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Antioxidant Activity of Flavonoids Isolated from Vitex rotundifolia

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Academic year: 2021

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순비기나무(Vitex rotundifolia)로부터 분리한 플라보노이드 성분의 항산화 활성

김유아 1 ·이정임 2 ·홍주완 2 ·정명은 2 ·서영완 2*

1

(재)대구경북한방산업진흥원 천연물물질은행구축사업단 (712-260) 경상북도 경산시 갑제동 440-22

2

한국해양대학교 해양과학기술대학 해양환경·생명과학부 (606-791) 부산광역시 영도구 동삼동 1

Antioxidant Activity of Flavonoids Isolated from Vitex rotundifolia You Ah Kim 1 , Jung Im Lee 2 , Joo Wan Hong 2 , Myoung Eun Jung 2 , and Youngwan Seo 2*

1 Natural Compounds Bank Establishment Department, DGOM Gyeongbuk 712-260, Korea

2 Division of Marine Environment & Bioscience, College of Ocean Science and Technology, Korea Maritime University, Busan 606-791, Korea

Abstract : The aim of this investigation was to evaluate antioxidant activity of crude extracts from the halophyte Vitex rotundifolia , their solvent fractions, and isolated compounds ( 1-3 ). Antioxidant capacity was determined by measuring DPPH radical, and authentic ONOO

and ONOO

generated from 3- morpholinsydnonimine (SIN-1) in vitro as well as degree of occurrence of intracellular ROS, NO and GSH in mouse macrophage Raw 264.7 cells. From comparative analysis, MeOH extract, n -BuOH, and 85% aq.

MeOH solvent fractions showed significant antioxidant effect in DPPH radical and ONOO

assay systems.

Activity-guided purification of n -BuOH and 85% aq. MeOH fractions led to the isolation of flavonoids 1-3 . Among them, compound 1 exhibited excellent antioxidant effect in all bioassay systems tested. On the other hand, compounds 2 and 3 revealed potent inhibitory effect against ONOO

generated from SIN-1, comparable with the positive control penicillamine.

Key words : Vitex rotundifolia , luteolin, vitexicarpin, artemetin, antioxidant activity

1. 서 론

인체내의과도한산화적스트레스에의해 생성되는 성산소종

[alkoxyl(RO·), hydroperoxyl radical(HOO·), nitric oxide(NO·), peroxynitrite(ONOO )

]

제거는 다양한

형태의항산화물질에의해서이루어지며

,

만병의근원이

되는활성산소종을제거하는항산화제에대한 탐색은

래전부터행해져왔다

(Ames et al. 1993; Kirschvink et al.

2008; Liu et al. 2008).

결과

,

합성항산화제인

butylated hydroxyanisole(BHA)

butylated hydroxytoluene(BHT)

등이개발되어널리사용되고있으나

,

과량섭취야기

되는문제점으로 인하여이를 대체할있는안전한 항산화제의발굴이시급한실정이다

.

이러한연구의

환으로허브와같은식물로부터천연 항산화제를개발하 려는많은연구가수행되었으며결과

lignan, flavonoid

폴리페놀 계열의많은화합물이 높은항산화효과를

*Corresponding author. E-mail : [email protected]

(2)

가지는것으로보고되었다

(Cao et al. 1997; Peterson and Dwyer 1998; Di Carlo et al . 1999; Pietta 2000; Heim et al . 2002; Zhang et al . 2005; Joo et al . 2007; Kim 2009).

순비기나무

( Vitex rotundifolia )

한국

,

일본등의바닷

모래땅에서식하는사구성염생식물의일종으로단엽 만형

,

만형자나무

,

풍나무라고도한다

.

열매는핵과로

딱하고둥글며

9-10

월에검은자주색으로익는데

,

한방에

서는이를만형자

(

蔓荊子

)

라고하여두통

,

안질

,

귓병등의

질병의 치료에 사용한다

(Yeeh et al. 1996; Lee 2002;

Kim et al. 2009).

