www.earticle.net
동결정액 인공수정 모돈의 번식성적
이현정1·송광림1·박정근1·이철영2·정기화2*
가야육종(주)1, 경남과학기술대학교2
Reproductive Performance of the Female Breeding Pigs after Artificial Insemination Using the Frozen-Thawed Semen
Hyeon-Jeong Lee1, Kwang-Lim Song1, Jeong Geun Park1, Chul Young Lee2 and Ki-Hwa Chung2*
1Kaya Breeding Station, Sacheon 52510, Korea
2Department of Animal Resources Technology, Gyeongnam National University of Science and Technology, Jinju 52725, Korea
ABSTRACT1)
The present study was undertaken to investigate the reproductive performance of the female breeding pigs after artificial insemination (AI) using the frozen boar semen imported from Canada, thereby finding insights into improving the efficiency of AI using the frozen semen (FSAI). Analyzed in the present study were the records of a total of 626 FSAIin a great grandparent (GGP) farm beginning from May through November of the year of 2016 (Farm A) and 2,024 FSAI beginning from 2015 through 2017 from a second GGP farm (Farm B). Both the total number of piglets born (TNB) and the number born alive (NBA) were greater during May than during September within FSAI (p<0.05) in Farm A (p<0.01 for the effect of the month). In Farm B, no difference was detected between the years in any of the farrowing rate, TNB, and NBA. When the records from Farm A and Farm B were pooled, the farrowing rate was greater for Farm A vs. Farm B (p<0.01), with no difference between the two farms in TNB and NBA. Moreover, TNB and NBA were less for FSAI than for AI using the liquid semen (LSAI; 10.9±0.3 vs. 13.4±0.1 and 10.0±0.3 vs. 12.0±0.1 piglets, respectively, for FSAI vs. LSAI in TNB and NBA, respectively; p<0.01). In conclusion, these results suggest that the reproduction efficiency for FSAI, which is lower than that for LSAI, couldbe improved by selecting an optimal period of the year for the use of the former.
(Key words: Breeding pig, Artificial insemination, Frozen semen, Reproduction efficiency)
* Corresponding author: Ki-Hwa Chung, Department of Animal Resources Technology, Gyeongnam National University of Science and Technology, Jinju 52725, Korea. Tel: +82-55-751-3287, E-mail: [email protected]
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/deed.ko), which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited. The moral rights of the named author(s) have been asserted.
Ⅰ. 서론
인공수정 기술은 가축의 유전적인 개량을 촉진시키기 위 한 수단일 뿐만 아니라 번식성적 및 질병전파 방지 등의 목적으로 사용되고 있으며, 돼지 번식에서 인공수정이 차 지하는 비율은 전 세계적으로 매년 증가하여 구미 기준으
로 90% 이상을 차지하고 있다(Knox, 2016). 전 세계적으로 모돈은 대부분 액상정액 인공수정으로 교배되어 90% 이상의 분만율과 12두 이상의 산자수를 기록하고 있는 반면 동결정 액 인공수정 비율은 1% 이하를 차지하고 있다(Rodreguez- Gil and Estrada, 2013).
정액을 동결 보존시키면 원형질막이 변성․손상되어 세포
[Provider:earticle] Download by IP 118.70.52.165 at Monday, December 20, 2021 7:49 PM
www.earticle.net
막의 침투성이 증가하고 정자의 운동성 및 생존률이 감소 된다. 또한 정액 동결은 첨체의 이상을 유발시켜 융해 후 생존률과 수정률이 감소되고(Knox, 2015), 액상정액을 사 용했을 때에 비해 분만율 및 산자수가 저하되는 것으로 알 려져 있다(Gilmore et al., 1996). 그럼에도 불구하고 동결 정액을 이용하면 장기간 유전자 보존이 가능하여 계획적 으로 인공수정을 할 수 있는 장점이 있고, 일부 인공수정 센터에서는 동결정액이 액상정액에 비해 질병전파의 위험 이 낮다는 판단 하에 액상정액보다 선호되기도 한다.
