국내산 땅콩( Arachis hypogaea L.) 품종인 ‘상안’과
‘흑생’의 영양성분 및 항산화 활성
박서연1․이종헌1․김보민1․백수정1․박보라1․이상훈2․차보숙3․남진식3
1수원여자대학교 식품분석연구센터
2농촌진흥청 국립농업과학원 농식품자원부
3수원여자대학교 식품영양과
Nutritional Components and Antioxidant Activities of ‘Sangan’ and
‘Heuksaeng’ Peanuts (Arachis hypogaea L.) Grown in Korea
Seo-Yeon Park1, Jong-Hun Lee1, Bo-Min Kim1, Su-Jeong Baik1, Bo-Ra Park1, Sang-Hoon Lee2, Bo-Sook Cha3, and Jin-Sik Nam3
1Food Analysis Research Center and 3Department of Food and Nutrition, Suwon Women’s University
2Department of Agrofood Resources, National Institute of Agricultural Sciences, RDA
ABSTRACT This study investigated and compared the nutritional components and antioxidant effects of Sangan and Heuksaeng peanuts. Among the proximate compositions, the Heuksaeng peanut was higher in all components, except crude protein, than that of the Sangan peanut. The dietary fiber content of the Heuksaeng peanut was 1.7 times higher than that of the Sangan peanut. The amino acid content of the Sangan peanut was higher than that of the Heuksaeng peanut, except for arginine and cystine, and the content of glutamic acid was the same. The potassium level of the Sangan peanut was higher than that of the Heuksaeng peanut, but other minerals were higher in the Heuksaeng peanut.
The oleic acid and palmitic acid contents were higher in the Heuksaeng peanut than that in the Sangan peanut, while linoleic acid showed the opposite trend. The total polyphenol (22.19 mg/g) and flavonoid (1.36 mg/g) contents were the highest in the 70% acetone extract of the Heuksaeng peanut and the 80% methanol extract of Heuksaeng peanut, respectively. For the results of 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging activity, the 70% acetone extract of the Sangan peanut showed the highest activity. The 2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonate) (ABTS) radical scavenging activity and the iron chelating effect were the highest in the 80% methanol extract of the Heuksaeng peanut, and the nitrite scavenging activity was the highest in the 80% methanol extract of the Sangan peanut. Further, the total polyphenol contents were significantly correlated with the DPPH and ABTS radical scavenging activity.
Key words: peanut, Arachis hypogaea L., Heuksaeng, nutritional component, antioxidant activity
Received 3 July 2019; Accepted 26 July 2019
Corresponding author: Jin-Sik Nam, Department of Food and Nutri- tion, Suwon Women’s University, Hwaseong, Gyeonggi 18333, Korea E-mail: [email protected], Phone: +82-31-290-8962
Author information: Seo-Yeon Park (Researcher), Jong-Hun Lee (Researcher), Bo-Min Kim (Researcher), Su-Jeong Baik (Researcher), Bo-Ra Park (Researcher), Bo-Sook Cha (Professor), Jin-Sik Nam (Professor)
서 론
땅콩(Arachis hypogaea L.)은 콩과(Fabaceae)에 속하 는 일년생 초본식물로 남미에서 유래되어 현재 아시아와 아 프리카를 포함한 열대 및 아열대 기후 지역에서 재배되고 있다(Stalker, 1997). 땅콩의 주성분은 지방이기 때문에 유 지작물로 재배되어 식용기름의 원료로 사용하고 있으며, 단 백질과 섬유질도 풍부하여 가공하지 않은 상태로 소비가 이 루어지고 있다. 또한 땅콩버터, 간식용 볶음땅콩, 제과・제빵
등의 다양한 형태로 가공된 제품의 원료로 이용되고 있어 전 세계적으로 널리 소비되고 있는 견과류 중 하나이다(Arya 등, 2016).
일반적으로 땅콩에 함유된 단일 불포화지방산이 콜레스 테롤을 감소시켜 고지혈증 및 심혈관계 질환의 예방에 효과 적이며 염증을 완화한다고 보고되었다(Alper와 Mattes, 2003; Ros와 Mataix, 2006). 단백질을 구성하는 20가지의 아미노산은 다양한 비율로 구성되어 있으며, 비필수 아미노 산 중 하나인 아르기닌(arginine)이 다른 식품에 비해 풍부 하여 면역 체계를 강화하고 호르몬과 혈당을 조절하는 데 효과적인 것으로 알려져 있다(Arya 등, 2016). 또한 땅콩은 식이섬유와 무기질, 비타민의 좋은 급원으로 혈압을 낮추는 데 도움이 될 뿐만 아니라(Bhat 등, 2019), 항산화 활성을 나타내는 비타민 B군과 E, 셀레늄 등을 함유하고 있어 노화 를 지연시키는 역할을 한다(Gülçin, 2010). 이전 연구에 따
르면 땅콩에는 p-coumaric acid, ferulic acid, vanillic acid 등의 페놀 화합물과 resveratrol이 풍부하여 인체의 산화를 저해하는 것으로 알려져 있다(Chuenchom 등, 2016).
이처럼 땅콩은 우수한 영양학적 가치를 가졌음에도 불구 하고 수입개방에 따른 시장 가격의 하락과 외국산 견과류의 수입 증대로 국산 땅콩의 차별화가 필요한 실정이다. 국내에 서는 땅콩의 소비량을 확대하고자 재배면적당 생산량이 좋 으며 건강을 중시하는 소비자의 기호에 적합한 품종을 개발 하기 위한 연구를 진행하였으며, 그 결과 성숙이 잘 되고 안토시아닌을 함유한 신품종인 ‘흑생’을 육성하게 되었다.
흑생은 다분지 단경 계통인 ‘익산31’호를 모본으로 소분지 검정 종피 계통인 ‘밀양35호’를 부본으로 하여 다분지 단경 다수성인 ‘밀양61호’가 선발되어 명명되었으며, 검정땅콩 품종으로써 우수성이 인정되어 2014년 농촌진흥청에서 신 품종으로 선정되었다(Pae 등, 2017). 흑생은 일반땅콩과 달 리 종피에 2종의 안토시아닌인 delphinidin-3-glucoside (D3G)와 cyanidin-3-glucoside(C3C)가 함유되어 있어 검 은색을 띠며, 종실은 형태가 장타원형이고 병해 저항성이 강한 편이며 전국에서 재배가 가능하다(Pae 등, 2017). 현 재까지 다양한 품종의 국내산 땅콩에 관한 영양성분 및 항산 화 활성에 관한 연구는 진행되고 있으나(Cho, 1993; Lee 등, 2004; Lim 등, 2017), 흑생땅콩에 관한 연구는 미비하여 정보가 매우 부족한 실정이다.
