착

,

점도등의물리적특징이변하는것으로알려져있다

(Horn et al., 1999; Moen et al., 1999; Zvyagintseva et al., 2005).

이와같은다양한기능성이알려진알긴산의이용을확대하 위해식품

,

화장품의료용소재측면에서많은연구가 행되고있지만

,

상온에서 용해시간이길고

,

알코올류함유 매에는난용이며

,

농도가높아짐에따라고점도특성을보이는 단점으로인하여산업적으로이용하기에제한이따르고있다

(Cho et al., 2003).

이러한단점을보완하고활용성을높이기 알긴산을저분자화시켜올리고당으로제조함으로써고점도

문제를해결하기위한연구가활발히진행되고있다

(Lee et

al., 1996; Lee et al., 1993).

이러한방법에는물리화학적 소적가수분해방법이있으며

,

물리화학적분해방법인고온고

Shewanella oneidensis PKA1008 유래 알긴산 분해 효소에 의해 제조된 알긴산 올리고당의 항염증 효과

김민지·배난영·박시우·김꽃봉우리

1

·박지혜 ·박선희·안동현*

부경대학교 식품공학과/식품연구소, 1부경대학교 수산과학연구소

Anti-Inflammatory Effect of Alginate Oligosaccharides Produced by an Alginate-Degrading Enzyme from Shewanella oneidensis PKA1008 on

LPS-Induced RAW 264.7 Cells

Min-Ji Kim, Nan-Yong Bae, Si-Woo Bark, Koth-Bong-Woo-Ri Kim1, Ji-Hye Park, Sun-Hee Park and Dong-Hyun Ahn*

Department of Food Science & Technology/Institute of Food Science, Pukyong National University, Busan 48513, Korea

1Institute of Fisheries Sciences, Pukyong National University, Busan 46041, Korea

The anti-inflammatory effect of alginate oligosaccharides on LPS-induced RAW 264.7 cells was investigated at dif- ferent time points (0–60 h). The alginate oligosaccharides were produced by an alginate-degrading enzyme from Shewanella oneidensis PKA1008. The alginate oligosaccharides decreased the production of nitric oxide and pro- inflammatory cytokines [tumor necrosis factor-α, interleukin (IL)-1β, and IL-6] in a dose-dependent manner. The alginate oligosaccharides showed peak anti-inflammatory activity after 36 h of incubation; at that time point, reduced protein expression of NF-κB p65, iNOS, and COX-2 was detected. Furthermore, the alginate oligosaccharide treat- ment reduced the formation of ear edema at 36 h compared to samples examined at 0 h when the oligosaccharides were administered at 50 and 250 mg/kg body weight, as well as dermal thickness and mast cell numbers in a histo- logical analysis. These results suggest that alginate oligosaccharides are a promising anti-inflammatory agent.

Key words: Alginate oligosaccharides, Anti-inflammation, Ear edema, NF- kappaB

This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2015.0888 Korean J Fish Aquat Sci 48(6) 888-897, December 2015

Received 11 November 2015; Revised 18 December 2015; Accepted 22 December 2015

*Corresponding author: Tel: +82. 51. 629. 5831 Fax: +82. 51. 629. 5824 E-mail address: [email protected]

(2)

알긴산 올리고당의 항염증 효과

889

(Kim et al., 2010),

방사선처리

(Song et al., 2008),

칼리처리

(Lee et al., 1975)

방법이있다

.

물리화학적처리방법 처리시간이짧고간단하지만

,

또는알칼리처리를통해 성되는독성부산물의작용중화발생하는등에의해 영향을받을있으며

,

정제가어렵다는단점이있다

.

반면

,

소적가수분해방법은물리화학적방법에비하여비용이비싸 지만목적으로하는올리고당생성에유리하며다른부산물의 생성을줄일있는장점이있다

.

따라서알긴산의효소적 수분해를통한올리고당이최근산업적으로자주이용

(Uo et al., 2006)

되고있으며

,

고점도문제의해결뿐만아니라항산화

(Bark et al., 2015),

항염증

(Iwamoto et al., 2003)

등의기능성 증진에관한연구가보고되고있다

.