동결정액의 실용화가 필요한 이유는 국내 많은 돼지 인 공수정센터와 종돈장이 우수 웅돈 확보를 위해 경제적 부 담을 감수하고 해외로부터 매년 많은 수의 종돈을 수입하 고 있기 때문이다. 인공수정센터는 해외로부터 수입한 웅 돈을 일반농가 정액공급용으로 사용한 다음 수퇘지의 사 용년수가 끝나면 다시 해외에서 수퇘지를 도입하는 일을 반복하고 있다. 종돈 외에도 해외로부터 많은 양의 정액이 수입되고 있는 바, 2017년 말 현재 품종별로는 요크셔가 7,538스트로로 가장 많았고, 랜드레이스 4,248, 버크셔 1,572, 두록 1,512스트로의 순이었으며, 총 수입량은 14,978 스트로이었다. 이와 같이 해외로부터 많은 수의 수퇘지나 동결정액 스트로를 도입하기 위해서는 막대한 경비가 소 요되기 때문에 우수한 개체의 유전자원을 유지․보존하여 인공수정센터에 공급하면 외화유출을 줄일 뿐만 아니라 종돈 개량에도 일조할 수 있을 것이다. 이과 같은 맥락에 서, 현재 국가단위 돼지개량 네트워크사업을 통해 국내 종 돈장간에 유전자가 교류되고 일부는 해외에서 우수한 유 전자가 도입되어 국내에서 활용되고 있다. 또한, 최근에는 Golden Seed Project(GSP)사업의 일환으로 GSP 인공수정 센터에서 동결정액 제조시스템을 구축하여 GGP(great
grand parent)종돈장간 유전자를 공유하기 위해 GSP 2단 계(2017~2021년) 연구사업이 진행되고 있다.
현재 동결정액 사용 효과에 관한 국내 연구결과는 많지 않다. 그러므로 우수한 유전자원 보존과 종돈장간 유전자 공유체계 활성화를 통해 체계적이고 안정적으로 돈군을 유지하고 개량하기 위해서는 국내에도 돼지 동결정액 제 조 및 이용 기술 개발․보급이 절실히 요구되고 있다. 따라 서 본 연구는 최근 동결정액을 사용한 종돈장에서 액상정 액과 동결정액이 번식성적에 미치는 영향을 비교·분석 하 여 향후 국내 동결정액 제조 시스템 개발을 위한 기초자료 를 도출하고자 수행하였다.
Ⅱ. 재료 및 방법
1. 재료
Canada에서 수입한 정액을 두개의 GGP 종돈장에서 인 공수정을 한 다음 아래와 같이 분만성적을 조사하였다. A 종돈장에서는 2016년 5월부터 9월까지 Yorkshire 품종 동 결정액과 액상정액으로 인공수정하고 분만월 기준으로 626두의 교배자료와 569두의 분만자료를 이용하여 번식효 율을 비교하였다(Table 1). 본 종돈장에서 액상정액과 동결 정액을 이용한 교배두수는 각각 총 513두와 113두이었고, 액상정액 및 동결정액 교배 후 분만횟수는 각각 479 및 90 복이었다. Table 2는 B종돈장에서 2015년부터 2017년까지 Yorkshire 품종에서 실행된 인공수정 실적으로서, 총 액상 정액 및 동결정액 교배두수는 각각 2,369두와 60두이었고, 총 분만횟수는 각각 1,991복과 33복이었다.