따라서 본 연구에서는 신품종 땅콩인 ‘흑생’의 영양성분 과 항산화 활성을 일반땅콩 품종 중 하나인 ‘상안’과 비교하 여 평가했으며, 흑생땅콩을 식품 및 식품소재로서의 보급 확대를 위한 기초 자료를 제공하고자 한다.
재료 및 방법
실험재료 및 시약
본 연구에 사용한 땅콩은 국립종자원에서 보급종을 분양 받아 재배된 것으로 품종은 각각 ‘상안’과 ‘흑생’이었다. 땅 콩은 충남 당진에서 2018년 10월에 수확된 것을 구입하였 으며, 시료는 산패방지를 위하여 도착 즉시 밀봉하여 냉장 보관하였다. 영양성분을 분석하기 위해 분쇄기(Blixer; Robot Coupe USA, Inc., Jackson, MS, USA)로 마쇄 후 실험에 사용하였다. 실험에 사용한 아미노산 및 지방산 표준품, Folin- Ciocalteu’s reagent, gallic acid, quercetin, 2,2-diphen- yl-1-picrylhydrazyl(DPPH), 2,2’-azino-bis(3-ethylben- zothiazoline-6-sulfonate) diammonium salt(ABTS), 3- (2-pyridyl)-5,6-diphenyl-1,2,4-triazine-p,p’-disul- fonic acid monosodium salt hydrate(ferrozine), Griess reagent는 Sigma-Aldrich Co.(St. Louis, MO, USA)에서 구입하였으며, 무기질 조성 분석에 필요한 표준품은 Accu Standard(New Haven, CT, USA)에서 구입하였다. 그 밖 의 모든 시약은 Samchun Co.(Pyeongtaek, Korea)에서 구
입하여 이용하였다.
일반성분 및 식이섬유 분석
땅콩의 일반성분은 AOAC법(2005)에 따라 분석하였다.
수분은 105°C 상압가열건조법으로, 조회분은 550°C 회화 로를 이용한 직접회화법으로, 조단백질은 자동질소증류장 치(2300 Kjeltec Analyzer Unit, Foss Tecator AB, Hoga- nas, Sweden)를 이용한 Kjeldahl법으로, 조지방은 Soxhlet 추출법으로 측정하였다. 탄수화물은 시료 전체 함량을 100
%로 하여 수분, 조회분, 조단백질 및 조지방 함량을 감하여 얻은 값으로 나타내었다. 식이섬유는 식이섬유 추출 장치 (FibertecTM System, 1023 Filtration Module, Foss Te- cator Co., Hillerød, Denmark)를 이용한 효소중량법으로 분석하였다.
아미노산 분석
시료 80 mg을 6 N HCl 10 mL와 혼합하여 110°C dry oven(OF-22, Jeio Tech, Daejeon, Korea)에서 22시간 동 안 가수분해하였다. 이를 여과 및 세척하여 감압농축기(R- 210, Buchi, Flawil, Switzerland)로 농축하고 dilution buf- fer 10 mL를 포함한 증류수로 50 mL로 정용한 다음 0.45 μm membrane filter(Millipore Co., Bedford, MA, USA) 로 여과하였다. 아미노산 분석을 위해 cation exchange resin(11±2 μm) column이 장착된 자동분석기(Biochrom 30, Pharmacia Biotech, Stockholm, Sweden)에 여과액 20 μL를 주입하였으며, 440 nm와 570 nm에서 검출하였다.
유속과 buffer는 ninhydrin 25.0 mL/h, pH는 3.20~6.45로 조정하였다.
무기질 분석
무기질 함량 분석은 약 0.5 g의 시료를 취하여 산분해 용액(HNO3/H2O2, 9:1)을 10 mL 첨가하여 고주파 분해장치 (Ethos TC Digestion Labstation 5000, Milestone Inc., Monroe, CT, USA)로 30분 동안 반응시켜 분해했다. 산분 해된 시료를 여과지(Whatman No. 5A, Whatman Interna- tional Ltd., Maidstone, UK)에 통과시킨 후 ICP-OES (Perkin Elmer Co., Shelton, CT, USA)에 주입하여 분석하 였다. 분석 조건은 reflected power 1,400 W, plasma 10 L/min, gas flow는 nebulizer 0.55 L/min, auxiliary 0.2 L/min으로 하였다. 측정 파장은 칼슘(Ca) 317.926 nm, 구 리(Cu) 327.393 nm, 철(Fe) 238.204 nm, 칼륨(K) 766.490 nm, 마그네슘(Mg) 279.553 nm, 나트륨(Na) 589.592 nm, 아연(Zn) 206.200 nm였다. 셀레늄(Se)은 ICP-MS(Perkin Elmer Co.)로 분석하였으며, 분석 조건은 reflected power 1,400 W, nebulizer gas flow rate 0.92 L/min, auxiliary gas flow rate 1.5 L/min, lens voltage 9.6 V, plasma flow 18 L/min, dwelling time 100 m/s와 같으며 질량 값 78로 분석하였다.
지방산 분석
지방산 조성 및 함량은 AOAC법(2005)에 준하여 분석하 였다. 분쇄한 시료 10 g에서 추출한 지질 25 mg을 취해 0.5 N NaOH-methanol 2 mL를 가하여 알칼리염을 만든 후 14% BF3-methanol 용액 2 mL로 유도체화시켰다. 이를 이 소옥탄과 혼합한 다음 무수 황산나트륨으로 탈수시켜 분석 시료로 사용했다. 지방산 분석을 위해 가스크로마토그래피 (GC; Agilent 6890N/5975 MSD series, Avondale, PA, USA)를 이용했으며, column은 SPTM 2560 column(100 m×0.25 mm; Supelco Inc., Bellefonte, PA, USA)을 사용 했다. 분석 조건 중 column의 온도는 초기 170°C에서 15분 간 머문 후 180°C까지 1°C/min으로 상승시키고 15분간 유 지, 245°C까지 3°C/min의 속도로 상승시켜 13분간 유지하 여 분리능을 높였다. 검출기는 flame ionization detector (FID, 285°C), column의 초기온도 주입구 온도는 250°C, carrier gas는 He(0.75 mL/min)로 설정하였다.