염증반응은물리적

,

화학적자극에의해손상된부위를회복 시키는생체방어기작중의하나를말하며매개인자의활성화 따라

,

부종

,

홍반등의질병반응을유발한다

(Zamora et al., 2000).

대식세포

(macrophage)

lipopolysaccharide (LPS)

자극에의하여활성화되어

nitric oxide (NO), interleukin-6 (IL-6), tumor necrosis factor-α (TNF-α)

IL-1β

등의염증

cytokine

생성하여염증반응에관여하게된다

(Higuchi et al., 1990).

이러한염증매개물질들의형성은

arachidonic acid

cyclooxygenase (COX)

작용을거쳐

leukotriene, throm- boxane, prostaglandin

등으로바뀌는과정

NO

대량생성 관여하여염증매개에역할을하며

,

숙주에치명적인결과를 초래한다고알려져있다

(Jeong et al., 2014).

이와같은

NO

염증매개

cytokine

염증반응과밀접하게연결되어있으며

,

이들의생성을억제하고조절할있는물질은염증질환의 료제예방제로서활용될있다

(Cho et al., 2012).

지금까지 염증질환치료제로서주로사용된스테로이드비스테로이 드성항염증제는부작용발생우려로인하여장기간사용이 려워이를대체하기위한천연물유래항염증제의개발이많이 이루어지고있는실정이다

(Kang et al., 2014).

이에 연구에서는 갈조류의 세포벽 점질 다당류이며 기능성이 알려진알긴산을 이전연구에서

(Sunwoo et al., 2013)

보고된 알긴산분해능이 높은

Shewanella oneidensis

PKA1008

유래조효소와반응시켜생성된알긴산올리고당의

항염증활성을확인하고산업적이용가능성에대하여알아보 고자한다

.

재료 및 방법

시험균주

실험에서 사용한균주는부산연안송정 앞바다에서 멸기에접어들어 분해가진행중인 녹조류구멍갈파래

(Ulva

pertusa)

채집하여 이로부터획득한 알긴산분해능이 뛰어

S. oneidensis PKA1008

균주를이용하였다

(Sunwoo et al., 2013).

조효소액 제조

조효소액은

S. oneidensis PKA1008

marine broth (Difco, Sparks, MD, USA)

배지를이용하여

30°C

에서

24

시간배양

,

원심분리기

(Supra 30K, Hanil Sciecne Co., Korea)

이용하여

4℃

에서

10,000 g

30

분간원심분리하여상층액으로하였다

. 알긴산 올리고당 제조

알긴산

(7%)

조효소액을

1:1 (w/v)

12 h

간격으로

0-60 h

동안반응시켰다

.

시간별로반응이끝난

, 95-100℃

물에서

10

분간반응시켜효소를불활성화시켰다

.

그런

, 10,000 g, 10 min, 4℃

에서원심분리하여단백질을침전시 제거한상층액을알긴산올리고당으로이용하였으며

,

결건조

-20℃

에서보관하며사용하였다

.

반응시간별알긴

올리고당으로의 분해 정도는

thin-layer chromatography (TLC)

이용하여확인하였으며

, silica gel F

254

plate

이용하

sample 3 μL

씩을

spotting

하고

1-butanol:acetic acid:water (2:1:1 v/v/v)

전개액을이용하여전개한다음

silica gel plate

10%

황산첨가에탄올용액을분무한

110℃

에서

20

분간 가열하였다

. Standard mixture

cellooligosaccharide

사용 하였으며

, cellobiose, cellotriose, cellotetraose, cellopentaose, cellohexaose

Megazyme (Megazyme Co., Wicklow, Ire- land)

glucose

Sigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis,

MO, USA)

에서구입하여사용하였다

.

세포배양

Murine

대식세포주인

RAW 264.7

세포는한국세포주은행

(KCLB 40071)

에서분양받아사용하였으며

, DMEM

10%

inactivated fetal bovine serum

1% penicillin-streptomycin

첨가한배지를배양액으로

37℃, 5% CO

2 조건에서배양하 였다

.

실험과정의모든세포는

80-90%

정도의밀도로자랐을 계대배양하였고

, 20 passages

넘기지않은세포만사용 하였다

.