Table 1. Numbers of artificial insemination (AI) and farrowing of the breeding pigs used in the present study by the physical type of semen and month in the year of 2016 in Farm A
Month Frozen semen Liquid semen
AI Farrowing AI Farrowing
May 5 4 109 103
Jun. 27 23 103 98
Jul. 29 22 92 87
Aug. 31 24 107 100
Sep. 21 17 102 91
Total 113 90 513 479
[Provider:earticle] Download by IP 118.70.52.165 at Monday, December 20, 2021 7:49 PM
www.earticle.net
Table 2. Numbers of artificial insemination (AI) and farrowing of the breeding pigs used using the present study by the physical type of semen and year in Farm B
Year Frozen semen Liquid semen
AI Farrowing AI Farrowing
2015 18 9 876 728
2016 18 10 850 720
2017 24 14 643 543
Total 60 33 2,369 1,991
2. 정액 제조 (1) 액상정액
1) 정액 채취 및 검사
정액은 주 1회 수압법으로 500mL 채취컵에 멸균 거즈 를 부착하여 채취하였다. 채취된 정액은 38℃로 가온된 슬 라이드 글라스에 스포이드를 이용하여 떨어뜨리고 ×200 배율 현미경을 통해 활력을 검사하여 생존률 85% 미만이 거나 정액채취량이 50mL이하일 경우 그 정액은 폐기하였 다.
2) 정액 희석 및 보관
액상정액 제조에 사용된 보존액은 Androhep으로 팩 (90mL)당 2.5×10⁹ 정자농도가 되도록 정액을 희석하였다.
희석 정액은 17℃의 보관고에 보관하였고 보관기간 중 침 전된 정자를 분산시키기 위해 하루에 2회 정액팩을 뒤집어 주었다.
(2) 동결정액
본 시험에 공시된 동결정액은 Canada의 ‘A’사에서 수입 하였으며, 액상정액상태의 정자 생존률이 80% 이상이고 동결-융해 후 생존률이 50% 이상인 정액만을 사용하였다.
동결정액은 아래와 같이 A사가 제공한 매뉴얼에 따라 사 용하였다.
1) 희석액 제조
동결액 제작용기에 적당량의 증류수를 넣고 난황막이 제거된 난황 20%, glucose 1.6%, fructose 1.6%, TES 1.2%, Tris 0.2%를 넣고 교반기로 2~3시간 동안 완전히 교반하였 다. 교반이 끝난 희석액은 5℃에서 1800×g로 20분 동안 원 심분리를 하여 상부의 지질층과 침전된 펠렛을 제외한 액 체 부분만을 수거하여 1차 동결액을 준비하였다. 1차 동결
액에 글리세롤 10.5%와 OEP 1.5%를 첨가한 다음 1차 동결 액으로 최종 부피를 맞추고(500, 1000 혹은 2000mL), 60~90분간 완전히 섞일 때까지 교반하여 2차 동결액을 제 조하였다.
2) 동결방법 및 보관
정액을 채취하여 희석제와 1:1로 혼합하고 실험실로 운 반한 후 정자의 운동성을 검사하여 활력이 80% 이상의 정 액만 동결에 사용하였다. 이후 정자 농도를 5mL straw당 5×109내외로 희석하여 17℃에서 1800×g로 10분 동안 원심 분리한 후 상층액을 제거하고 1차 희석액을 이용하여 정자 펠렛을 풀어 튜브에 옮긴 다음 1차 희석액을 첨가하고 90~120분 동안 1.5~2.0℃/10분 속도로 온도를 낮추었다. 2 차희석은 5℃에서 2차 희석액을 이용해서 15분 간격으로 3 차례 나누어 실시하였다. 3번째 희석을 마친 후에는 정액 을 straw에 분주하고 60~90분간 glycerol 평형을 실시하였 다. 포장이 완료된 straw는 액체질소가 들어있는 용기에서 액체질소 표면보다 7~9cm 위에 12~15분 정치시킨 다음 액 체질소 속으로 넣어 완전히 동결시킨 후 액체질소 통으로 옮겨 보관하였다.
3. 인공수정
(1) 액상정액 인공수정
모돈의 발정 여부는 오전 8시와 오후 4시에 조사하였고, 1차 교배는 발정개시 후 32시간, 2차 교배는 발정개시 후 40시간 시점에 실시하였다. 액상정액 인공수정은 15두의 웅돈에서 채취한 정액을 모돈 513두에 두당 2회씩 실시하 였다.