추출물의 제조 및 수율 측정
땅콩의 항산화 활성을 측정하기 위해 80% 메탄올, 80%
에탄올, 70% 아세톤을 이용하여 추출하였다. 시료 20 g에 각각의 추출용매 200 mL를 가하여 24시간 동안 shaking water bath(BS-21, Jeio Tech., Seoul, Korea)로 실온에 서 진탕하여 추출한 후, 상등액을 분리하기 위해 8,000 rpm 으로 30분 동안 원심분리(Avanti J-26 XPI, Beckman Coulter, Fullerton, CA, USA) 한 다음 여과지(Whatman No. 1, Whatman International Ltd.)에 여과하였다. 여과액 중의 용매를 완전히 제거하기 위해 감압 농축(Buchi)한 다 음 동결건조(FD-5512, Ilshin Lab. Co., Ltd., Gyeonggi, Korea)하여 수율과 항산화 활성을 측정하였다. 수율은 동결 건조한 시료 무게를 원시료 무게로 나눈 후 100%로 환산하 여 나타내었다.
총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량 측정
추출물의 총 폴리페놀 함량은 Singleton 등(1999)의 방 법에 준하여 측정하였다. 시료 25 μL에 Folin-Ciocalteu’s reagent(50 μL)와 20% Na2CO3(150 μL)를 가하여 15분 동안 정치시킨 후, ELISA plate reader(VersaMax, Molec- ular Devices, Sunnyvale, CA, USA)로 725 nm에서 흡광 도를 측정하였다. 표준물질로 gallic acid를 이용해 검량선 을 작성한 후 추출물의 총 폴리페놀 함량을 1 g당 mg gallic acid equivalent(mg GAE/g)로 나타내었다.
총 플라보노이드 함량은 Zhishen 등(1999)의 방법을 변 형하여 측정하였다. 일정 농도로 녹인 땅콩 추출물 20 μL에 diethylene glycol 200 μL와 1 N NaOH 용액 20 μL를 첨가 한 후 40°C에서 1시간 동안 shaking water bath(Jeio Tech)에서 반응시켰다. 반응이 끝난 시료를 420 nm에서 흡광도를 측정했으며(Molecular Devices), 표준물질인 quercetin으로 표준곡선을 작성하여 추출물 1 g에 대한 mg
quercetin equivalent(mg QE/g)로 표기하였다.
항산화 활성 측정
땅콩 추출물의 항산화 활성을 측정하기 위해 DPPH와 ABTS 라디칼 소거능, 철 킬레이팅 활성, 아질산염 소거능 을 확인하였다. DPPH 라디칼 소거능은 Blois(1958)의 방법 에 준하여 측정하였다. 시료 용액 100 μL에 0.1 mM DPPH 용액 900 μL를 첨가하여 암실에서 30분간 반응시킨 후, 517 nm에서 ELISA plate reader(Molecular Devices)로 흡광도를 측정하였다. ABTS 라디칼 소거능은 Re 등(1999) 의 방법에 따라 7 mM ABTS 용액과 2.45 mM potassium persulfate를 혼합하여 빛을 차단한 상태로 15시간 방치하 여 라디칼을 생성시켰다. 이 액을 734 nm에서 0.70±0.02 의 흡광도 값을 나타낼 때까지 에탄올로 희석해 ABTS 라디 칼 용액으로 하여 실험에 사용하였다. 추출물 50 μL와 ABTS 시약 1 mL를 혼합하여 암실에서 10분 동안 방치한 후 734 nm에서 흡광도를 측정하였다. 철 킬레이팅 활성은 Dinis 등 (1994)의 방법을 변형하여 분석하였다. 농도별로 제조한 추 출물 1 mL에 2 mM FeCl2와 5 mM ferrozine을 각각 25 μL 첨가하여 실온에서 10분간 정치한 후 562 nm에서 흡광 도를 측정하였다. 아질산염 소거능은 Kato 등(1987)의 방법 을 응용하여 측정하였다. 추출물 40 μL에 1 mM NaNO2 20 μL를 가하고 0.1 N HCl 140 μL를 첨가해 반응용액의 pH를 1.2로 조정했으며, 37°C에서 1시간 동안 반응시켰다.
반응이 끝난 후 5%(v/v) 초산용액 1 mL와 Griess 시약 80 μL를 첨가하여 실온에서 15분간 반응시킨 다음 520 nm에 서 흡광도를 측정하였다.
이때 소거능 및 킬레이팅 활성(%)은 시료 첨가구와 무첨 가구의 흡광도 차이를 백분율로 나타낸 후 50%의 활성을 나타내는 시료 농도인 EC50(effective concentration) 값을 구하였다.
통계분석
아미노산 분석을 제외한 모든 실험은 3회 이상 반복 측정 한 결과를 평균과 표준편차로 나타냈으며, 통계분석은 SPSS 프로그램(Ver. 10.0, SPSS Inc., Chicago, IL, USA)으로 실시하였다. 일반성분과 무기질, 지방산은 독립표본 t-test 로 P<0.05, P<0.01, P<0.001 수준에서 유의성을 검정하였 다. 항산화 활성은 one-way ANOVA(analysis of varia- tion)로 분석한 후 Duncan’s multiple range test로 P<0.05 수준에서 유의적인 차이를 확인하였으며, 항산화 성분과 활 성 간의 상관관계를 분석하였다.
결과 및 고찰
땅콩의 일반성분과 식이섬유
상안땅콩과 흑생땅콩의 일반성분은 Table 1에 나타내었 다. 두 품종 모두 조지방의 함량이 40% 이상으로 대부분을
Table 1. Proximate composition and dietary fiber of Sangan and Heuksaeng peanut (% fresh weight)
Nutrients Sangan Heuksaeng t-value
Moisture Crude ash Crude protein Crude lipid Carbohydrate Dietary fiber
7.52±0.041) 2.61±0.02 29.64±0.33 40.49±0.33 19.75±0.55 9.94±0.25
7.55±0.08 2.65±0.04 28.61±0.16 41.39±0.08 19.81±0.02 17.31±0.27
−0.652 −1.960 4.890**
−4.573* −0.190
−34.747***
1)Results are presented as mean±SD (n=3).
Significant differences are indicated as: *P<0.05, **P<0.01, ***P<0.001.