실험동물

마우스조직관찰실험에서생후

8

주령의수컷

, ICR

마우 스를오리엔트바이오

(Seongnam, Korea)

에서구입하여사용하 였으며마우스는온도

20±2°C,

습도

50±10%, 12 h

명암주기 유지되는동물사육실에서

1

주일간예비사육한실험에 사용하였다

.

실험은부경대학교동물실험윤리위원회로부터 동물실험승인을받아수행하였다

(

승인번호

2014-01).

세포 독성 측정

시료의세포독성을평가하기위해

Park et al. (2006)

방법을 약간변형하여

MTT assay

실시하였다

. RAW 264.7 cell

1×10

6

cells/mL

농도로

well plate

분주하고

20 h

배양

,

1 μg/mL

LPS

알긴산올리고당

(10, 50, 100 μg/mL)

(3)

가하여

37℃, 5% CO

2

incubator (MCO-15AC, Sanyo, Osaka, Japan)

에서

22 h

배양하였다

.

배양

5 mg/mL MTT (thia- zol blue tetrazolium bromide, Sigma-Aldrich Chemical Co.)

용액을첨가하고

2 h

배양하였다

.

이를

4℃, 879 g

에서

10

원심분리

(UNION 32R, Hanil Co., Incheon, Korea)

하여 층액을제거하였다

.

,

well

DMSO

첨가하고이를

microplate reader(Model 550, Bio-rad, Richmond, CA, USA)

이용하여

540 nm

에서흡광도

[optical density (O.D.)]

정하였다

.

세포증식능은다음식에의해계산하였다

.

Proliferation index (%) = (sample O.D./ control O.D.)×100 Nitric oxide 생성량 측정

NO

농도는배양액내의

nitrite

농도를

griess

반응을이용 하여측정하였다

(Lee et al., 2000). RAW 264.7 cell

DMEM

배지를이용하여

2.5×10

5

cells/mL

조절한

24 well plate

접종하고

5% CO

2

incubator (MCO-15AC, Sanyo, Osaka, Japan)

에서

20 h

배양하였다

.

세포에

1 μg/mL

LPS

10, 50, 100 μg/mL

농도로알긴산올리고당을각각처리하여

24 h

배양하였다

.

배양액의상층액을얻은

,

동량의

griess

(1% sulfanilamide + 0.1% naphthylendiamine dihydrochlo- ride, 1:1)

첨가하여실온에서

10

분간반응시키고

, microplate reader (Model 550, Bio-rad)

이용하여

540 nm

에서흡광도 측정하였다

.

세포배양액

NO

농도는

sodium nitrite (NaNO

2

)

농도별표준곡선과비교하여산출하였다

.

염증 관련 cytokines 분비량 측정

염증관련

cytokine

분비량을측정하기위해

RAW 264.7 cell

DMEM

배지를이용하여

2.5×10

5

cells/mL

조절한

24 well plate

접종하고

5% CO

2

incubator (MCO-15AC, Sanyo, Osaka, Japan)

에서

18 h

전배양한

, 1 μg/mL

LPS

10, 50, 100 μg/mL

알긴산올리고당을처리하여

12 h

재배 양하였다

.

세포배양액내의

TNF-α, IL-6

IL-1β cytokine

분비량을

ELISA kit (Mouse ELISA set, BD Bioscience, San Diego, CA, USA)

이용하여측정하였다

.

이를위해

ELISA microplate

capture antibody

anti-mouse TNF-α, IL-6

IL-1β

분주하여

4℃

에서하룻밤동안

coating

시켰다

.

이를

0.05% Tween 20

포함된

PBST

세척하고

10% FBS

용액 으로

blocking

하였다

. PBST

세척한

,

microplate

상층액을분주하고실온에서

2 h

반응시켰다

.

다시

PBST

세척한희석한

biotinylated anti-mouse TNF-α, IL-6 detec- tion antibody

streptavidin-horseradish peroxidase conjugate

첨가하여실온에서

1 h

반응시켰다

. IL-1β

경우

, biotinyl- ated anti-mouse IL-1β detection antibody

첨가하고

1 h

, streptavidin-horseradish peroxidase conjugate

첨가하

30

반응시켰다

.