다수의 연구에 의해 만형자로부터

flavonoid

terpenoid

류의이차대사산물이분리된

있으며

,

이들은다양한암세포에대하여증식억제효과를

가지며이외에도항염증

,

항산화효능이있는것으로

보고되어있다

(Kondo et al. 1986; Ono et al. 1997; You et al. 1998; Ono et al. 1998; Kawazoe et al. 1999; Ono et al. 1999; Ono et al. 2000; Shin et al. 2000; Ko et al . 2000; Ko et al. 2001; Ono et al. 2001a, 2001b; Ono et al. 2002; Wang et al. 2005; Kim et al. 2009).

염생식물자원으로부터 생리활성물질을탐색하는 정에 순비기나무의 추출물과 용매 분획물이 높은

peroxynitrite

소거효과를보여 주었다

.

따라서 연구에

서는 순비기나무로부터 추출물과 용매 분획물을 제조하

,

항산화활성에따른분리정제과정을통해항산화

질을분리하였다

.

또한활성과구조와의상관관계를파악

하고

,

나아가생리활성물질탐색을위한기초연구자료

활용하고자하였다

.

이러한연구의결과로순비기나무

추출물로부터

3

종의

flavonoid

계열화합물들을분리하

이들에대한항산화효과

(DPPH

라디칼

ONOO

거능

,

세포내

NO, ROS, GSH

함량증감

)

보고하고자

한다

.

2. 재료 및 방법

재료

실험에사용된순비기나무

( V. rotundifolia ) (3 kg)

2003

7

전라남도 무안군현경면에서직접채집하여

응달에서자연건조한추출하기전까지

25 o C

에서

보관하였다

.

기기 시약

화합물은

high performance liquid chromatography (HPLC)

으로

Dionex P580 pump(USA)

Varian 350 refractive index detector(USA)

사용하여분리·정제하

였다

.

단일 분리된 화합물의 구조 결정을 위해

Perkin

Elmer polarimeter 341(USA)

사용하여 비선광도를

정하였으며

, NMR

스펙트럼은

Varian Mercury 300( 1 H-

NMR 300 MHz

13 C-NMR 75 MHz)

에서

CD 3 OD(Merck, deuterium degree 99.95%) CDCl 3 (Cambridge Isotope Laboratories, Inc., USA, deuterium degree 99.8%)

용액을

사용하여기록하였으며

Mass

스펙트럼데이터는한국기

초과학연구원에의뢰하여분석하였다

.

사용된모든유기

용매는사용하기정제하여실험에사용하였으며

, 1,1- diphenyl-2-picryl hydrazyl(DPPH), L-ascorbic acid, DL-2- amino-3-mercapto-3-methylbutanoic acid(DL-penicillamine) dihyrorodamine 123(DHR 123), 3-morpholinosydnonimine (SIN-1)

2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate(DCF- DA)

Sigma

(St Louis, MO, USA)

에서 그리고

peroxinitrite(ONOO )

Cayman(Ann Arbor, MI, USA)

구입하였다

.

시료의추출 제조

분쇄한 시료는

dichloromethane(CH 2 Cl 2 )

사용하여

24

시간동안실온에서추출한여과하는과정을

2

복하여얻어진추출액을

40 o C

수욕상에서

rotary vacuum evaporator

농축함으로써

CH 2 Cl 2

추출물을얻었다

.

과하고남은잔사에동량의

methanol(MeOH)

용매를

용하여

CH 2 Cl 2

동일한 과정을통해

MeOH

추출물을

얻었다

.

추출물을혼합

(145.3 g)

용매극성에따라

순차적으로 분획하여

n -hexane(33.6 g), 85% aq. MeOH (21.0 g), n -BuOH(39.0 g)

그리고

H 2 O(47.8 g)

분획층을

었다

.

얻어진 추출물과 용매 분획층은

dimethylsulfoxide (DMSO)

희석하여실험에사용하였다

.