(2) 동결정액 융해 및 인공수정
발정조사는 액상정액 인공수정 때와 같았고, 동결정액
[Provider:earticle] Download by IP 118.70.52.165 at Monday, December 20, 2021 7:49 PM
www.earticle.net
인공수정은 총 14두의 웅돈에서 채취한 정액을 113두의 모 돈에 두당 2회씩 실시하였다. 동결정액 straw는 38℃의 가 온수조에서 45초 동안 융해시키고 가위로 절단한 다음 주 입통에 담았다. 동결정액의 희석액은 사용 전에 수조에서 26℃로 가온하여 총 부피가 60mL 되게 동결정액이 담겨있 는 주입통에 주입하였다. 희석이 완료된 정액은 현미경 검 사를 실시하여 정자의 활력이 40% 이상이고 기형율은 5%
이하인 정액만을 30분 이내에 사용하였고, 교배 1회분으로 8개 straw를 사용하였다.
4. 조사항목 및 방법
총산자수, 실산자수 및 분만율은 다음과 같이 조사하였 다.
(1) 총산자수 : 모돈이 분만한 총 자돈수(실산 + 미이라 + 사산)
(2) 실산자수 : 살아서 태어난 자돈수(미이라 및 사산을 제외한 포유개시 자돈 수)
(3) 사산두수 : 분만 당시 사고로 인하여 죽은 자돈수 (4) 미이라두수 : 분만 당시 모돈의 체내에서 미이라화
되어 나온 자돈수
(5) 분만율(%) : 실제 분만한 복수/분만예정인 복수 × 100
5. 통계분석
(1) 정액 제조형태 및 분만년도(월)의 효과
A종돈장과 B종돈장에서 조사한 총산자수 및 실산자수 는 다음과 같은 선형 모형을 이용하여 최소 제곱법 (Harvey, 1979)으로 분석하였다.
ij j i
ij s yf e
y =m + + +
yij : i번째 정액의 j번째 분만년도(분만월)에 태어난 개 체의 측정치
μ : 전체 평균
si : i번째 정액의 효과(i = 동결, 액상)
yfj : j번째 분만년도(월)의 효과(분만년도 j = 1,2,3; 분만 월 j = 1, 2, 3, 4, 5)
eij : 임의오차
이상의 Linear model에 의한 정규 방정식을 풀기 위하 여 다음과 같이 마지막 효과를 0으로 하는 제한을 가하였 다(SAS, 1996).
A 종돈장 : s yf B 종돈장 : s yf
본 연구에서 설정한 General Linear Model(GLM)을 [email protected] Package/PC(SAS, 1996)를 이용하여 분석한 결과 로 제공된 4가지 제곱합중에서 불균형된 자료에 적합한 TYPE Ⅲ 제곱합을 이용하여 분산분석을 하였다. 최소제곱 평균치간의 유의성 여부는 다음과 같은 귀무가설을 5% 유 의 수준에서 검정하였다.
H LSMi LSMj
여기서, LSM(i(j)) : i(j)번째 효과의 최소 제곱 평균치(i ≠ j).
(2) 종돈장 및 정액 제조형태의 효과
A종돈장과 B종돈장 번식성적을 통합하여 아래와 같은 선형모형 하에 종돈장 간의 차이 유무와 정액 제조형태의 효과를 분석하였다.
ij j i
ij s yf e
y =m + + +
yij : i번째 정액의 j번째 종돈장에서 태어난 개체의 측 정치
μ : 전체 평균
si : i번째 정액의 효과(i = 동결, 액상) yfj : j번째 분만년도(월)의 효과(종단장 j = 1,2) eij : 임의오차
이상의 Linear model에 의한 정규 방정식을 풀기 위하 여 다음과 같이 마지막 효과를 0으로 하는 제한을 가하였 다(SAS, 1996).