Table 2. Amino acid contents of Sangan and Heuksaeng peanut (% fresh weight) Sangan Heuksaeng
Essential amino acid
Threonine Valine Methionine Isoleucine Leucine Phenylalanine Lysine Tryptophan
0.77 1.20 0.31 0.92 1.88 1.51 1.00 0.27
0.72 1.06 0.28 0.87 1.84 1.44 0.99 0.25 Total essential amino acid 7.86 7.45
Nonessential amino acid
Aspartic acid Serine Glutamic acid Proline Glycine Alanine Cystine Tyrosine Histidine Arginine
3.29 1.42 5.18 1.22 1.71 1.17 0.43 1.13 0.66 3.34
3.25 1.37 5.18 1.18 1.60 1.12 0.48 1.05 0.62 3.40 Total nonessential amino acid 19.55 19.25 Total amino acid 27.41 26.70 Total EAA1)/ Total AA2) (%) 40.20 38.70
1)Total EAA: total essential amino acid.
2)Total AA: total amino acid.
차지했으며, 조단백질은 상안땅콩과 흑생땅콩이 각각 29.64
%와 28.61%로 상안땅콩이 유의적으로 높은 함량을 보였다 (P<0.01). 흑생땅콩의 탄수화물(19.81%), 수분(7.55%), 조 회분(2.65%)이 상안땅콩보다 다소 높게 함유되어 있었으 며, 특히 식이섬유의 함량은 흑생땅콩이 17.31%로 상안땅 콩보다 1.7배 이상 높게 측정되어 P<0.001 수준에서 유의 한 차이를 나타내었다. 일반품종 중 하나인 ‘대광’과 비교한 결과 수분, 조회분, 조단백질이 본 연구의 상안땅콩보다 낮 았으나, 조지방의 함량이 48.47%로 높았으며 탄수화물의 함 량은 유사하였다(Lim 등, 2017). 미국 농무부(USDA, 2018) 의 보고에 따르면 미국산 일반땅콩의 조지방은 49.24%로 본 연구에서 측정한 두 품종의 땅콩과 비교했을 때 함량이 높았 으나 수분과 조단백질은 각각 6.50%와 25.80%로 국내산에 비해 낮은 것으로 확인되었다. Liu 등(2019)은 중국산 땅콩 의 조지방 함량을 분석한 결과 40.96~42.47%의 범위로 국 내산 땅콩과 유사하였으나, 품종 간에 약간의 차이가 있었다 고 보고하였다. 흑생땅콩의 식이섬유 함량은 다양한 품종의 브라질산 땅콩의 식이섬유를 분석한 결과(8.0~13.6%)보다 높은 것으로 확인되었다(Lozano 등, 2019). 식이섬유는 체 내 노폐물을 흡착해 배출시키고 오랜 시간 포만감을 유지하 게 해주며 장내 세균의 균형을 맞춰주기 때문에 면역체계와 에너지 대사에 영향을 미친다고 알려져 있다(Palafox-Car- los 등, 2011). 따라서 흑생땅콩의 섭취는 부족한 식이섬유 를 보충하는 데 도움이 될 것으로 생각된다.
땅콩의 아미노산 함량
상안과 흑생땅콩의 아미노산 함량과 조성을 분석한 결과, 총 17종이 검출되었으며 Table 2에 그 결과를 나타내었다.
땅콩의 아미노산 조성은 서로 유사한 경향으로 나타났고, 품종과 관계없이 글루탐산(glutamic acid), 아르기닌, 아스 파트산(aspartic acid)이 주요 아미노산 성분으로 확인되었 으며 전체의 43% 이상을 차지하였다. 글루탐산과 시스틴 (cystine), 아르기닌을 제외한 모든 아미노산 함량은 상안땅 콩이 높았으며, 총 아미노산의 함량도 상안이 19.55%로 흑 생땅콩보다 0.3%가 높은 것으로 측정되었다. 이러한 결과는 중국산 땅콩의 아미노산 조성을 분석한 결과 주요 아미노산 이 글루탐산, 아르기닌, 아스파트산으로 이 성분들의 합이 전체 아미노산의 40% 이상을 차지하였다는 Liu 등(2019) 의 연구와 유사하였다. Cho(1993)는 국내산 땅콩의 품종별
아미노산 조성을 분석한 결과, 글루탐산> 아르기닌> 아스파 트산 순으로 함량이 나타났으며, 전체 아미노산의 50% 이상 을 차지하였으나 품종별로 차이가 있음을 확인하였다. 땅콩 은 아르기닌의 함량이 높은 식품 중 하나로 아르기닌은 동맥 을 이완시켜 체내 혈류를 조절하고 피로회복 및 인슐린 분비 를 촉진하는 데 관여할 뿐만 아니라, 불필요한 체지방을 감 소시키고 면역력을 강화한다(Moncada와 Higgs, 1993). 또 한 글루탐산과 아스파트산은 식품의 향미 성분을 구성하는 아미노산으로 땅콩의 맛을 결정하는 데 중요한 역할을 한다 (Wang 등, 2013). 이러한 아미노산이 풍부한 땅콩을 가공 제품에 첨가할 시 향미 증진에 도움을 줄 것이며, 인체의 생리활성에 영향을 줄 것으로 생각된다.
땅콩의 무기질 함량
땅콩의 무기질 함량 분석을 진행한 결과는 Table 3에 나 타냈으며, 품종에 따라 유의적인 차이를 보였다. 총 8종의
Table 3. Contents of minerals of Sangan and Heuksaeng peanut (mg/kg fresh weight)
Nutrients Sangan Heuksaeng t-value
Ca Cu Fe K Mg Na Zn Se
651.98±26.881) 6.72±0.15 25.60±0.89 8,023.97±195.63 2,125.78±4.30 17.77±0.35 29.33±0.34 0.65±0.32
721.23±18.91 7.14±0.12 39.43±0.61 7,153.32±40.96 2,324.14±28.06 40.30±1.90 31.61±0.18 0.78±0.12
−3.649* −3.685*
−22.379***
7.545**
−12.104***
−20.206***
−10.352***
−0.675
1)Results are presented as mean±SD (n=3).
Significant differences are indicated as: *P<0.05, **P<0.01, ***P<0.001.
