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Copyright © 2019 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815
서 론
육상에인접한연안해역에서서식또는양식되고있는굴등 의패류는이동성이거의없고여과섭식활동을하는특성때문 에해수나뻘중에존재하는세균
,
바이러스,
항생제,
중금속등 을체내에축적한다(Grimes, 1991; Feldhusen, 2000; Bosch et al., 2015; U.S. FDA, 2017).
패류는종류에따라생식,
가열조 리등다양한형태로소비되며우리국민이선호하는수산물이 지만생산해역과생리적특성상타수산물에비하여식품안전 을위협하는위해인자에노출될가능성이높기에생산단계부 터철저한위생관리가요구된다(Hunter et al., 1999; Mallin et al., 2001).
패류를오염시키는세균
,
바이러스등은주로분변을포함한 오염물질들과함께자연하천,
생활하수관,
하수처리장등해역 주변의육상오염원을통해해역으로유입되어해역의수질과 패류의위생상태를악화시키기때문에우리나라를비롯한미국
,
유럽연합(EU)
등외국에서는해수와패류의위생학적안전성을확보하기위하여각국의실정에맞는세균학적위생관 리 기준을정하여해역을관리하고 있으며
,
세균학적기준으 로사용되는대표적인위생지표세균은대장균이다(U.S. FDA, 2017; EC, 2015).
대장균(Escherichia coli)
은해수와패류의오 염지표로사용될뿐만아니라사람과동물의장내에상재하는 세균으로빈번하게투여되는항생제에노출되기때문에항생제 내성균출현과내성획득과정을이해하는데유용하여임상및자란만사량도 해역의 굴(Crassostrea gigas) 및 육상오염원에서 분리한 대장균(Escherichia coli)의 항생제 내성
권지영·권순재·양지혜·목종수
1·정상현·하광수·이희정·정연중
1*
국립수산과학원 남동해수산연구소, 1국립수산과학원 식품위생가공과
Antimicrobial Resistance of Escherichia coli Isolated from Oysters Crassostrea gigas and Major Inland Pollution Sources in the Jaranman- Saryangdo Area in Korea
Ji Young Kwon, Soon Jae Kwon, Ji Hye Yang, Jong Soo Mok
1
, Sang Hyeon Jeong, Kwang-Soo Ha, Hee Jung Lee and Yeoun Joong Jung1
*Southeast Sea Fisheries Research Institute, National Institute of Fisheries Science, Tongyeong 53085, Korea
1Food Safety and Processing Research Division, National Institute of Fisheries Science, Busan 46083, Korea
This study evaluated the abundance and antimicrobial resistance of Escherichia coli in oysters Crassostrea gigas and major inland pollution sources sampled in 2014-2015 from Jaranman-Saryangdo on the southern coast of Korea. The ranges of the geometric mean of E. coli concentrations in oysters and major inland pollution sources were <20-29.8 MPN/100 g and 7.5-137.2 MPN/100 g, respectively. We isolated 247 strains of E. coli (28 from oysters and 247 from major inland pollution sources) and examined the antimicrobial resistance patterns of all isolates. Isolates from both sources were highly resistant to rifampin (99.5-100%) and cephalothin (70.8-78.6%). The resistance rate was higher in E. coli isolated from oysters those from inland pollution sources. Multiple resistance against at least four antimi- crobials was observed in 85.7% and 21.0% of the oyster and major inland pollution sources isolates, respectively.
Key words: Antimicrobial resistance, Oyster, Inland pollution source, Escherichia coli , Jaranman-Saryangdo
*Corresponding author: Tel: +82. 55. 640. 4760 Fax: +82. 55. 641. 2036 E-mail address: [email protected]
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
Received 25 October 2019; Revised 15 November 2019; Accepted 26 November 2019 저자 직위: 권지영(연구사), 권순재(연구원), 양지혜(연구원), 정상현(연구사), 하광수(연구관), 목종수(연구관), 이희정(연구관), 정연중(연구사)
https://doi.org/10.5657/KFAS.2019.0605
Korean J Fish Aquat Sci 52(6), 605-616, December 2019
비임상분야에서의항생제사용에따른내성실태조사및항생 제내성패턴연구등의대상균종으로널리사용되어지고있다
(Levin et al., 1997; Lee et al., 2018; MFDS, 2019b).
최근남해 안과서해안의어류,
패류양식장및패류에서검출된대장균중 에는항생제에내성을가진균주들이분리되고있으며,
이들중 에는다제내성을가진대장균도있음이보고되고있다(Son et al., 2009; Park et al., 2013; Jo et al., 2016; Kwon et al., 2016;
Ryu et al., 2017; Kwon et al., 2018).