s yf
[Provider:earticle] Download by IP 118.70.52.165 at Monday, December 20, 2021 7:49 PM
www.earticle.net
Ⅲ. 결과
1. 분만월과 정액형태가 번식형질에 미치는 효과
Table 3은 A종돈장의 총산자수, 실산자수, 분만율에 대 한 결과이다. 총산자수는 월간 일정치 않았고(월의 효과:
p<0.01), 동결정액 인공수정 시 액상정액 인공수정 시보다 낮았다(11.8±0.5두 대비 13.4±0.2두; p<0.01). 또한, 총산자 수는 동결정액을 수정했을 경우 7월 및 9월보다 5월에 높 았고(p<0.05), 액상정액을 수정했을 때는 9월 성적이 5월 및 6월, 8월 성적보다 낮았다(p<0.05). 실산자수도 총산자 수에서와 같이 월간 일정치 않았고(p<0.01), 동결정액을 수 정했을 때 액상정액을 수정했을 때보다 낮았다(10.6±0.4두 대비 11.9±0.2두; p<0.01). 기간별 실산자수는 동결정액을 수정했을 경우 5월 및 6월이 7월 및 9월보다 높았고, 액상 정액을 수정했을 때는 6월 및 8월 성적이 7월 성적보다 높 았다. 분만율은 월간 차이가 없었고, 동결정액을 수정했을 때가 액상정액을 수정했을 때보다 낮았다(p<0.01). 월별 동 결정액 대비 액상정액에 대한 분만성적은 항목 및 월에 따 라 전자가 후자보다 낮거나 양자가 동일하였으나, 양자간 총산자수, 실산자수 및 분만율 공히 차이가 없었던 기간은 5월뿐이었다.
2. 분만년도와 정액형태가 번식형질에 미치는 효과
Table 4는 B종돈장의 정액 제조형태에 따른 연도별 번 식성적이다. 총산자수, 실산자수 및 분만율 공히연도별 차 이는 없었고 동결정액을 수정했을 때가 액상정액을 수정 했을 때보다 낮았다(동결정액 대비 액상정액에 대한 총산 자수, 실산자수 및 분만율: 10.2±0.5두 대비 13.5±0.1두, 9.6±0.5두 대비 12.1±0.1두 및 54.6±4.8% 대비 84.1±0.8%;
p<0.01).
3. 종돈장 및 정액형태가 번식형질에 미치는 효과
Table 5는 A종돈장과 B종돈장 결과를 통합하여 분석한 종돈장 및 정액 제조형태에 따른 번식성적이다. A & B 종 돈장 간에 총산자수 및 실산자수 차이는 없었으나, Tables 3과 4에서와 같이 동결정액을 수정했을 때가 액상정액을 수정했을 때보다 총산자수(10.9±0.3두 대비 13.4±0.1두) 및 실산자수(10.0±0.3두 대비 12.0±0.1두)가 낮았다. 분만율은 A종돈장이 B종돈장보다 높았고(p<0.01), 액상정액을 수정 했을 때보다 동결정액을 수정했을 때 낮았다(67.3±2.8% 대 비 88.7±0.9%; p<0.01).
Table 3. Effects of the frozen semen vs. liquid semen on reproductive performance of the female breeding pigs during a period of May through September of the year 2016 in Farm A
Item
May June July Aug. Sep. p-value
Frozen Liquid Frozen Liquid Frozen Liquid Frozen Liquid Frozen Liquid Month (M)
Semen (S) M×S TNB 14.3±1.7abc 13.5±0.3a 13.2±0.7abc 13.9±0.3a 10.4±0.7d 13.2±0.4ab 11.5±0.7cd 13.9±0.3a 9.7±0.8d 12.5±0.4bc <0.01 <0.01 0.13 NBA 12.5±1.6abc 11.9±0.3ab 11.9±0.6abc 12.3±0.3a 9.2±0.7d 11.3±0.3bcd 10.4±0.6cd 12.6±0.3a 9.1±0.8d 11.±0.4abc <0.01 <0.01 0.20 Farrowing
rate (%) 80.0±1.3abc 94.5±2.7a 85.2±5.4abc 95.2±2.7a 75.9±5.2c 94.6±2.9a 77.4±5.1bc 93.5±2.7ab 81.0±6.1bc 89.2±2.8ab 0.75 <0.01 0.76 TNB, total number born; NBA, number born alive.