무기질이 검출되었으며, 전체 품종에서 가장 많은 함량을 나 타낸 성분은 칼륨으로 상안땅콩과 흑생땅콩이 각각 8,023.97, 7,153.32 mg/kg을 함유하고 있어 상안땅콩의 함량이 유의 적으로 높았다(P<0.01). 칼륨과 함께 주요한 무기질로는 마 그네슘과 칼슘인 것으로 확인되었으며, 흑생땅콩의 마그네 슘과 칼슘 함량은 각각 2,324.14 mg/kg과 721.23 mg/kg으 로 본 연구의 상안땅콩뿐만 아니라 품종별 미국산 땅콩의 마 그네슘(189.4~218.9 mg/100 g) 함량보다 높았으나 칼슘 (76.4~99.4 mg/100 g) 함량은 낮았다(Jonnala 등, 2005).
철, 나트륨, 아연의 함량은 상안땅콩보다 흑생땅콩이 유의적 으로 높았으며(P<0.001), 셀레늄의 함량도 0.78 mg/kg으 로 흑생땅콩이 높았으나 유의적인 차이는 없었다. 국내산 땅콩의 품종별 무기성분 함량을 분석한 결과(Cho, 1993), 주요 성분은 칼륨, 마그네슘, 칼슘으로 본 연구와 일치하였 으나 함량의 차이가 있었으며 품종 간에 함량 차이도 존재하 였다. 여러 품종의 브라질 땅콩을 분석한 결과 인(P)이 2.59
~4.26 g/kg 범위로 가장 많은 함량을 보였고, 철, 망간(Mn), 칼슘, 아연, 마그네슘이 검출되었으나 흑생땅콩보다는 낮아 본 연구와 다소 차이는 있었다(Lozano 등, 2019). 칼륨은 나트륨과 함께 신체의 전해질 균형과 골격근의 수축 및 이완 에 관여하며, 특히 혈압 조절에 효과적인 것으로 알려져 있 다(Terker 등, 2015). 마그네슘은 근육 및 신경 기능과 혈압 유지에 필요하며(Gröber 등, 2015), 칼슘은 뼈와 치아 발달 에 필요한 무기질로 근육에 존재하는 신경 신호의 전달 및 혈액 응고 작용에 중요한 역할을 한다(Pravina 등, 2013).
칼륨을 제외한 모든 무기질의 함량이 흑생땅콩에서 높은 수 치를 나타낸 것으로 보아 흑생땅콩은 균형 있는 무기질 공급 에 도움을 주는 식품으로 적합할 것이며, 상안땅콩에 비해 다양한 생리활성을 나타낼 것으로 기대된다.
땅콩의 지방산 함량
상안땅콩 및 흑생땅콩의 지방산 함량 및 조성은 Table 4에 나타내었다. 국내산 땅콩에서 총 19가지의 지방산이 검 출되었고, 라우르산(lauric acid, C12:0), 펜타데칸산(pen- tadecanoic acid, C15:0), 리그노세르산(lignoceric acid, C24:0)을 제외한 모든 지방산은 유의적인 차이를 나타내었 다. 주요한 지방산으로는 불포화지방산인 올레산(oleic acid,
C18:1, n-9)과 리놀레산(linoleic acid, C18:2, n-6)으로 전 체 지방산의 70% 이상을 차지하였다. 흑생땅콩의 올레산 함량은 16,766.50 mg%로 상안땅콩(16,570.38 mg%)보다 높았지만, 리놀레산 함량은 흑생땅콩이 13,424.20 mg%로 상안땅콩(13,903.72 mg%)보다 낮은 것으로 확인되었다.
포화지방산 중에서는 팔미트산(palmitic acid, C16:0)의 함 량이 가장 높았으며, 흑생땅콩이 5,204.81 mg%로 상안땅 콩보다 약 612 mg% 높은 함량이 측정되었다. 포화지방산 중 높은 비율로 차지하는 비헨산(behinic acid, C22:0), 아 라키드산(arachidic acid, C20:0), 스테아르산(stearic acid, C18:0)은 흑생땅콩이 상안땅콩보다 유의적으로 높았다(P<
0.001). 총 포화지방산의 함량은 흑생땅콩이 8,903.02 mg%
로 상안땅콩보다 높았고, 총 불포화지방산의 함량은 상안땅 콩이 30,879.49 mg%로 흑생땅콩보다 높았다. 총 포화지방 산에 대한 총 불포화지방산의 비율은 상안땅콩과 흑생땅콩 이 각각 3.99, 3.43으로 유의적인 차이를 보였다(P<0.001).
이러한 지방산 조성은 여러 연구 결과와 유사하였으며, 품종 과 재배지에 따라 함량의 차이가 다소 있었다(Shin, 2013;
Lim 등, 2017; Liu 등, 2019; Lozano 등, 2019). Pae 등 (2017)은 흑생땅콩의 올레산 함량이 전체 지방산의 53.4%
로 일반땅콩보다 5% 낮고 리놀레산은 31.2%로 일반품종보 다 5.1% 높다고 하여 본 연구와 차이가 있었다. Brown 등 (1975)은 재배지의 기온이 낮아질수록 땅콩의 불포화도는 증가한다고 하였으며, Young 등(1972)은 땅콩의 성숙 정도 에 따라 올레산이 증가하고 리놀레산이 감소하는 경향을 나 타냈다고 보고하였다. 따라서 땅콩의 지방산 조성과 함량은 품종뿐만 아니라 기후와 재배지 등의 환경적인 영향과 성숙 정도 등 여러 요인에 의해 달라질 수 있는 것으로 생각된다.
또한 땅콩은 산패되기 쉬운 불포화지방산이 높은 비율로 존 재하기 때문에 가공에 의해 이미・이취 등이 유발되기 쉽고 제품에 첨가할 시 맛과 향에 영향을 미칠 수 있으므로 제품 생산 및 저장 시에 이를 고려해야 한다.