항생제는사람이나동물의감염병치료를위한필수의약품으
로
1940
년에최초의항생제인페니실린의치료효과가검증된이후수많은감염질환의치료가가능해졌다
.
그러나항생제의 사용에따른내성균의발생및광범위한출현은치료법이없는 신종감염병이상의파급력을나타내며,
사망률증가,
치료기간 연장,
의료비용상승등공중보건에큰위협이되면서의학적으 로나사회적으로심각한문제가되고있다(WHO, 2014; Lee et al., 2019). WHO (world health organization)
에서는항생제내 성의주요원인은항생제의오·
남용이라고제시하고있으며,
내 성균은사람외에농축수산,
식품,
환경등생태계내다양한경 로를통해전파된다.
사람이나축수산물에투여된항생제는완 전히분해·
대사되지않은상태로배설되어육상오염원을통해 해양수계등자연환경으로유입되며유입된항생제는자연계 에존재하는미생물의항생제내성을유발시키고내성균의확 산및다제내성균출현의원인으로작용할수있다(Kummerer, 2009; Moura et al., 2014).
이에본연구에서는남동해안에위치한우리나라의대표적인 굴양식해역인자란만사량도해역에서생산된굴과해역주변 의주요육상오염원을대상으로위생관리의지표가되는대장 균의검출율
,
항생제에내성을가진대장균의분포및내성패 턴을확인하였다.
동연구의결과들은항생제내성균으로부터 국민의건강을보호하기위하여범부처(
보건복지부,
질병관리 본부,
농림축산식품부,
환경부,
해양수산부,
식품의약품안전처)
가협력하여추진하고있는
‘
국가항생제내성관리대책(2016-
2020)’
의추진전략및과제와연계하여수산분야의항생제내성균감시체계강화및내성정보구축을위한기초자료로활용 될수있을것이다
(KCDC, 2016).
재료 및 방법
조사지점 및 시료채취
자란만사량도해역은북동
·
북서쪽으로는경상남도고성군삼 산면과하일면,
남서쪽으로는통영시사량도의해안선과접해 있으며남쪽은외해로열려있는반폐쇄성의내만이다.
대장균 의항생제내성조사를위하여자란만사량도해역내굴양식 장5
개소와해역주변주요육상오염원8
개소를조사지점으로 설정하였고(Fig. 1),
조사기간인2014
년1
월부터2015
년12
월 까지굴시료는매월1
회,
주요육상오염원시료는분기별1
회채취하였다
.
양식장에서채취한굴은해수로깨끗이씻어멸균 비닐백(whirl-pak bags, Nasco International Inc., Janesville,
WI, USA)
에담고,
주요오염원시료는멸균채수병에채취하여
10°C
이하로유지하면서실험실로운반한후실험에사용하였다
.
대장균군 및 분변계대장균 시험
대장균군및분변계대장균시험은
laboratory pocedures for the examination of sea water and shellfish (APHA, 1984)
방 법에 준하여실시하였다.
패류및육상오염원 시료의추정시 험에는lauryl sulfate broth (Difco, Detroit, MI, USA)
를사용 하여35±0.5°C, 24-48
시간 배양하였고,
확정시험에는bril- liant green bile lactose broth 2% (Difco, Detroit, MI, USA)
및E. coli broth (Difco, Detroit, MI, USA)
를사용하여각각35±0.5°C, 24-48
시간및44.5±0.2°C, 24
시간배양하였다.
대 장균 및분변계대장균수는5
개의 시험관을 사용하는최확수(most probable number, MPN)
로산출하여100 g
또는100 mL
당MPN (MPN/100 g, MPN/100 mL)
으로표시하였다. 대장균 시험 및 분리동정
굴시료의대장균시험은
ISO (2015)
에준하여실시하였다.
Fig. 1. Sampling stations of oysters (●) and major inland pollution sources (■) in the Jaranman-Saryangdo area탈각한굴에
0.1% peptone
희석수를 첨가하여 균질화한 후minerals modified glutamate medium (Oxoid, Basingstoke, UK)
에접종·
배양(37±1°C, 24
시간)
하여양성(yellow)
으로확 인된배양액은tryptone bile x-glucuronoide agar (Oxoid, Bas- ingstoke, UK)
에획선배양하였다(44±1°C
에서22±2
시간).
배양결과청색
(blue)
또는청녹색집락(blue-green colony)
을생성한배양액은대장균양성으로판정하고그결과는
100 g
당MPN
으로표시하였다.
육상오염원시료의대장균시험은
APHA
방법을일부변형 하여사용하였다.