활성성분의분리

85% aq. MeOH(21.0 g)

n -BuOH

분획층

(15.0 g)

대해

MeOH

물의 혼합용매를 사용하여

RP flash

column chromatography

실시하였으며

,

각각

50%(Rfc 1), 60%(Rfc 2), 70%(Rfc 3), 80%(Rfc 4), 90% aq. MeOH (Rfc 5)

100% MeOH(Rfc 6),

그리고

100% EtOAc(Rfc 7)

크로마토그래피분획물을얻었다

. n -BuOH

분획층의

Rfc 3

분획물은 역상

HPLC(YMC ODS-A, 67% aq.

MeOH, 10

×

250 mm, S-5 µm, 2 ml/min)

실시하여

수한화합물

1 (119.2 mg)

얻었다

. 85% aq. MeOH

분획

층의

Rfc 4

분획물은차례에걸친역상

HPLC(YMC ODS-A, 78% aq. MeOH

50% aq. CH 3 CN, 10

×

250 mm, S-5 µm, 2 ml/min)

실시하여화합물

2 (71.4 mg)

3 (24.8 mg)

분리하였다

.

Luteolin (1)

Yellow solid; [

α

] D20 – 22 o ( c 0.58, MeOH); EIMS m/z

286 [M] + ; 1 H NMR (300 MHz, CD 3 OD)

δ

: 7.35 (1H, d,

J = 8.3 Hz, H-6'), 7.34 (1H, br s, H-2'), 6.88 (1H, d, J =

(3)

8.3 Hz, H-5'), 6.51 (1H, s, H-3), 6.41 (1H, br s, H-8), 6.18 (1H, br s, H-6); 13 C NMR (75 MHz, CD 3 OD)

δ

: 183.6 (C, C-4), 166.1 (C, C-2), 165.8 (C, C-7), 163.0 (C, C-5), 159.2 (C, C-9), 150.8 (C, C-4'), 146.8 (C, C-3'), 123.5 (C, C-1'), 120.2 (CH, C-6'), 116.6 (CH, C-5'), 114.0 (CH, C-2'), 105.2 (C, C-10), 103.8 (CH, C-3), 100.0 (CH, C-6), 94.9 (CH, C-8).

Vitexicarpin (2)

Pale yellow solid; [

α

] D20 + 10 o ( c 0.10, MeOH); EIMS m/z 374 [M] + ; 1 H NMR (300 MHz, CDCl 3 )

δ

: 12.6 (1H, s, 5-OH), 7.67 (1H, dd, J = 8.4, 2.0 Hz, H-6'), 7.65 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-2'), 6.92 (1H, d, J = 8.4 Hz, H-5'), 6.47 (1H, s, H-8), 5.83 (1H, s, 3'-OH), 3.96 (3H, s, 4'-OMe), 3.93 (3H, s, 7-OMe), 3.90 (3H, s, 5-OMe), 3.84 (3H, s, 3-OMe); 13 C NMR (75 MHz, CDCl 3 )

δ

: 178.7 (C, C-4), 158.6 (C, C-7), 155.5 (C, C-2), 152.5 (C, C-5), 152.1 (C- 9), 148.7 (C, C-4'), 145.4 (C, C-3'), 138.8 (C, C-3), 132.1 (C, C-6), 123.4 (C, C-1'), 121.4 (CH, C-6'), 114.2 (CH, C-2'), 110.3 (CH, C-5'), 106.5 (C, C-10), 90.3 (CH, C-8), 60.9 (CH 3 , 6-OMe), 60.1 (CH 3 , 3-OMe), 56.3 (CH 3 , 7- OMe), 56.0 (CH 3 , 4'-OMe).

Artemetin (3)

Pale yellow solid; [

α

] D25 – 13.3 o ( c 0.15, MeOH);

EIMS m/z 388 [M] + ; 1 H NMR (300 MHz, CDCl 3 )

δ

: 12.6 (1H, s, 5-OH), 7.70 (1H, dd, J = 8.6, 2.0 Hz, H-6'), 7.65 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-5'), 6.97 (1H, d, J = 8.6 Hz, H-2'), 6.49 (1H, s, H-8), 3.97(3H, s, 7-OMe), 3.96 (3H, s, 4'-OMe), 3.95 (3H, s, 3'-OMe), 3.91 (3H, s, 6-OMe), 3.86 (3H, s, 3-OMe); 13 C NMR (75 MHz, CDCl 3 )