수율, 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량
용매에 따른 땅콩 추출물의 항산화 활성을 비교하기 위하 여 80% 메탄올과 80% 에탄올, 70% 아세톤을 이용하여 추 출했으며, 결과는 Table 5와 같다. 수율은 6.03~16.02%의
Table 4. Components of fatty acid of Sangan and Heuksaeng peanut (mg% fresh weight)
Fatty acid Sangan Heuksaeng t-value
Lauric acid (C12:0) Myristic acid (C14:0) Pentadecanoic acid (C15:0) Palmitic acid (C16:0) Palmitoleic acid (C16:1) Margaric acid (C17:0) Stearic acid (C18:0) Oleic acid (C18:1, n-9) Linoleic acid (C18:2, n-6) Linolenic acid (C18:3, n-3) Arachidic acid (C20:0) Gadoleic acid (C20:1) Eicosadienoic acid (C20:2) Heneicosanoic acid (C21:0) Behenic acid (C22:0) Erucic acid (C22:1, n-9) Tricosanoic acid (C23:0) Lignoceric acid (C24:0) Nervonic acid (C24:1)
1.36±0.11 16.85±0.36 3.75±0.13 4,591.99±9.33 27.83±0.17 57.58±1.84 1,170.86±7.73 16,570.38±57.19 13,903.72±43.05 23.29±0.13 523.24±1.89 316.27±5.15 13.22±0.03 9.63±0.23 885.05±5.44 18.08±0.24 16.27±0.14 461.38±1.88 6.69±0.46
2.66±1.10 15.49±0.46 3.87±0.11 5,204.81±13.97 26.51±0.40 46.80±0.35 1,564.77±6.34 16,766.50±14.58 13,424.20±8.37 23.72±0.09 620.61±2.55 257.99±2.18 11.62±0.89 8.48±0.13 958.89±2.90 13.15±0.12 15.38±0.04 461.26±0.73 9.31±0.37
−2.042 4.027* −1.174
−63.197***
5.260**
9.958**
−68.063***
−5.755* 18.939**
−4.827**
−53.107***
18.034***
3.096* 7.507**
−20.735***
32.166***
10.465***
0.107 −7.720**
Total saturated fatty acid Total unsaturated fatty acid
Total unsaturated fatty acid/ total saturated fatty acid
7,737.98±18.22 30,879.49±10.35 3.99±0.01
8,903.02±22.01 30,533.01±25.12 3.43±0.01
−70.619***
22.085***
71.662***
1)Results are presented as mean±SD (n=3).
Significant differences are indicated as: *P<0.05, **P<0.01, ***P<0.001.
Table 5. Extraction of peanuts with 80% methanol, 80% ethanol, and 70% acetone: yield, total phenolic content (TPC), and total flavonoid content (TFC) of extracts
Sample Yield (%)1) TPC (mg GAE/g) TFC (mg QE/g)
Sangan peanut
80% methanol 80% ethanol 70% acetone
6.65±0.35d2)3) 13.35±1.71bc 15.52±1.35ab
18.37±0.28c 9.68±0.06d 20.45±0.86b
1.04±0.03b 0.60±0.02d 0.77±0.01c Heuksaeng
peanut
80% methanol 80% ethanol 70% acetone
6.03±0.68d 12.43±1.92c 16.02±0.99a
19.62±0.62b 9.83±0.57d 22.19±0.05a
1.36±0.14a 0.71±0.01c 1.06±0.10b
1)The extraction yield was calculated as % yield=(weight of sample extracts/ initial weight of sample)×100.
2)Results are presented as mean±SD (n=3).
3)Means with different letters in the same column are significantly different at P<0.05.
범위로 나타났으며, 두 품종 모두 70% 아세톤> 80% 에탄 올> 80% 메탄올 순으로 수율이 높음을 확인하였다. 흑생땅 콩의 70% 아세톤 추출물이 16.02%로 모든 추출물 중에서 가장 높은 수율을 나타냈으며, 흑생땅콩의 80% 메탄올 추출 물이 가장 낮았으나 상안땅콩의 80% 메탄올 추출물과 유의 적인 차이는 없었다(P>0.05). 이와 유사한 추출방법으로 피 스타치오를 추출하였을 때 아세톤이 28.79%로 가장 높았고 메탄올(14.98%), 에탄올(14.02%) 순으로 나타나(Taghizadeh 등, 2018) 아세톤이 땅콩을 포함한 견과류를 추출하는 데 효과적일 것으로 보인다.
추출용매와 품종에 따른 땅콩의 총 폴리페놀 및 플라보노 이드 함량을 측정한 결과는 Table 5에 나타내었다. 총 폴리 페놀 함량은 9.68~22.19 mg GAE/g의 범위로 나타났으며, 흑생땅콩의 70% 아세톤 추출물이 22.19 mg GAE/g으로 유의적으로 가장 높은 함량을 나타냈지만, 상안땅콩의 80%
에탄올 추출물이 9.68 mg GAE/g으로 가장 낮았으나 흑생 땅콩과 유의적인 차이는 없었다(P>0.05). 총 플라보노이드 함량을 측정한 결과 전체 0.60~1.36 mg QE/g으로 총 폴리 페놀 함량에 비해 좁은 범위였다. 흑생땅콩의 80% 메탄올 추출물이 1.36 mg QE/g으로 다른 추출물에 비해 높은 함량 을 나타냈으며, 상안땅콩의 80% 에탄올 추출물이 0.60 mg QE/g으로 가장 낮은 함량이었다. 동일한 용매에서 품종별 로 비교했을 때 폴리페놀 함량과 마찬가지로 플라보노이드 함량은 상안땅콩보다 흑생땅콩에서 유의적으로 높았다(P<
0.05). Attree 등(2015)은 적색땅콩과 검정땅콩의 추출물 을 제조하여 항산화 활성을 측정하였는데, 종실의 총 폴리페 놀이 3.28~9.20 mg GAE/g, 총 플라보노이드는 0.97~
2.84 mg CAE/g으로 나타나 본 연구 결과보다 낮거나 비슷 한 것으로 확인되었다. 이는 땅콩의 종류뿐만 아니라 추출용 매의 종류와 시료의 전처리, 표준물질의 종류 등 실험방법의
Table 6. EC50 value of 80% methanol, 80% ethanol, and 70% acetone extracts from peanuts (mg/mL)
Sample DPPH1) ABTS Fe2+ Nitrite
Sangan peanut
80% methanol 80% ethanol 70% acetone
1.66±0.04c2)3) 3.53±0.18b 1.05±0.02e
2.65±0.05e 6.51±0.04b 3.63±0.09c
6.85±0.22a 6.04±0.06b 5.47±0.13c
1.26±0.13e 2.58±0.05cd 2.69±0.17c Heuksaeng
peanut
80% methanol 80% ethanol 70% acetone
1.35±0.07d 4.00±0.22a 1.10±0.05e
2.33±0.02f 7.07±0.25a 3.40±0.09d
1.04±0.02d 6.14±0.17b 6.21±0.41b
2.38±0.16d 5.74±0.03a 4.19±0.11b
1)DPPH: DPPH radical scavenging activity, ABTS: ABTS radical scavenging activity, Fe2+: iron chelating activity, Nitrite: nitrite scavenging activity.