추정시험이후확정시험의E. coli broth
에서 양성으로확인된배양액은tryptone bile x-glucuronoide agar (Oxoid, Basingstoke, UK)
에 획선배양하여 청색또는 청녹 색집락을생성한배양액은대장균양성으로판정하고그결 과는100 mL
당MPN
으로표시하였다.
굴과육상오염원시료에서검출된청색또는청녹색의집락은분리배양후
VITEK
(Biomerieux, Marcy, France)
으로최종확인·
동정하였다. 항생제 내성 시험
굴과육상오염원시료에서분리동정된대장균의항생제내 성확인에는
Acar and Goldstein (1991)
의디스크확산법을이 용하였으며,
내성의판정은Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI, 2017)
기준을근거로하였다.
대장균분리균주 는muller hinton broth (BBL, Sparks, MD, USA)
에접종,
배 양(35°C, 18-24
시간)
하여배양액의탁도가McFarland No. 0.5
정도가되도록희석한후muller hinton II agar (BBL, Sparks,
MD, USA)
평판에 도말하고 배양액이 흡수되도록 실온에서
5
분간방치한다음15
분이내에항생제디스크(Sensi-disc, BBL, Sparks, MD, USA)
를 평판에 고착시켰다.
항생제는amikacin(30 μg, AN), amoxicillin/clavulanic acid (20/10 μg, AMC), ampicillin (10 μg, AM), aztreonam (30 μg, ATM), ce- famandole (30 μg, MA), cefazolin (30 μg, CZ), cefepime (30 μg, FEP), cefotaxime (30 μg, CTX), cefotetan (30 μg, CTT), cefoxitin (30 μg, FOX), ceftazidime (30 μg, CAZ), cephalo- thin (30 μg, CF), chloramphenicol (30 μg, C), ciprofloxacin (5 μg, CIP), gentamicin (10 μg, GM), imipenem (10 μg, IPM), nalidixic acid (30 μg, NA), piperacillin (10 μg, PIP), rifampin (5 μg, RA), streptomycin (10 μg, S), tetracycline (30 μg, TE), tobramycin (10 μg, NN), trimethoprim (5 μg, TMP), trime- thoprim/sulfamethoxazole (1.25/ 23.75 μg, SXT)
등24
종을 사용하였다.
항생제디스크를고착시킨muller hinton II agar (BBL, Sparks, MD, USA)
평판은35°C
에서16-18
시간배양 한후증식저해대(inhibition zone)
의크기를측정하여항생제 내성유무를판별하였으며,
내성시험결과의정도관리(quality control)
는표준균주인E. coli ATCC 25922
를이용하여CLSI
에서규정한허용범위(quality control range)
를확인하였다.
항 생제내성시험결과에따른분리균주의다제내성정도는MAR (multiple antimicrobial resistance) index
로나타내었고, MAR
index
는시험에사용된총항생제수에대한내성을나타내는항생제수의비율로계산하였다
(Krumperman, 1983; Titilawo et al., 2015).
Table 1. Bacteriological examination results of oysters Crassostrea gigas and major inland pollution sources in the Jaranman-Saryangdo area
Samples Station Detection Range (MPN/100 g or 100 mL)
No. of samples Total coliform Fecal coliform E. coli
Oyster
O-1 <18-230 <18-20 <20-<20 17
O-2 <18-490 <18-20 <20-20 7
O-3 <18-220 <18-170 <20-170 16
O-5 <18-790 <18-130 <20-130 22
O-6 <18-130 <18-78 <20-80 10
O-7 <18-230 <18-78 <20-80 12
Total <18-790 <18-170 <20-170 84
Inland pollution source
J-1 240-7,900 4.0-790 3.6-17 8
J-2 13-4,900 2.0-1,600 3.6-23 8
J-3 23-11,000 <1.8-540 5.5-17 8
J-4 240-54,000 33-3,300 1.8-110 8
J-5 11-7,900 <1.8-2,200 10-170 8
J-6 70-240,000 2.0-35,000 2.0-13,000 8
J-7 700-24,000 13-7,900 13-170 7
J-8 330-24,000 49-7,900 11-140 7
Total - 11-240,000 <1.8-35,000 2.0-13,000 62
결과 및 고찰
굴 및 육상오염원의 세균학적 위생상태 평가
자란만사량도해역에서생산된굴의세균학적위생상태를평 가하기위하여
2014
년1
월부터2015
년12
월까지6
개의조사지 점에서채취한84
개의굴시료를대상으로대장균군,
분변계대 장균및대장균수를확인한결과,
분변계대장균과대장균수의 범위는각각<1.8-170 MPN/100 g, <20-170 MPN/100 g
이었 고(Table 1),
대장균수의기하학적평균(geometric mean)
및계 산된백분위의90
번째값(estimated 90th percentile)
의범위는 각각<20-29.8 MPN/100 g, <20-65.5 MPN/100 g
으로대장균 을비롯한위생지표세균의오염도는낮았다(Fig. 2).