Table 4. Reproductive performance of the breeding pigs which were bred by artificial insemination using either the frozen semen or liquid semen during a period beginning from 2015 through 2017 in Farm B
Item 2015 2016 2017 p-value
Frozen Liquid Frozen Liquid Frozen Liquid Year (Y) Semen (S) Y×S
TNB 9.7±1.0 13.3±0.1 9.7±1.0 13.2±0.1 11.4±0.8 13.9±0.1 0.10 <0.01 0.66
NBA 9.0±0.9 11.9±0.1 9.2±0.9 11.9±0.1 10.6±0.7 12.5±0.1 0.11 <0.01 0.60
Farrowing rate (%) 50.0±8.7 83.1±1.3 55.6±8.7 84.7±1.3 58.3±7.6 84.5±1.5 0.70 <0.01 0.84 TNB, total number born; NBA, number born alive.
[Provider:earticle] Download by IP 118.70.52.165 at Monday, December 20, 2021 7:49 PM
www.earticle.net
Table 5. Effects of the frozen semen vs. liquid semen on reproductive performance of the female breeding pigs in Farm A and B
Item Farm A Farm B p-value
Frozen Liquid Frozen Liquid Farm (F) Semen (S) F×S
TNB 11.5±0.3 13.4±0.1 10.4±0.6 13.4±0.1 0.12 <0.01 0.10
NBA 10.3±0.3 11.9±0.1 9.8±0.5 12.1±0.1 0.45 <0.01 0.26
Farrowing rate (%) 79.7±3.3 93.4±1.6 55.0±4.6 84.0±0.7 <0.01 <0.01 <0.01
TNB, total number born; NBA, number born alive.
Ⅳ. 고찰
돼지 인공수정에서 정액은 대부분 액상을 사용하고 있 지만 동결정액은 유전자를 장기간 보관할 수 있는 이점이 있기 때문에 동결정액을 실용화하고자 많은 연구가 수행 되고 있다(Benson et al., 2012; Casas and Flores 2013;
Yeste, 2015). 본 연구에서 A종돈장과 B종돈장의 동결정액 에 대한 총산자수(각각 11.5 및 10.4두)는 McNamara와 Knox(2013)의 보고(9.8두)보다는 다소 높은 반면 Estrada 등(2014)이 보고한 성적(13.0두)보다는 낮았다. A종돈장의 동결정액에 대한 분만율(79.7%)은 Weitze 등(1990)이 보고 한 73%보다 다소 높았다. 반면 B종돈장의 분만율(55.0%)은 A종돈장의 성적 및 Weitze 등(1990)이 보고한 성적보다 낮 았는데 아직 이에 대한 명확한 이유는 알려지지 않고 있 다.
최근 동결정액 인공수정에 대한 분만율은 75~80% 범위 의 수치가 보고되고 있다(Dibison et al., 2013). 동결정액에 대한 분만율이 액상정액에 대한 분만율(80~90%)보다 낮기 때문에 최근에는 동결정액 인공수정의 번식효율을 높이기 위하여 자궁경관 주입 대신 심부주입(Martinez et al., 2001; Cacas et al., 2010) 혹은 2회 주입(Spencer et al., 2010) 방법 등이 시도되고 있다. 이와 관련하여 Noguchi 등(2015)은 심부주입 방법에 의한 동결정액 인공수정 시 수태율과 실산자수가 각각 64%와 7.6두 이었다고 보고하 였다.