,

이를다시

PBST

세척한다음

, OPD

용액을첨가하여실온에서

30

동안암반응시켰다

. 2 N

H

2

SO

4반응을종료시킨

, microplate reader (Model 550, Bio-rad)

이용하여

490 nm

에서흡광도를측정하였다

. iNOS, COX-2 및 NF-κB 발현량 측정

알긴산 올리고당이 세포질 생성되는

iNOS, COX-2

NF-κB

발현량에 미치는 영향을 알아보기 위하여

RAW

264.7

세포를배양하였다

.

배양이끝난세포를수집하여

3

phosphate buffered saline (PBS)

으로세척한

, Sheeba and Asha (2009)

방법에따라

iNOS

COX-2

경우

cytosol lysis buffer [50 mM HEPES (pH 7.4), 150 mM NaCl, 5 mM EDTA, 1% deoxycholate, 5 mM phenylmethylsulfonyl fluo- ride, 1 μg/mL aprotinin, 1% Triton X-100, 0.1% NP-40

이용 하였으며

, NF-κB

경우

nucleus lysis buffer (10 mM HEPES, 100 mM NaCl, 1.5 mM MgCl

2

, 0.1 mM EDTA, 0.1 mM di- tiotreitol)

첨가하여

30

분간

4°C

에서

lysis

시킨

15,520 g

20

분간원심분리하여세포막성분등을제거하였다

. BCA protein assay kit (Pierce, Rockford, IL, USA)

사용하여 백질을정량하였으며

, 30 μL

lysate

Laemmli (1970)

법을 사용하여

10% SDS-PAGE

분리하였다

.

분리된단백 질은

Towbin et al. (1979)

방법을참고하여

polyvinylidene difluoride membrane (Bio-Rad)

1

시간 동안전사시켜

5%

skim milk

포함된

tris buffered saline (TBSS, pH 7.5)

용액 으로상온에서

2

시간동안

blocking

하였다

. iNOS, COX-2

NF-κB

발현량을검토하기위한항체로는

anti-mouse iNOS, COX-2

NF-κB

사용하여

1:500

으로희석하고상온에서

2

시간반응시킨

TBSS

3

세정하였다

. 2

항체로

horse- radish peroxidase

결합된

anti-mouse IgG

anti-rabbit IgG

1:2,000

으로희석하여상온에서

1

시간반응시킨다음

TBSS

3

세정하여

ECL

기질과

1-3

분간반응각각의단백질 드는

Gene tool (GeneGnome5, Syngene, Cambridge, UK)

이용하여가시화하였다

.

귀부종 측정 및 조직 관찰

알긴산올리고당의항염증효과를

in vivo

상에서알아보기 하여

Kim et al. (2002)

Saraiva et al. (2011)

방법에의거 하여귀부종억제율을측정하고조직관찰을실시하였다

.

생후

8

주령의수컷

, ICR

마우스에알긴산

0 h,

알긴산올리고당

(36

h)

시료를

10, 50

250 mg/kg·body weight

농도로

200 μL

경구투여하고시간오른쪽귀에

2.5% croton oil

20

μL/ear

농도로도포하였다

.

도포

5

시간두께를측정하였

croton oil

처리로두께가증가한것을부종의형성으로 간주하였다

.

조직관찰은

ICR

마우스의오른쪽귀에샘플을

100 mg/mL

농도로

20 μL

도포하고

15

, 5% croton oil

20 μL

도포하였다

. 6

시간

, diethylether

마취사시키

,

조직을절제하여

10% formaldehyde

72 h

고정하였다

.

고정파라핀블록을만들어박편을제조하고

hematoxylin-

eosin (H&E)

toluidine-blue (T&B)

염색을하여조직을

(4)

알긴산 올리고당의 항염증 효과

891

찰하였다

.

Edema formation (%) = Sample

두께

/ Control

×100

통계처리

실험결과의통계처리는

SAS program (Statistical analytical system V8.2, SAS Institute Inc., Cary, NC, USA)

이용하여 평균값을분산분석한

, Duncan

다중검정법으로

P<0.05

준에서항목들간의유의적차이를검정하였다

.