우리나라에서는생식용굴에대하여대장균이
230 MPN/100 g
이하이어야하고
700 MPN/100 g
을초과하는시료가없어야한다고규정하고있으며
(MOF, 2015; MOF, 2018; MFDS, 2019a),
유 럽연합에서는패류의대장균오염도에따라패류생산해역의 등급(A, B, C)
과생식여부를구분하고있다(EC, 2015).
유럽연 합에서설정한A
등급해역은조사기간동안생산된패류시료 의80%
가대장균수230 MPN/100 g
이하인해역(
모든패류시 료는700 MPN/100 g
이하)
으로서A
등급해역에서생산된패 류는수확후즉시섭취(
생식),
출하,
판매가가능하다.
패류시 료의90%
가대장균수4,600 MPN/100 g
이하인해역(
모든패 류시료는46,000 MPN/100 g
이하)
은B
등급해역,
생산된모 든패류시료의대장균값이46,000 MPN/100 g
이하인해역은C
등급해역으로서B
와C
등급해역에서생산된패류는반드 시인공정화(depuration)
또는자연정화(relaying)
후출하하거 나승인된방법으로위생처리(
가열,
가공등)
후판매하여야한 다.
본연구의조사결과자란만사량도해역의굴에서검출된대장균수는모두
170 MPN/100 g
이하로유럽연합의기준에따라수확후즉시섭취
(
생식)
및판매가가능한A
등급해역에서 생산된수준이었고,
우리나라생식용굴의기준에도적합한것 으로확인되었다.
자란만사량도해역주변배수유역에위치한
8
개소의주요육 상오염원시료62
개에서확인한분변계대장균및대장균수의 범위는각각<1.8-35,000 MPN/100 g, 2.0-940 MPN/100 g
이었다
(Table 1).
대장균수의기하학적평균및계산된백분위의90
번째값의범위는각각7.5-137.2 MPN/100 g, 17.5-4,846.1 MPN/100 g
으로J1 (
미룡천), J2 (
삼봉천), J3 (
수양천)
지점에 서의대장균오염도는아주낮았고J6
지점(
용암포마을하수)
에 서가장높았다(Fig. 2). J6
지점은용암포마을인가밀집지역입 구에위치하고있어마을의생활오수가많이유입되는곳으로 조사당시에는용암포마을과인근춘암마을에마을하수처리장 이가동되고있지않았기때문에(2013
년착공, 2016
년완공)
미 처리된경작지,
가축분뇨,
정화조의오수등분변을포함한오 염물질들이직접유입되어대장균의오염도가높게나타난것 으로추정된다.
조사가진행되었던2014
년과2015
년당시육상오염원
8
개소중오염도가낮은J1, J2, J4 (
염밭마을하수)
지점 이위치한배수유역에는마을하수처리장(
용호,
삼봉,
삼산문화,
임포하수처리장)
이가동되고있었고, J3, J5 (
오방천), J6 (
용암 포마을하수), J7 (
삼태마을하수)
및J8 (
용태마을하수)
지점이 위치한배수유역에는마을하수처리장이건설중이거나건설예 정이었다. Park et al. (2018)
은자란만사량도해역주변배수유 역에위치한하수처리장3
개소(
용호,
삼산문화,
임포하수처리 장)
의배출수에서대장균을분리하지못했는데그원인은하수 처리장의최종배출단계에설치되어있는자외선램프의살균효 과에의한것이라고보고하였다
(Kim et al., 2016a).
이상의조 사결과오염도가높은육상오염원이존재하는배수유역에는마 을하수처리장의조속한건설추진이필요함을확인할수있었 으며,
육상오염원관리를위해서는지속적인모니터링을통한 오염원의오염도파악및조사결과를바탕으로한오염원관리 대책의수립이필요할것으로생각된다.
Sampling station
A
E. coli (MPN/100 mL)
B
E. coli (MPN/100 mL)
Sampling station
GM90th percentile
GM90th percentile
Fig. 2. Level of E. coli of oysters Crassostrea gigas and major in- land pollution sources in the Jaranman-Saryangdo area
대장균의 분리 및 항생제 내성
자란만사량도해역에서채취한굴
(84
개)
과육상오염원시료(62
개)
에서대장균이검출된시료는각각22
개(26.2%), 43
개(69.4%)
로대장균은굴보다육상오염원에서의2.5
배이상높게검출되었다
(Table 2).