δ

: 178.7 (C, C-4), 158.6 (C, C-7), 155.7 (C, C-2), 152.6 (C, C-9), 152.2 (C-5), 151.3 (C, C-4'), 148.7 (C, C-3'), 138.7 (C, C-3), 132.2 (C, C-6), 122.8 (C, C-1'), 122.1 (CH, C- 6'), 111.2 (CH, C-5'), 110.8 (CH, C-2'), 106.5 (C, C-10), 90.3 (CH, C-8), 60.9 (CH 3 , 6-OMe), 60.2 (CH 3 , 3-OMe), 56.4 (CH 3 , 7-OMe), 56.1 (CH 3 , 4'-OMe), 56.0 (CH 3 , 3'- OMe).

DPPH

자유 라디칼에대한 전자공여능측정

DPPH

시약

2 mg

정확히 칭량하여

EtOH 15 ml

녹인용액

1.2 ml

다시

EtOH 3 ml

DMSO 0.5 ml

혼합하였다

.

준비된

sample 50

µ

l

제조한

DPPH

액을혼합하여

10

분간상온에서반응시킨

518 nm

에서

흡광도를측정한다

.

시료를첨가하지않은대조군과비교

하여유리라디칼소거활성을백분율로나타내었으며

,

조군의

UV-Vis

흡광도는

0.94-0.97

되도록 조정하였

.

실험은

triplicate

행하였으며결과를평균한값으로

나타내었다

(Blois 1998).

Peroxynitrite(ONOO )

소거 활성 측정

ONOO

소거 활성은

Kooy

(1994)

방법에 따라

dihydrorhodamine 123(DHR 123)

산화되는 정도를

정함으로써검색하였다

. DHR 123

최종농도가

5

µ

M

되도록

DMSO

희석하여 사용하였으며

, buffer

90 mM sodium chloride, 50 mM sodium phosphate(pH 7.4)

5 mM potassium chloride, diethylentriaminepentaacetic acid(DTPA) 100

µ

M(final concentration)

혼합하여조제

하였다

. Buffer

용액에

DHR 123

용액을 혼합한시료

authentic ONOO

첨가하고실온에서

5

분간방치하

측정하였으며

, 3-morpholinosydnonimine(SIN-1)

가할경우

, SIN-1

DHR 123

점진적인산화를일으키

것을 고려하여

1

시간 동안 방치한 측정하였다

. DHR 123 fluorescence intensity

multidetection microplate fluorescence spectrophotometer synergy HT (Bio-Tek instruments, USA)

이용하여λ

excitation 485 nm,

λ

emission 530 nm

에서측정하였다

.

실험은

triplicate

행하

였으며

,

결과는

blank

차감한값을평균하여대조군에

대한 백분율

(%)

계산하였다

.

세포 배양

마우스 대식세포

Raw 264.7

한국 세포주 은행

(Korean Cell Line Bank, KCLB)

으로부터 분양 받아

100 units/ml

penicillin-streptomycin

10%

fetal bovine serum(FBS, Hyclone, Utah, USA)

함유된

Dulbecco's modied Eagle's medium(DMEM, Hyclone, Utah, USA)

사용하여

37 o C, 5% CO 2 incubator(Forma Scientific, Japan)

에서 배양하였다

.

세포배양은

2

간격

으로배지를교환하였으며

, 6-7

간격으로계대배양하여

실험에사용하였다

.

세포 생존율측정

순비기나무시료의처리에따른세포의생존율은

MTT assay

이용하여측정하였다

(Hansen et al . 1989).

배양된

세포는

5

×

10 4 cells/ml

되도록

96 well plate

분주하여

37 o C, 5% CO 2

배양기에서

24

시간 배양

,

배지를제거

하고새로운배지에일정농도의시료를첨가하여

37 o C, 5% CO 2

배양기에서

24

시간배양하였다

. 24

시간배양

, 1 mg/ml

MTT

포함된배지를첨가하여동일한배양

조건에서

4

시간동안 배양하였다

.