2)Results are presented as mean±SD (n=3).
3)Means with different letters in the same column are significantly different at P<0.05.
차이에서 기인한 것으로 판단된다. 또한 종피의 총 폴리페놀 과 플라보노이드 함량을 분석한 결과, 각각 97.29~134.36 mg GAE/g, 31.68~85.17 mg CAE/g으로 종실보다 약 20 배, 40배 정도 높은 것으로 나타났다(Attree 등, 2015). Yu 등(2005)의 연구 결과 또한 땅콩 종피를 물, 80% 에탄올, 메탄올로 추출하여 총 폴리페놀 함량을 측정한 결과 각각 56.7, 89.9, 90.1 mg GAE/g이 측정되었는데, 본 연구의 땅콩 추출물과 비교했을 때 월등히 높은 함량을 보여 땅콩 종실의 페놀 화합물은 종피에 다량 존재하는 것으로 판단된 다. 동일한 추출용매를 기준으로 품종별로 비교했을 때 (Table 5) 흑생땅콩이 상안땅콩에 비해 모든 추출물에서 총 폴리페놀과 플라보노이드 함량이 높았음을 보였는데, 이는 종피의 색을 띠는 안토시아닌의 영향으로 생각된다(Zhao 등, 2017). 따라서 상안땅콩보다 흑생땅콩이 항산화 활성을 포함해 더 다양한 생리활성을 나타낼 것으로 판단된다.
항산화 활성
식품의 항산화 활성은 다양한 성분들이 다른 메커니즘으 로 나타나기 때문에 정확한 검증을 위해서는 여러 방법을 사용해 평가해야 한다(Moure 등, 2001). 따라서 본 연구에 서는 네 가지의 방법을 이용하여 항산화 활성을 측정하였으 며, 50%의 자유 라디칼(DPPH, ABTS) 소거능, 아질산염 소거능, 킬레이팅 활성을 나타내는 농도인 EC50값으로 계산 하여 Table 6에 나타내었다.
추출용매에 따른 땅콩의 DPPH 라디칼 소거능은 총 폴리 페놀 함량과 비슷한 경향이었고, EC50값은 70% 아세톤으로 추출한 상안땅콩이 1.05 mg/mL로 가장 높은 활성을 나타내 었으나 흑생땅콩과 유의적인 차이가 없었다(P>0.05). 다음 으로 품종과 관계없이 80% 메탄올, 80% 에탄올 순으로 소 거 활성이 나타나 총 폴리페놀 함량과 비슷한 경향을 확인하 였고, 흑생땅콩의 80% 에탄올 추출물이 4.00 mg/mL로 가 장 낮은 활성을 보였다. 헤이즐넛 추출물 또한 추출용매에 따라 80% 아세톤> 물> 메탄올 순으로 나타나 본 연구와 유사하였으나, EC50값이 1.12~12.8 mg/mL로 나타나 땅콩 에 비해 낮은 활성을 보인 것으로 확인되었다(Delgado 등, 2010). 그러나 피스타치오의 IC50값은 추출용매에 따라 에 탄올(6.8 μg/mL)> 메탄올(9.49 μg/mL)> 아세톤(76.89 μg/
mL) 순으로 나타나 본 연구와 차이가 있었으며, 땅콩에 비 해 높은 항산화 활성을 나타내었다(Taghizadeh 등, 2018).
ABTS 라디칼 소거능을 측정한 결과 모든 추출물이 유의적 으로 차이가 있었으며 80% 메탄올로 추출한 흑생땅콩의 EC50값이 2.33 mg/mL로 가장 높은 라디칼 소거 활성을 보 였고 80% 에탄올로 추출한 흑생땅콩이 가장 낮은 활성을 나타냈다(EC50=7.07 mg/mL). DPPH 라디칼 소거능은 유 기 용매에 용해된 라디칼을 사용하여 항산화 활성을 측정하 기 때문에 소수성 항산화 성분에 대한 항산화능을 측정하기 에 적합하지만, ABTS 라디칼 소거능은 소수성 및 친수성의 특성을 가진 항산화 성분의 항산화력을 측정할 수 있다 (Apak 등, 2013). 따라서 땅콩의 70% 아세톤 추출물에는 소수성 항산화 성분이 많을 것으로 예상되며, 80% 메탄올 추출물에 포함된 친수성 성분이 소수성 성분보다 활성이 높 을 것으로 생각된다. 철 킬레이팅 활성의 EC50값은 흑생땅 콩의 80% 메탄올 추출물이 가장 낮았으며(1.04 mg/mL), 다음으로 상안땅콩의 70% 아세톤 추출물이 5.47 mg/mL로 나타나 5배 이상의 차이가 났다. 상안땅콩의 80% 에탄올 추출물, 흑생땅콩의 80% 에탄올 추출물과 70% 아세톤 추출 물은 6.04~6.21 mg/mL로 유의적으로 차이가 없는 EC50값 을 나타냈으며(P>0.05), 상안땅콩의 80% 메탄올 추출물이 6.85 mg/mL로 가장 낮은 항산화 활성을 나타내었다. Wang 등(2007)의 연구 결과에 따르면 땅콩 종피의 50% 에탄올 추출물은 0.5 mg/mL에서 76.6%의 효과가 나타났으며, 낮 은 농도인 10 μL/mL에서는 EDTA의 킬레이트 활성과 비교 할 만하다고 보고하였다. 철 킬레이팅 활성은 폴리페놀 및 플라보노이드의 함량과 연관이 있다고 알려져 있으나(Nam 등, 2019), 본 연구 결과와는 차이가 있었다. 아질산염 소거 활성의 EC50값은 상안땅콩의 80% 메탄올 추출물이 1.26 mg/mL로 소거능이 가장 높았으며, 흑생땅콩의 80% 메탄올 (2.38 mg/mL)> 상안땅콩의 80% 에탄올(2.58 mg/mL)> 상 안땅콩의 70% 아세톤(2.69 mg/mL)> 흑생땅콩의 70% 아 세톤(4.19 mg/mL)> 흑생땅콩의 80% 에탄올(5.74 mg/mL) 순으로 EC50값이 측정되어 소거 활성을 확인하였다. 아질산 염은 각종 농산물에 미량 존재하고 있으며, 생선이나 육류의 산패방지 및 향미를 증진하기 위해 식품 첨가물로도 사용되 고 있다(Yamada 등, 1978). 그러나 일정 농도 이상의 아질
Table 7. Pearson’s correlation coefficients (r2) among TPC, TFC, and antioxidant activities of various extracts from peanuts
TPC1) TFC DPPH ABTS Fe2+ Nitrite
TPC TFC DPPH ABTS Fe2+
Nitrite
1 0.466**
1
0.826***
0.179 1
0.797***
0.643***
0.507**
1
0.071 0.480**
0.038 0.201 1
0.018 0.046
−0.001 0.234* 0.169
1
1)TPC: total phenolic contents, TFC: total flavonoid contents, DPPH: DPPH radical scavenging activity, ABTS: ABTS radical scaveng- ing activity, Fe2+: iron chelating activity, Nitrite: nitrite scavenging activity.