대장균이검출된시료에서는총247
균주(
굴28
균주,
육상오염원219
균주)
의대장균을분리하였고,
분리 한대장균을대상으로24
종의항생제에대한내성시험결과는 각각Table 3
과Table 4
에나타내었다.
굴에서 분리한 대장균
28
균주는 모두rifampin (100%)
에 대한내성을나타내었고cephalothin, cefepime, ceftazidime, tobramycin
에 대해서는64.3-78.6%, ampicillin, piperacillin, tetracycline
에는50%
의균주가내성을나타내었으나, amoxi- cillin/clavulanate, cefotaxime, cefoxitin, imipenem, amikacin
에대한내성은확인되지않았다.
그리고cefotaxime, cefoxi- tin, imipenem
에대해서는모든균주가감수성(100%)
을나타 내었고, amoxicillin/clavulanate, gentamicin
에는26
개의균주(92.9%)
가감수성을나타내었다(Table 3.).
이전의연구결과를 살펴보면
2011
년부터2012
년까지남해 안3
개지역(
고흥,
여수,
남해)
의패류(
굴,
바지락,
피조개)
에서 분리한대장균의내성률은tetracycline (29.9%), streptomycin (25.5%), ampicillin (18.6%)
순으로높았고(Park et al., 2013), 2013
년부터2015
년까지서해안의패류(
굴,
바지락,
가무락)
에 서분리한대장균은ampicillin (37.2%), cephalothin (21.7%),
Table 2. Number of E. coli isolated from oysters Crassostrea gigas and inland pollution sources in the Jaranman-Saryangdo area Samples Station No. of
samples No. of positive
samples (%) No. of isolates
Oyster
O-1 17 0 (0.0) 0
O-2 7 2 (28.6) 6
O-3 16 5 (31.3) 6
O-5 22 6 (27.3) 6
O-6 10 2 (20.0) 4
O-7 12 7 (58.3) 6
Subtotal - 84 22 (26.2) 28
Inland pollution source
J-1 8 6 (75.0) 30
J-2 8 6 (75.0) 25
J-3 8 5 (62.5) 25
J-4 8 5 (62.5) 29
J-5 8 5 (62.5) 27
J-6 8 6 (75.0) 28
J-7 7 5 (71.4) 26
J-8 7 5 (71.4) 29
Subtotal - 62 43 (69.4) 219
Total - 146 65 (44.5) 247
Table 3. Antimicrobial resistance of E. coli isolated from oysters Crassostrea gigas in the Jaranman-Saryangdo area
Antimicrobial agents No. of isolates (%) Susceptible Intermediate Resistant Penicillins
Ampicillin (AM) 6 (21.4) 8 (28.6) 14 (50.0) Piperacillin (PIP) 12 (42.9) 2 (7.1) 14 (50.0) β-Lactams
Amoxicillin/Clavulanate
(AMC) 26 (92.9) 2 (7.1) 0 (0.0)
Cephems
Cefamandole (MA) 22 (78.6) 2 (7.1) 4 (14.3) Cefazolin (CZ) 26 (92.9) 4 (14.3) 4 (14.3) Cefepime (FEP) 9 (32.1) 0 (0.0) 19 (67.9) Cefotaxime (CTX) 20 (71.4) 4 (14.3) 4 (14.3) Cefotetan (CTT) 28 (100.0) 0 (0.0) 0 (0.0) Cefoxitin (FOX) 28 (100.0) 0 (0.0) 0 (0.0) Ceftazidime (CAZ) 9 (32.1) 0 (0.0) 19 (67.9) Cephalothin (CF) 2 (7.1) 4 (14.3) 22 (78.6) Monobactams
Aztreonam (ATM) 23 (82.1) 2 (7.1) 3 (10.7) Penems
Imipenem (IPM) 28 (100.0) 0 (0.0) 0 (0.0) Aminoglocosides
Amikacin (AN) 22 (78.6) 6 (21.4) 0 (0.0) Gentamicin (GM) 26 (92.9) 1 (3.6) 1 (3.6) Streptomycin (S) 10 (35.7) 10 (35.7) 8 (28.6) Tobramycin (NN) 10 (35.7) 0 (0.0) 18 (64.3) Ansamycins
Rifampin (RA) 0 (0.0) 0 (0.0) 28 (100.0) Tetracyclines
Tetracycline (TE) 13 (46.4) 1 (3.6) 14 (50.0) Quinolone and fluoroquinolones
Ciprofloxacin (CIP) 19 (67.9) 2 (7.1) 7 (25.0) Nalidixic acid (NA) 17 (60.7) 0 (0.0) 11 (39.3) Phenicols
Chloramphenicol (C) 18 (64.3) 1 (3.6) 9 (32.1) Folate pathway inhibitors
Trimethoprim/
Sulfamethoxazole (SXT) 18 (64.3) 0 (0.0) 10 (35.7) Trimethoprim (TMP) 18 (64.3) 0 (0.0) 10 (35.7)
cefazolin (19.9%)
순으로내성률을나타내었으며남해안3
개 지역과달리tetracyclin
에대한내성률은4%
수준으로낮았다(Jo et al., 2016; Ryu et al., 2017). 2014
년과2015
년에고성 군(
북쪽),
통영시(
남쪽),
거제시(
동쪽)
에 접하고 있는 남해안용남광도해역의굴에서분리한대장균의내성률은
rifampin
(100%), cephalothin (73.2%), cefepime, ceftazidime, tobra-
mycin (71.4%)
순으로높았는데,
이러한결과는자란만사량도해역의굴에서분리한대장균의 내성과유사한경향을나 타내는것이었다
.