결과 및 고찰

반응시간에 따른 조효소에 의한 알긴산 분해 정도 S. oneidensis PKA1008

균주가생산하는조효소액을알긴산 처리하였을알긴산이분해되어올리고당이생성되는지를 확인하기위하여

TLC

분석을실시하였다

. 0-60 h

까지분해 도를살펴본결과

(Fig. 1),

알긴산과조효소액반응

12

시간까지 알긴산이분해되지않았으나

,

반응

24 h

부터분해가진행되

36 h

까지는

trisaccharide

pentasaccharide

분해되었으

,

반응

48 h

이후부터는

monosaccharide

까지분해됨을확인 하였다

.

따라서

S. oneidensis PKA 1008

생산하는조효소액 알긴산을단당올리고당으로분해시키는것을확인하였 으며

,

시간별시료들을이용하여항염증효과를측정하였다

. 세포독성 측정

0-60 h

동안분해시킨알긴산올리고당을대식세포에대한

포독성을알아보고항염증효과실험을위한농도조건설정을 위하여

RAW 264.7

세포에대해

MTT assay

실시하였다

.

료를

10, 50

100 μg/mL

농도로첨가하여실험한결과

(Fig.

2), RAW 264.7

세포의증식능이모든처리농도에서

PBS

리구와유의적인차이를보이지않아세포독성을가지지않음 확인하였다

.

따라서이후의

RAW 264.7

세포를이용한항염 효과실험은

10, 50

100 μg/mL

농도로처리하여실험 진행하였다

.

Nitric Oxide 생성량 측정

NO

인체생리적이나병적인반응에서중요한물질로서 체내염증반응대식세포와같은면역세포에서

iNOS

의해

L

-arginine

L

-citrulline

으로전환되는과정에서주로생성된다

(Lee et al., 2006).

적절한수준에서는혈소판억제

,

면역조절

,

신경전달

,

혈관확장등의역할을하지만과도한

NO

증가는

peroxynitrite, nitrogen dioxide

같은유해물질을생성하여 역질환을포함한관절염

,

기관지염

,

다발성경화증과같은병적 반응을일으킨다

(Jeong et al., 2012; Kim et al., 2012).

또한 토콘드리아로부터

cytochrome C, apoptosis inducing factor

방출시켜세포자연사를일으키기도한다

(Hippeli and Elastner, 1999). 0-60 h

동안분해시킨알긴산올리고당처리에의한

NO

생성억제효과를살펴보기위하여

RAW 264.7

세포를

LPS

활성화시켰다

.

알긴산올리고당시료를

10, 50

100 μg/

mL

농도로처리하여생성된

NO

griess

시약을이용하여 정하였다

(Fig. 3). PBS

처리구에서는

5.88±0.13 μM

낮은 분비를보였으나

, LPS

자극에의해

55.31±1.22 μM

분비량

10

증가하였다

.

반응시간별

NO

분비량은

24 h

처리

Fig. 1. TLC analysis of alginate oligosaccharides obtained from crude alginate degrading enzyme in S. oneidensis PKA 1008 with various incubation time. Reaction time : lane 1, standard; lane 2.

0 h; lane 3, 12 h; lane 4, 24 h; lane 5, 36 h; lane 6, 48 h, lane 7, 60 h. Standard mixture of monomer glucose, dimer cellubiose, trimer cellotriose, tetramer cellotetraose, pentamer cellopentaose, and hexamer cellohexaose.

Time of enzyme reaction

PBS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h

0 20 40 60 80 100

120 10 μg/mL

50 μg/mL 100 μg/mL

10 μg/mL 50 μg/mL 100 μg/mL ND

Time of enzyme reaction

PBS LPS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h

Nitric Oxide (μM)Proliferation index (%)

0 10 20 30 40 50 60 70

a A

d F

b bC b b c c

D E D E

c

f d e de

Bb a

g

1 2 3 4 5 6 7 1 Monomer

Dimer Trimer Tetramer Pentamer Hexamer

% Edema formation

0 20 40 60 80 100 120

a

d f

b c

d b

d e

10 50 10 50 250 10 50 250 mg/kg Control

Prednisolone 0 h sample 36 h sample

Fig. 2. Effect of alginate (0 h) and alginate oligosaccharides (12, 24, 36, 48, and 60 h) on the proliferation of RAW 264.7 cells. Cells were incubated in the presence of samples (10, 50, and 100 μg/

mL) for 24 h. Cell proliferation was determined by MTT assay.