이때생성된

formazan

crystal

DMSO

녹여서

multidetection microplate

fluorescence spectrophotometer synergy HT(Bio-Tek

(4)

instruments, USA)

이용하여

540 nm

에서흡광도를

정하여생존율

(%)

구하였다

. NO(nitric oxide)

생성억제능측정

Raw 264.7

세포를

96 well micro-plate

100

µ

l

주하여

(5

×

10 4 cells/ml) 37 o C

CO 2 incubator

에서

24

시간

동안배양하였다

.

배양액을

10% FBS

함유된

Modified Eagle medium(MEM)

으로 교체한 준비된

sample

1

시간 동안 전처리하고

, NO

생성을 유도하기 위해

lipopolysaccharide(LPS, final concentration 1

µ

g/ml)

리한

, 48

시간동안

37 o C, CO 2 incubator

에서배양하였

.

생성된

NO

양은

griess

시약

(0.1% N-(1- naphtyl)etylenediamine:1% sulfanilamide = 1:1)

배양액

1:1

혼합하여

15

동안 실온에 방치한

, multidetection microplate fluorescence spectrophotometer synergy HT(Bio-Tek instruments, USA)

이용하여

540 nm

에서흡광도를측정하였다

(Green et al . 1982).

반응은

1-naphthylenediamine, sulfanilamide

그리고

NO 2

반응 하여

azo coupling

이루는데 개의고리 형태가

550 nm

파장에서최대의흡광도값을나타내며

측정하여간접적으로

NO

생성량을측정할있다

. ROS(reactive oxygen species)

소거능측정

세포 자유라디칼 생성 정도는

DCFH-DA assay

측정하였다

(Okimoto et al . 2000). Raw 264.7

세포는

96 well plate

5

×

10 4 cells/ml

분주하여

24

시간 동안

37 o C, 5% CO 2

배양기에서 배양한

, Hank's balanced salt solution(HBSS)

으로 희석한

20

µ

M

2’,7’- dichlorodihydrofluorescein diacetate(DCF-DA, fluorescence probe)

첨가하여

20

분간배양하였다

. DCF-DA

처리

일정한농도의시료를첨가하고

1

시간동안배양하였다

. PBS

3

씻은

, 2

시간동안

500

µ

M

H 2 O 2

처리 하여 세포 자유라디칼 생성 정도는

multidetection microplate fluorescence spectrophotometer synergy HT (Bio-Tek instruments, USA)

이용하여 λ

excitation 485 nm,

λ

emission 528 nm

에서

DCF fluorescence intensity

측정하

였다

.

GSH (glutathione)

함량 측정

세포내에 축적된 항산화 효소인

GSH

함량은

thiol-

staining reagent

monobromobiman(mBBr)

이용하여

측정하였다

(Poot et al . 1986).

세포는

fluorescence microtiter 96-well plates

well

5

×

10 4 cells/ml

되도록분주하

24

시간배양한

,

well

농도별로시료를처리하

다시

37 o C 5% CO 2 incubator

에서

30

분간배양하였다

.

다시

well

PBS

완충액으로씻은

40

µ

M mBBr

처리하여

37 o C, 5% CO 2 incubator

에서

30

분간반응시킨

시료처리에 의한

GSH

함량의 변화를 시간별로

λ

excitation 360 nm,

λ

emission 465 nm

에서형광분석기로

정하였다

.

3. 결과 및 고찰

순비기나무추출물의 항산화활성

DPPH

자유라디칼에대한전자공여능

순비기나무추출물이

DPPH

자유라디칼에대한전자

공여능을

Blois (1998)

방법을 이용하여 검색하였다

.

DPPH radical

이용한 항산화능 측정법은 주로

phenolics

구조와

aromatic amine

화합물에서많이사용된

. DPPH radical

소거활성은시험군의안정해진분자의

흡광도를시료를첨가하지않은대조군과비교하여 측정 함으로써백분율

(%)

나타내었다

.

순비기나무의추출물과분획물에대한

DPPH

자유

디칼의 소거 효과는

Fig. 1(a)

나타낸 바와 같이

,

100

µ

g/ml

농도에서 대조군으로 사용된

L-ascorbic acid(83.3%)

소거효과보다는다소약한것으로확인되

었다

.