그러나자란만사량도해역의굴에서분리한 대장균의50%
가ampicillin, piperacillin, tetracycline
에 대해 내성을나타낸반면,
용남광도해역의굴에서분리한대장균 은이들3
종에대한내성률이10.7-14.3%
로낮았다(Kwon et
al., 2018).
이상의결과에서서해안과남해안의패류에서분리한대장균의
ampicillin, piperacillin, tetracyclin
에대한내성률 은해역에따른차이가있긴하나감소하는경향을나타내고, cephalothin
과같은cephems
계항생제에대한내성률은증가 하고있음을확인할수있었다.
자란만사량도해역의육상오염원에서분리한대장균
(219
균 주)
또한굴에서분리한균주와마찬가지로rifampin (99.5%)
과cephalothin (70.8%)
에대해높은내성률을나타내었고, tet- racycline (17.8%), streptomycin (17.4%), ampicillin (16.9%), piperacillin (12.8%)
순으로내성을나타내었다.
이들6
종이외18
종의항생제에대한내성률은0.5-8.7%
로낮았고amoxicil- lin/clavulanate, cefepime, cefotetan, ceftazidime, imipenem
에 대해서는95%
이상의감수성을나타내었다(Table 4.).
본연구 결과와는달리한산거제만과자란만사량도해역의주변육상 오염원(
거제시,
통영시,
고성군소재하천및마을하수)
에서분 리한대장균의내성패턴에대한연구결과에서는tetracycline
(10.6%)
에대한내성률이가장높았고다른항생제들의내성률은
5%
이하이거나내성을 나타내지 않았으며(Park et al.,
2018),
남해창선해역의육상오염원에서분리한대장균도tet-
racycline
과ampicillin
에대한내성률이가장높았다고보고되 어있다(Kwon et al., 2016).
그러나용남광도해역의육상오염 원에서분리한대장균의내성률은rifampin (99.4%), cephalo- thin (69.9%)
에서높았고나머지항생제들의내성률은20%
이 하였다고보고하고있다(Kwon et al., 2018).
2014
년과2015
년에자란만사량도해역에서채취한굴과오염원시료를대상으로한본연구결과
,
항생제별내성률은육 상오염원시료보다굴에서높게나타났는데이는이동성이없 는패류의특성에의한것으로육상오염원에서유입되는항생제가패류의여과섭식과정중에축적되기때문이다
(Grimes,
1991; Feldhusen, 2000).
따라서패류와육상오염원에서분리 한대장균의내성패턴은수계에잔류하는항생제의종류와양(Kim et al., 2008; Jang et al., 2017; Lee et al., 2017),
해역주변 배수유역의현황과밀접하게관련되어있다(Peak et al., 2007;
Ferreira et al., 2007; Reinthaler et al., 2010).