Proliferation index (%) = (sample O.D./ control O.D.)×100. ND:

not significantly different. Data represent the mean ± S.D. from three experiments.

Time of enzyme reaction

PBS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h

0 20 40 60 80 100

120 10 μg/mL

50 μg/mL 100 μg/mL

10 μg/mL 50 μg/mL 100 μg/mL ND

Time of enzyme reaction

PBS LPS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h

Nitric Oxide (μM)Proliferation index (%)

0 10 20 30 40 50 60 70

a A

d F

b bC b b c c

D E D E

c

f d e de

Bb a

g

1 2 3 4 5 6 7 1 Monomer

Dimer Trimer Tetramer Pentamer Hexamer

% Edema formation

0 20 40 60 80 100 120

a

d f

b c

d b

d e

10 50 10 50 250 10 50 250 mg/kg Control

Prednisolone 0 h sample 36 h sample

(5)

김민지

배난영

박시우

김꽃봉우리

박지혜

박선희

안동현

892

후에

, 50-100 μg/mL

농도에서알긴산

(0 h)

시료와비교 의존적으로감소하는것을확인하였다

.

특히

, 36 h

반응시 알긴산올리고당시료가

100 μg/mL

농도에서

30.93±0.88 μ M

분비량을보이며

LPS

단독처리구에비해

44%

억제율 나타내가장높은

NO

분비억제효과를가지는것을확인하 였다

.

이는

24 h

이후알긴산이

trisaccharide

pentasaccharide

, 48

시간이후부터

monosaccharide

알긴산올리고당화에 따른

NO

생성억제효과로사료된다

.

이와유사한결과로

Yang et al. (2010)

키토산유래올리고당이

NO

분비를농도의존적 으로감소시켰으며

,

분자량이작을때보다분자량이높은 우에조금

NO

분비를억제시켰다고보고하였다

.

염증 관련 cytokines 분비량 측정

대식세포는

LPS

같은 항원의 자극을 받아 활성화 되면

TNF-α, IL-6

IL-1β

등의분비를촉진하여면역반응을

절한다

. IL-1β

국소염증반응을 매개하며

,

종양괴사인자인

TNF-α

종양세포를파괴시키는물질로알려져있다

(Din-

arello et al., 1990; Stankiewicz et al., 2002).

또한

, IL-6

T

포의활성화염증매개물질의발현을통해후천성면역을 시하는물질이다

(Liu et al., 1998).

따라서연구에서는

,

알긴 올리고당화시료의염증성

cytokine

분비에대한억제효과 살펴보았다

.

분비량을측정한결과

(Fig. 4),

시료를

10, 50

100 μg/mL

농도로처리농도의존적으로각각의

cytokine

분비가유의적으로억제됨을확인하였다

. TNF-α

경우

0-60

h

샘플이

10-50 μg/mL

농도에서는분비억제에효과가 었으나

, 12-36 h

시료가

100 μg/mL

농도에서

LPS

단독처리구

비교

30%

정도로분비억제효과가가장크게나타났

. IL-1β

경우에는

0

12 h

시료에서는분비억제효과가

크지않았으나

, 24 h

이후부터분비감소에효과를보이는것으

나타났다

. 100 μg/mL

농도에서는

24-60 h

샘플이유의적인 차이가없었으나

, 36 h

시료가

10

50 μg/mL

농도에서다른 시료에비해분비억제효과가가장좋았으며

,

30%

40%

정도의분비감소효과를나타냈다

. IL-6

경우

LPS

단독처리

557.52±18.48 pg/mL

으로분비량이증가하였고

,

모든시료 처리에의해분비감소효과를나타내었지만

, 24-60 h

처리 분비량억제에효과를나타내었으며

,

특히

, 48-60 h

시료가

100 μg/mL

농도에서

60%

정도의감소효과를나타내었다

. Yoon et al. (2007)

키토산올리고당이

TNF-a

IL-6

분비 량을효과적으로감소시켰다고보고하였다

. Yang et al. (2010)

연구에서는키토산올리고당의분자량별항염증효과에 측정한결과

, IL-1β

분비량감소에효과가있었지만

,

분비량 감소효과가분자량이작은경우

(1-3 kDa)

에는분비억제에 과가없었다고보고하여연구결과와유사하였다

.