하지만

n -BuOH

분획층의경우

, 50

100

µ

g/ml

농도에서각각

60.4%

66.7%

라디칼소거효과를

타내어

DPPH

라디칼에대한 항산화성분이

n -BuOH

획층으로집중됨을확인할 있었다

. Peroxynitrite(ONOO )

소거 활성

순비기나무추출물이가지는

authentic ONOO

SIN- 1

소거효과를

Kooy

(1994)

방법을이용하여검색

하였다

. SIN-1

NO·

O 2 −

·을동시에발생시켜서 신속

하게

ONOO

생성시키는화합물로써흔히사용된다

.

ONOO

소거 효과는시료를첨가하지않은 대조군과

교하여백분율

(%)

나타내었다

(Fig. 1b).

순비기나무의

추출물분획물에대한

authentic ONOO

소거 효과

확인한 결과

, 10

µ

g/ml

농도에서

MeOH

추출물

(79.8%), n -BuOH

분획층

(96.8%)

85% aq. MeOH

획층

(73.9%)

뛰어난 라디칼소거효과를 나타내었다

.

그리고

SIN-1

에서유도된

ONOO

대한소거효과는

농도에서각각

94.2%, 118.2%

그리고

88.3%

높은

소거양상을보였으며

,

특히추출물에서는

MeOH

추출물

소거효과가우수하였으며

,

분획층에서는

n -BuOH

85% aq. MeOH

분획층이

L-ascorbic acid

penicillamine

상응하는우수한

ONOO

소거효과가있음이확인되

었다

.

플라보노이드계화합물의항산화활성

순비기나무 분획층가운데 뛰어난라디칼소거능을

(5)

이는

n -BuOH

분획층

85% aq. MeOH

분획층으로부터

3

종의순수한플라보노이드계화합물

( 1 - 3 )

분리하였으

,

이들의 구조는

NMR, IR, UV

등의분광학적분석과

문헌치와의비교에의해차례로

luteolin( 1 ), vitexicarpin( 2 )

artemetin( 3 )

임을 확인하였다

(Iinuma et al . 1980;

Rahman et al . 1988; Ahmad et al . 1995; Yoshioka et al . 2004; Loizzo et al . 2007) (Fig. 2).

화합물

1 - 3

순비기나

무의대표적인플라보노이드계화합물로써화합물

1

산화효과화합물

2

3

항암효과가다수보고된

있으나

(Ko et al . 2000; Kim et al . 2009),

항산화효과의

구조적상관성을확인하기위하여화합물

1 - 3

항산화

효과를다양한방법으로검토해보았다

.

DPPH

자유라디칼

peroxynitrite(ONOO )

소거활성

Fig. 3

순비기나무에서분리된화합물

1 - 3

DPPH

자유라디칼

peroxynitrite(ONOO )

소거활성을측정한

결과를각각 나타내었다

. DPPH

라디칼소거능의경우

,

화합물

1

50

µ

M

농도에서

76%

뛰어난라디칼

효과를 보였으며

,

이는동일농도에서의 대조군인

L- ascorbic acid(83%)

와도 필적하는 효과라 있겠다

(Fig. 3a).

화합물

1

대한 뛰어난

DPPH

라디칼 소거활

성은이미

Jung et al. (2001)

의해확인된있다

.

이에

Fig. 1. Antioxidant effects of crude extracts and solvent fractions (10, 50 and 100

µ

g/ml) of Vitex rotundifolia by DPPH (a), ONOO

( ) and SIN-1 ( ) (b) scavenging activity. Each value represents the means

±

SD of three independent assays

Fig. 2. Chemical structure of compounds 1-3 isolated

from Vitex rotundifolia

(6)

반해

,

화합물

2

3

DPPH

라디칼소거에는효과를

나타내지않는것으로확인되었다

. ONOO

소거활성은

화합물

1

10

µ

M

농도에서

87%

이상의 효과를보여

대조군인

L-ascorbic acid(78%)

penicillamine(90%)

상응하는강력한항산화능이있음을확인할있었으며

,

이는보고된문헌과도 일치하였다

(Jung et al. 2001).