Table 4. Antimicrobial resistance of E. coli isolated from major inland pollution sources in the Jaranman-Saryangdo area
Antimicrobial agents No. of isolates (%) Susceptible Intermediate Resistant Penicillins
Ampicillin (AM) 101 (46.1) 81 (37.0) 37 (16.9) Piperacillin (PIP) 108 (49.3) 83 (37.9) 28 (12.8) β-Lactams
Amoxicillin/
Clavulanate (AMC) 208 (95.0) 4 (1.8) 7 (3.2) Cephems
Cefamandole (MA) 197 (90.0) 6 (2.7) 16 (7.3) Cefazolin (CZ) 183 (83.6) 17 (7.8) 19 (8.7) Cefepime (FEP) 218 (99.5) 0 (0.0) 1 (0.5) Cefotaxime (CTX) 167 (76.3) 38 (17.4) 14 (6.4) Cefotetan (CTT) 215 (98.2) 2 (0.9) 2 (0.9) Cefoxitin (FOX) 202 (92.2) 5 (2.3) 12 (5.5) Ceftazidime (CAZ) 216 (98.6) 0 (0.0) 3 (1.4) Cephalothin (CF) 16 (7.3) 48 (21.9) 155 (70.8) Monobactams
Aztreonam (ATM) 194 (88.6) 19 (8.7) 6 (2.7) Penems
Imipenem (IPM) 217 (99.1) 1 (0.5) 1 (0.5) Aminoglocosides
Amikacin (AN) 188 (85.8) 29 (13.2) 2 (0.9) Gentamicin (GM) 200 (91.3) 8 (3.7) 11 (5.0) Streptomycin (S) 84 (38.4) 97 (44.3) 38 (17.4) Tobramycin (NN) 201 (91.8) 8 (3.7) 10 (4.6) Ansamycins
Rifampin (RA) 1 (0.5) 0 (0.0) 218 (99.5) Tetracyclines
Tetracycline (TE) 62 (28.3) 118 (53.9) 39 (17.8) Quinolone and fluoroquinolones
Ciprofloxacin (CIP) 205 (93.6) 7 (3.2) 7 (3.2) Nalidixic acid (NA) 160 (73.1) 44 (20.1) 15 (6.8) Phenicols
Chloramphenicol (C) 204 (93.2) 6 (2.7) 9 (4.1) Folate pathway inhibitors
Trimethoprim/
Sulfamethoxazole (SXT) 201 (91.8) 2 (0.9) 16 (7.3) Trimethoprim (TMP) 197 (90.0) 5 (2.3) 17 (7.8)
2014
년과2015
년도에판매량이많았던축·
수산용항생제는penicillin
계, tetracycline
계및cephems
계열의항생제로peni- cillin
계와tetracycline
계항생제는2006
년이후판매량이감소 하는추세를나타냈지만cephems
계열의항생제판매량은5
배 증가하였다.
그리고소와돼지분변유래대장균은tetracycline
과
streptomycin
에대한내성률이 높았고닭유래균주의내성률은
(fluoro) quinolones
계항생제인ciprofloxacin
과nali- dixic acid, cephem
계항생제인cephalothin
에서높게나타났 다(MFDS, 2015; MFDS, 2016).
또한2002
년부터2013
년까지 국내총항생제처방량은penicillin
계열이가장많았고다음으 로는cephem
계열이었는데cephem
계열항생제의사용량은2
배이상증가하였으며10
세미만의소아와60
세이상의노령층 에서는penicillin
계열보다더많이사용되고있다(Kim et al., 2016; Kim et al., 2017; Lee et al., 2019).
따라서자란만사량 도해역에서분리한대장균의내성패턴은조사가행해진이전 부터조사시까지축·
수산용항생제의판매량,
가축의분변유 래대장균의내성률및질병치료를위해처방된항생제사용현 황과관련이있는것으로사료되며,
향후항생제내성연구는보다정밀한내성경향분석을위하여내성균오염원추적조사
(source tracking)
및내성인자의분자생물학적특성분석등이 병행되어야할것이다.
대장균의 다제내성
미생물의항생제내성은항생제를사용하기때문에발생한다
.
특히항생제의오·
남용은항생제내성발생의가장큰원인이며 다양한항생제의사용은다제내성균의출현을증가시켜의학적 으로나사회적으로문제가되고있다.
이에본연구에서는자란 만사량도해역의굴과육상오염원에서분리한대장균을대상 으로4
종이상의항생제에내성을나타내는다제내성(multiple antimicrobial resistance, MAR)
패턴과MAR index
를확인하 였다(Table 5, Table 6).
시험에사용된총항생제수에대한내성을나타내는항생제수의비율로계산되는
MAR index
는항생제에의한환경오염의정도를반영하여항생제사용에따른 잠재적인건강위해도평가에사용되며
MAR index
가0.2
보다 크다는것은항생제오염에대한위험이존재한다는것을의미 한다(Krumperman, 1983; Titilawo et al., 2015).