돼지 인공수정에서 액상정액은 수십 년간 사용되어 왔 다. 이미 1990년도에 액상정액 인공수정의 분만율이 80~
90%에 도달했고, PIGCHAMP(2013) 벤치마킹에 보고된 액 상정액에 대한 2012년도 총산자수, 실산자수 및 분만율은 각각 13.2두, 11.8두 및 83.0%이었으며, Knox(2016)는 2014 년도에 액상정액으로 인공수정한 130만두의 모돈 성적을 조사한 결과 분만율과 총산자수가 각각 86%와 14두이었다
고 보고하였다. 본 연구에서 A종돈장과 B종돈장의 액상정 액에 대한 총산자수(A & B 종돈장 공히 13.4두), 실산자수 (각각 11.9 및 12.1두) 및 분만율(각각 93.4 및 84.0%)은 PIGCHAMP(2013) 벤치마킹 보고 및 Knox(2016)의 보과와 비슷하였다.
액상정액에 대한 분만성적에 비해 동결정액 성적이 낮 았던 본 연구의 결과는 기 알려진 사실과 차이가 없었지 만, 분만월별 총산자수, 실산자수 및 분만율이 동결 및 액 상 정액 모두 9월 성적이 낮거나 낮은 경향을 나타냈던 결 과는 주목할만하였다. 이는 최근 지구온난화의 영향으로 인해 국내에서도 봄이 짧아지고 여름이 길어져 교배시기 부터 임신기간 동안 임신모돈이 고온스트레스를 받은 결 과 때문이었을 것으로 추측된다.
본 연구에서 가장 주목할만한 결과는 5월의 분만율, 총 산자수 및 실산자수 공히 동결정액과 액상정액 간에 차이 가 없었던 점이었다. 이러한 결과는 연중 동결정액의 효율 이 높은 기간을 잘 선택하면 동결정액을 이용해서 인공수 정을 해도 액상정액 인공수정의 성적에 필적할만한 분만 성적을 거둘 수도 있음을 시사하였다.
Ⅴ. 요약
본 연구는 Canada에서 수입한 동결정액으로 인공수정 된 모돈의 번식성적을 조사하여 동결정액을 이용한 인공 수정(동결정액 인공수정)의 효율을 개선할 수 있는 통찰력 을 얻기 위해 수행되었다. 이를 위해 A(GGP) 농장에서 2016년 5월과 9월 사이 총 626회의 동결정액 인공수정과 B(GGP) 농장에서 2015년부터 2017년 기간 동안 수행한 총 2,429 동결정액 인공수정의 결과 기록을 분석하였다. A종 돈장에서 동결정액을 썼을 때 총산자수 및 실산자수는 9월 보다 5월에 높았다(p<0.05). B종돈장의 분만율, 총산자수
[Provider:earticle] Download by IP 118.70.52.165 at Monday, December 20, 2021 7:49 PM
www.earticle.net
및 실산자수는 조사연도 간에 차이가 없었다. A종돈장 결 과와 B종돈장 결과를 통합하여 분석했을 때, 분만율은 A 종돈장이 높았으나(p<0.01) 총산자수와 실산자수는 두 종 돈장간에 차이가 없었고, 동결정액 인공수정을 했을 때가 액상정액 인공수정을 했을 때보다 낮았다(동결정액:액상정 액 인공수정에 대한 총산자수와 실산자수는 각각 10.9±0.3:13.4±0.1두 및 10.0±0.3:12.0±0.1두 이었음; p<0.01).
결론적으로, 이상의 결과는 동결정액 인공수정이 액상정액 인공수정보다 번식 효율이 낮긴 하지만 연중 적절한 시기 에 동결정액 인공수정을 실시하면 번식 효율이 증가될 수 도 있음을 시사한다.
사사
본 연구는 2017년도 경남과학기술대학교 대학회계 연구 비 지원으로 수행되었습니다.
Ⅵ. 참고문헌
1. Benson, J. D., Woods, E. J., Walters, E. M. and Critser, J. K. 2012. The cryobiology of spermatozoa. Theriogenology 78:1682–1699.
2. Casas, I. and Flores, E. 2013. Gene Banking:
Thefreezing strategy. In: Boar Reproduction, S. Bonet, I. Casas, W. Holt, M. Yates (Eds.), Springer, Berlin, pp. 551-588.