또한

,

화합물

1

결과에는미치지못하지만화합물

2

3

50

µ

M

농도에서각각

46%

34%

소거능을보여

항산화소재로의가능성을보여주었다

.

반면에

SIN-1

에서

유도된

ONOO

대한소거효과는

10

µ

M

농도에서

화합물

1 - 3

차례로

77%, 62%, 73%

기록하였으며

,

도의존적으로효능이증가하여

50

µ

M

농도에서는각각

81%, 98%, 96%

나타내어 대조군인

L-ascorbic acid (99%)

penicillamine(93%)

상응하는 뛰어난 소재가

있을것으로사료되었다

(Fig. 3b).

특히

,

화합물

2

3

ONOO

소거활성은 처음으로 보고되는 것으로

,

authentic ONOO

에서보다

SIN-1

의해생성되는

ONOO

소거하는효과가뛰어난것으로확인되었다

.

이는

ONOO

직접적으로 소거하는화합물

1

달리화합물

2

3

in vitro

상에서

SIN-1

의해 생성되는

nitric oxide(NO

·

)

superoxide anion(

·

O)

효과적으로소거

하는데탁월한화합물이라고 있을것이다

. NO(nitric oxide)

생성 억제능

순비기나무에서분리한 화합물들의생체적용 가능

Fig. 3. Antioxidant effects of compounds 1-3 (10, 25 and 50

µ

M) isolated from Vitex rotundifolia by DPPH (a), and ONOO

( ) and SIN-1 ( ) (b) scavenging activity. Each value represents the means

±

SD of three independent assays

Fig. 4. Effects of compounds 1-3 (10, 25 and 50

µ

M) on cell viability ( ), increases of nitric oxide ( ), intracellular ROS ( ), and GSH ( ) level in Raw 264.7 cells: (a) compound 1; (b) compound 2; (c) compound 3. Each value represents the means

±

SD of three independent assays

(7)

성을가늠하기위하여화합물

1 - 3

대한세포

NO

억제 효과를마우스대식세포

Raw 264.7

사용하여

검토하였다

.

시료처리

LPS

48

시간동안처리하여

NO

생성을유도하였으며시료를처리하지않고

LPS

처리한것을대조군으로하여백분율

(%)

비교하여나타

내었다

. Fig. 4

같이화합물

1 - 3

NO

함량을측정하기

위하여

MTT assay

통한화합물의세포독성을측정

결과

,

화합물

1

제외한화합물들이

10

µ

M

낮은

농도에서도강한세포독성이있음이확인되었다

.

따라

,

화합물

1

대한세포내항산화활성결과만이유의성

있다고것이다

.

화합물

1

NO

생성억제능을대조군에대한백분율로

비교하여 확인해 결과

(Fig. 4a), 50

µ

M

농도에서

31%

문헌에보고된 것과유사하게

NO

생성을억제

하는것으로나타났으며

,

이는독성을띄는화합물

2

3 (29%

19%)

보다도억제 효과가있다고있겠다

(Park et al. 2010).

ROS(reactive oxygen species)

소거능

순비기나무의세포자유라디칼소거효과는 대식세 포인

Raw 264.7

사용하였으며

,

형광염료인

DCFH-DA

세포 생성된 자유라디칼과 반응하여 형광물질인

DCF

산화되는원리를이용하여측정하였다

.

세포

유라디칼생성은

H 2 O 2

이용하여유도하였으며

, 30

격으로

120

동안 형광 정도를 측정하여 나타내었다

. Fig. 4

같이 화합물

1

시료를처리하지않고

H 2 O 2

처리한

control

비교하여농도의존적으로

ROS

거하는것으로 확인되었다

.

특히

, 50

µ

M

농도에서는

90%

이상의

ROS

소거능을보여주었으며

, 10

µ

M

농도

에서도

53%

뛰어난효과를보여주었다

.

반면에

,

세포독

성을 보였던 화합물

2

3

50 uM

농도에서 각각

24%

11%

나타내어화합물

1

미치지못하였다

.