Table 5. Multiple antimicrobial resistance (MAR) of E. coli isolated from oysters Crassostrea gigas in Jaranman-Saryangdo area No. of
antimicrobials Resistance patterns No. of
isolates Total
(%) MAR
index
1 RA 3 10.71 0.04
2 CF, RA 1 3.57 0.08
5 PIP, RA, TE, SXT, TMP 1 3.57
FEP, CAZ, CF, NN, RA 3 10.71 0.21
6 AM, PIP, CF, RA, TE, NA 1 3.57
FEP, CAZ, CF, NN, RA, C 4 14.29 0.25
7
AM, PIP, S, RA, TE, SXT, TMP 2 7.14
0.29
FEP, CAZ, CF, S, NN, RA, TE 1 3.57
FEP, CAZ, CF, NN, RA, NA, C 1 3.57
9 AM, PIP, FEP, CAZ, CF, NN, RA, NA, C 1 3.57 0.38
10
AM, MA, CTX, CAZ, CF, ATM, RA, TE, SXT, TMP 1 3.57
AM, PIP, CZ, FEP, CF, S, RA, TE, SXT, TMP 1 3.57 0.32
AM, PIP, FEP, CAZ, CF, NN, RA, TE, NA, C 1 3.57
AM, PIP, FEP, CAZ, CF, NN, RA, CIP, NA, C 1 3.57
13 AM, PIP, FEP, CAZ, CF, S, NN, RA,TE, CIP, NA, SXT, TMP 2 7.14 0.54
14 AM, PIP, FEP, CAZ, CF, S, NN, RA, TE, CIP, NA, C, SXT, TMP 1 3.57 0.58
15 AM, PIP, MA, CZ, FEP, CTX, CAZ, CF, NN, RA, TE, CIP, NA, SXT, TMP 1 3.57 AM, PIP, MA, CZ, FEP, CTX, CAZ, CF, ATM, S, NN, RA,TE, CIP, NA, 1 3.57 0.63
17 AM, PIP, MA, CZ, FEP, CTX, CAZ, CF, ATM,GM, NN, RA, TE, CIP, NA, SXT, TMP 1 3.57 0.71
28 100
AM , Ampicillin; PIP, Piperacillin; AMC, Amoxicillin/ Clavulanic acid; MA, Cefamandole; CZ, Cefazolin; FEP, Cefepime; CTX, Cefo- taxime; CTT, Cefotetan; FOX, Cefoxitin; CAZ, Ceftazidime; CF, Cephalothin; ATM, Aztreonam; IPM, Imipenem; AN, Amikacin; GM, Gentamicin; S, Streptomycin; NN, Tobramycin; RA, Rifampin; TE, Tetracycline; CIP, Ciprofloxacin; NA, Nalidixic acid; C, Chlorampheni- col; SXT, Trimethoprim/ Sulfamethoxazole; TMP, Trimethoprim.
Table 6. Multiple antimicrobial resistance (MAR) of E. coli isolated from major inland pollution sources in Jaranman-Saryangdo area No. of
antimicrobials Resistance patterns No. of
isolates Total
(%) MAR
index
1 GM 1 0.46 0.04
RA 48 21.92
2
AM, RA 3 1.37
0.08
PIP, RA 1 0.46
CTX, RA 1 0.46
CF, RA 82 37.44
S, RA 1 0.46
RA, TE 1 0.46
RA, CIP 1 0.46
RA, SXT 1 0.46
3
AM, CF, RA 6 2.74
0.13
PIP, CF, RA 3 1.37
MA, CF, RA 3 1.37
FOX, S, RA 1 0.46
CF, AN, RA 2 0.91
CF, S, RA 7 3.20
CF, NN, RA 1 0.46
CF, RA, TE 7 3.20
CF, RA, NA 1 0.46
S, RA , TE 2 0.91
4
AM, PIP, CF, RA 1 0.46
0.17
MA, CTX, FOX, RA 1 0.46
CZ, FOX, CF, RA 1 0.46
CTX, CF, S, RA, 1 0.46
CF, S, RA, NA 2 0.91
CF, S, RA, TE 1 0.46
CF, RA, TE, CIP 1 0.46
CF, RA, TE, C 2 0.91
5
AM, PIP, CF, ATM, RA 1 0.46
0.21
AM, AMC, CZ, CF, RA 1 0.46
AM, CZ, FOX, CF, RA 1 0.46
AM, CZ, CF, NN, RA 1 0.46
AMC, CZ, CF, RA, TE 2 0.91
CZ, FOX, CF, RA, TE 1 0.46
CF, S, RA, TE, C 1 0.46
IPM, RA, TE, SXT, TMF 1 0.46
AM , Ampicillin; PIP, Piperacillin; AMC, Amoxicillin/ Clavulanic acid; MA, Cefamandole; CZ, Cefazolin; FEP, Cefepime; CTX, Cefo- taxime; CTT, Cefotetan; FOX, Cefoxitin; CAZ, Ceftazidime; CF, Cephalothin; ATM, Aztreonam; IPM, Imipenem; AN, Amikacin; GM, Gentamicin; S, Streptomycin; NN, Tobramycin; RA, Rifampin; TE, Tetracycline; CIP, Ciprofloxacin; NA, Nalidixic acid; C, Chlorampheni- col; SXT, Trimethoprim/ Sulfamethoxazole; TMP, Trimethoprim.