3. Casas, I., Sancho, S., Briz, M., Pinart, E., Bussalleu, E., Yeste, M. and Bonet, S. 2010. Fertility after post-cervical artificial insemination with cryopreserved sperm from boar ejaculates of good and poor freezability. Anim. Reprod. Sci. 118:69–76.
4. Estrada, E., Rodrıuez-Gil, J. E., Rocha, L. G., Balasch, S., Bonet, S. and Yeste, M. 2014. Supplementing cryopreservation media with reduced glutathione increases fertility and prolificacy of sows inseminated with frozen-thawed boar semen. Andrology 2:88–99.
5. Gilmore, J. A., Du, J., Tao, J., Peter, A. T. and Critser, J. K. 1996. Osmotic properties of boar spermatozoa and their relevance to cryopreservation. J. Reprod.
Fertil. 107:87-95.
6. Knox, R. V., Rodriguez Zas, S. L., Sloter, N. L., McNamara, K. A., Gall, T. J., Levis, D. G., Safranski, T. J. and Singleton, W. L. 2013. Ananalysis of survey data by size of the breeding herd for the reproductive management practices of north american sow farms. J.
Anim. Sci. 91:433–445.
7. Knox, R. V. 2015. The fertility of frozen boar sperm when used for artificial insemination. Reprod. Dom.
Anim. 50:90-97.
8. Knox, R. V. 2016. Artificial insemination in pigs today.
Theriogenology 85:83-93.
9. Martinez, E. A., Vazquez, J. M., Roca, J., Lucas, X., Gil, M. A. and Vazquez, J. L. 2001. Deep intrauterine insemination and embryo transfer in pigs.
Reprodduction Suppl. 58:301-311.
10. McNamara, K. A. and Knox, R. V. 2013. Effect of using frozen-thawed boar sperm differingin post- thaw motility in the first and second inseminations on pregnancy establishment, litter size, and fetal paternity in relation to time of ovulation. J. Anim.
Sci. 91:5637–5645.
11. Noguchi, M., Yoshioka, K., Hikono, H., Suzuki, C.
and Kikuchi, K. 2015. Effects of semen extenders on frozen-thawed boar sperm characteristics and distribution in the femail genital tract after deep iterauterine insemination in sows. Anim. Reprod. Sci.
163:164-171.
12. PIGCHAMP. Data summary. 2013. Benchmark Farms.
http://benchmark.farms.com/2013_production_trends.
html.
13. Rodríguez-Gil, J. E. and Estrada, E. 2013. Artificial insemination. In: Boar Reproduction, S. Bonet, I.
Casas, W. Holt, M. Yates (Eds.), Springer, Berlin, pp.
589-608.
14. SAS. 1996. SAS/STAT guide for personal computers
@6.12. SAS institute Inc., Cary, NC., USA.
15. Spencer, K. W., Purdy, P. H., Blackburn, H. D., Spiller, S. F., Stewart, T. S. and Knox, R. V. 2010.
Effects of number of motile, frozen-thawed boar sperm and number of fixed-time inseminations on fertility in estrous-synchronized gilts. Anim. Reprod.
Sci. 121:259-266.
16. Weitze, K. F., Stampa, E., Richter, L., Willmen, T. and
[Provider:earticle] Download by IP 118.70.52.165 at Monday, December 20, 2021 7:49 PM
www.earticle.net
Waberski, D. 1990. Fertility of frozen boar semen:
influence of packaging, number of inseminations, and seminal plasma. In Second International Conference on Boar Semen Preservation. Paul Parey Scientific Publishers, Berlin, Beltsville, MD, USA. pp. 139-144.
17. Yeste, M. 2015. Recent advances in boar sperm
cryopreservation: State of the art and current perspectives. Reprod. Dom. Anim. 50(suppl. 2):71-79.
(Received 05 June 2018, Revised 26 October 2018, Accepted 12 November 2018)
[Provider:earticle] Download by IP 118.70.52.165 at Monday, December 20, 2021 7:49 PM