라서

,

이는

n -BuOH

분획층의높은항산화활성에화합물

1

높은 기여를하는것으로판단된다

.

GSH(glutathione)

증가량

순비기나무의플라보노이드계화합물들에 의한항산화 효소인

GSH

함량증가경향을확인해결과

,

눈에띄게

효소의증가효과를나타내지는않지만농도의존적으로

5-10%

내외로증가하는것으로확인되었다

.

4. 결 론

이상과같이순비기나무의추출물용매 분획물들의 항산화활성을확인하였으며 항산화 활성이 우수한용매 분획물로부터

3

개의

flavonoid

계열의 화합물들인

luteolin( 1 ), vitexicarpin( 2 ), artemetin( 3 )

분리하고또한

이들화합물들에대해서도항산화활성을측정하였다

.

비기추출물들의 항산화 활성이이미 이전에 보고되었으 활성성분으로보고된화합물들중에여기에서분리

3

개의

flavonoid

계열의물질들은포함되어있지 않았

(Kim 2009).

여러종류의다른식물시료에서분리된

있는

luteolin( 1 )

여러종류의활성산소종에대해가지는

항산화활성은이미알려져 있다

.

하지만

vitexicarpin ( 2 )

artemetin( 3 )

항산화활성에대해서는전혀알려져

있지 않다

. Vitexicarpin( 2 )

artemetin( 3 )

authentic peroxynitrite

SIN-1

대해서농도의존적인소거효과를

보였으며

,

특히

2

3

화합물은

SIN-1

의해생성되는

ONOO

탁월하게 소거하여 대조군으로 사용된

L- ascorbic acid

penicillamine

필적하는 결과를나타내

었다

.

세포내자유라디칼에대한항산화활성은측정농도

에서

2

3

화합물이세포독성을나타내어구조적차이

의한 항산화효능을비교하기가 어려웠다

.

대식세포

Raw 264.7

에서순비기나무추출물의

NO

생성억제효과

이미보고된있지만구체적인활성성분에대해서는 알려져있지않았다

(Choi et al . 2010).

연구에의해

행된결과에의하면

luteolin( 1 )

NO

생성을 효과적으로

억제하는 것으로 나타났다

.

결과는 기존에 보고된

luteolin

NO

생성억제효과와일치하였다

(Park et al.

2010).

화합물

1 , 2 , 3

화학구조적인차이를보면

1

, 2

, 3

화합물이

OH

기를 각각

4, 2, 1

개를 가지고

.

이미알려져있는바와같이

hydroxyl(OH)

기를

많이가지고있는

1

화합물이여러종류의항산화

활성검색에서매우좋은소거효과를보여주었다

(Choi et al. 2002).

하지만

50

µ

M

농도에서

SIN-1

의해생성

되는

peroxynitrite

소거효과에서는 오히려

methoxy (OMe)

기가훨씬많은

2

번과

3

화합물이좋은소거

효과를 보여 주었다

.

그럼에도 불구하고

authentic

peroxynitrite

대한소거효과가그렇게뛰어나지 않은

것으로보아

2

번과

3

화합물이

peroxynitrite

자체를

과적으로소거하기보다는

SIN-1

먼저분해되면서발생

되는

NO

·O 2

로부터

peroxynitrite

생성되는 과정을

효과적으로억제하는것으로여겨진다

.

하지만과정에

OH

기와

OMe

기가구체적으로어떤역할을하는지는

명확하지않다

. 사 사

연구는연구는

2010

농림수산식품부수산기술

개발사업

(No. 20100293)

연구비지원에의해수행되었으

국토해양부의지원으로수행한해양에너지전문인력 양성사업의연구결과입니다

.

수치

Fig. 2. Chemical structure of compounds 1-3 isolated from  Vitex rotundifolia
Fig. 3. Antioxidant effects of compounds 1-3 (10, 25 and 50  µ M) isolated from  Vitex rotundifolia  by DPPH (a), and ONOO −  ( ) and SIN-1 ( ) (b) scavenging activity

참조

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