이상의

,

조효소와알긴산을시간별로반응시킨결과

, 36 h

시료에서 가장좋은항염증효과를나타냄을확인하였다

.

iNOS, COX-2 발현에 미치는 영향

iNOS

세포내 존재하지 않으나 외부자극에 의해 유도된

iNOS

장시간다량의

NO

분비를촉진하며

,

조직의손상

,

관투과성

,

부종등의염증반응을유발하는염증매개성물질들 과잉생산에영향을미친다

(Guha and Mackman, 2001).

또한

COX-2

cytokine,

자외선

,

세균성내독소등에의해 발현되어각종퇴행성질환의발병과진행에영향을미치며

,

체내에발생되는

prostaglandin E

2

(PGE

2

)

등의염증인자 관련되어염증반응을촉진한다

(Chun and Surh, 2004).

따라 알긴산올리고당화시료가세포질내에서의

iNOS

COX- 2

단백질발현에미치는영향을알아보기위해

western blot

법을시행하였다

(Fig. 5).

앞선

NO

pro-inflammatory cyto- kine

분비억제결과에서

36 h

시료가가장좋은항염증효과 나타내어

iNOS

COX-2

발현변화를알아보았다

.

, RAW 264.7

세포에

LPS (1 μg/mL)

처리하였을경우

iNOS

COX-2

단백질발현이증가하였고알긴산올리고당화

10 μg/mL

에서는발현의변화가거의없었지만

, 50 μg/mL

100 μg/mL

에서억제되는것을확인하였다

.

이는

36 h

시료 의한

NO

분비억제가

iNOS

활성저해에의한것임을확인 하였고

,

또한

COX-2

발현도저해됨을 확인하여

COX-2

의한염증조절에도효과를나타낼것으로사료된다

. NF-κB p65 활성화에 미치는 영향

LPS, TNF-α

또는외부자극에의해활성화된

NF-κB p65

세포내로이동되어전사조절인자로서작용하면서

iNOS

Time of enzyme reaction

PBS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h

0 20 40 60 80 100

120 10 μg/mL

50 μg/mL 100 μg/mL

10 μg/mL 50 μg/mL 100 μg/mL ND

Time of enzyme reaction

PBS LPS 0 h 12 h 24 h 36 h 48 h 60 h

Nitric Oxide (μM)Proliferation index (%)

0 10 20 30 40 50 60 70

a A

d F

b bC b b c c

D E D E

c

f d e de

Bb a

g

1 2 3 4 5 6 7 1 Tetramer

Pentamer Hexamer

% Edema formation

0 20 40 60 80 100 120

a

d f

b c

d b

d e

10 50 10 50 250 10 50 250 mg/kg Control

Prednisolone 0 h sample 36 h sample

Fig. 3. Inhibitory effect of alginate (0 h) and alginate oligosaccha- rides (12, 24, 36, 48, and 60 h) on the production of nitric oxide in LPS-induced RAW 264.7 cells. Cells were incubated in the pres- ence of LPS (1 μg/mL) alone or in combination with samples (10, 50, and 100 μg/mL) for 24 h. The culture media of the treated cells were used to measure NO levels. Means with different letters (a-d : 10 μg/mL, A-F : 50 μg/mL, a-g : 100 μg/mL) above the bars are significantly different (P<0.05).

수치

Fig. 2. Effect of alginate (0 h) and alginate oligosaccharides (12,  24, 36, 48, and 60 h) on the proliferation of RAW 264.7 cells
Fig. 3. Inhibitory effect of alginate (0 h) and alginate oligosaccha- oligosaccha-rides (12, 24, 36, 48, and 60 h) on the production of nitric oxide in  LPS-induced RAW 264.7 cells
Fig. 6. Inhibition of alginate (0 h) and alginate oligosaccharide (36  h) against croton oil-induced mouse ear edema
Fig. 7. Photomicrograph of transverse sections of mice ears sensitized with topical application of croton oil 5% (v/v) in acetone or vehicle  acetone stained with hematoxylin-eosin and toluidine-blue examined under light microscopy (magnification: ×200)

참조

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