Significant at *P<0.05, **P<0.01, ***P<0.001.
산염을 섭취하게 될 시 식품 중의 아민류와 반응하여 발암물 질인 nitrosamine을 생성하게 되므로 체내의 아질산염을 제 거할 필요가 있다(Greenblatt 등, 1971). 따라서 땅콩 추출 물은 아질산염을 감소시키는 데 도움이 될 것으로 생각된다.
Attree 등(2015)은 땅콩의 종피, 종실, 자엽의 항산화 활 성을 분석한 결과 땅콩 종피의 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량이 땅콩 종실의 항산화 활성에 기여한다고 하였으며, Phan-Thien 등(2014)은 땅콩 추출물의 항산화 활성은 소 수성 성분보다 친수성 성분에 의존한다고 보고하였다. 따라 서 흑생땅콩 종피에 함유된 항산화 성분이 수용성 용매에 추출되어 항산화 활성에 영향을 미친 것으로 생각된다.
항산화 성분과 활성 간의 상관관계
땅콩 추출물의 항산화 성분과 항산화 활성 간의 상관관계 를 분석하여 그 결과를 상관계수(r2)로 나타내었다(Table 7). DPPH 라디칼 소거능은 총 폴리페놀 함량과의 r2값이 0.826으로 가장 높은 상관관계(P<0.001)를 나타내었다.
ABTS 라디칼 소거능은 총 폴리페놀 함량(r2=0.797)뿐만 아니라 총 플라보노이드 함량(r2=0.643)과도 높은 상관관계 를 나타냈으며(P<0.001), DPPH 라디칼 소거능과도 유의적 인 관계가 있음을 확인하였다(P<0.01). 철 킬레이팅 활성은 총 플라보노이드 함량과의 r2값이 0.480으로 높은 상관관계 (P<0.01)를 보였다. 아질산염 소거능은 ABTS 라디칼 소거 능과 r2값이 0.234로 유의성을 확인하였으나(P<0.05), 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량과는 상관관계를 나타내지 않았다. 이러한 결과는 아질산염 소거능이 총 폴리페놀 함량 뿐만 아니라 catechin류, caffeic acid, ferulic acid 등의 페놀 화합물과 유의적인 관계(P<0.01)가 있다고 보고한 Nam 등(2017)의 연구와 차이를 보였다. 철 킬레이팅 활성과 아 질산염 소거능은 플라보노이드의 구조에 따라 활성이 달라 질 수 있으며, 페놀 화합물 외에도 아스코르브산, 멜라노이 딘과 아미노산 등의 성분들이 영향을 미친다는 보고가 있다 (Choi 등, 1989; Mira 등, 2002; Li 등, 2013). 본 연구에서 도 폴리페놀과 플라보노이드 외에 추출물에 포함된 다른 활 성 성분들과의 상호작용에 의해 항산화 활성이 다소 다르게 나타난 것으로 생각되며, 생리활성물질의 조성에 관해 추후 연구가 필요할 것이다.
요 약
본 연구에서는 국내산 일반품종 ‘상안’과 신품종 검정땅콩인
‘흑생’의 영양성분과 항산화 활성을 조사하여 품종에 따른 차이를 비교 평가하였다. 흑생땅콩은 조단백질을 제외한 모 든 성분이 높았으며, 특히 식이섬유의 함량은 1.7배 이상 높아 큰 차이를 보였다(P<0.001). 땅콩의 아미노산 중 아르 기닌과 시스틴을 제외한 모든 성분에서 상안땅콩이 높았으 며, 글루탐산의 함량은 동일했다. 무기질 성분 중 칼륨은 상 안땅콩이 흑생땅콩보다 높았으나(P<0.01), 칼륨을 제외한 칼슘, 구리, 철, 마그네슘, 나트륨 및 아연은 모두 흑생땅콩 이 높은 함량을 나타냈다. 주요 지방산인 올레산과 팔미트산 은 흑생땅콩이 높았으나, 리놀레산은 상안땅콩이 높았다. 총 포화지방산은 흑생땅콩이 높았으나, 총 불포화지방산과 총 불포화지방산에 대한 총 포화지방산의 비율은 상안땅콩이 유의적으로 높았다(P<0.001). 추출물의 수율은 두 땅콩 모 두 70% 아세톤이 가장 높았으며, 총 폴리페놀 및 플라보노 이드 함량은 각각 흑생땅콩의 70% 아세톤 추출물(22.19 mg GAE/g), 흑생땅콩의 80% 메탄올 추출물(1.36 mg QE/g)에 서 가장 높은 함량을 보였다. DPPH 라디칼 소거능 분석 결 과, 상안땅콩의 70% 아세톤 추출물은 EC50값이 1.05 mg/
mL로 가장 높은 활성을 보였으나, 흑생땅콩의 70% 아세톤 추출물과 유의적인 차이가 없었다(P>0.05). ABTS 라디칼 소거능과 철 킬레이팅 활성은 흑생땅콩의 80% 메탄올 추출 물이 가장 높은 활성을 나타냈으며, 아질산염 소거능은 상안 땅콩의 80% 메탄올 추출물의 활성이 좋았다. 또한 총 폴리 페놀 함량은 DPPH와 ABTS 라디칼 소거능과 유의적인 관 계를 나타낸 것을 확인하였다. 이러한 결과는 흑생땅콩의 보급에 도움이 될 것으로 기대된다.
감사의 글
본 연구는 2019년도 농촌진흥청 공동연구사업(과제번호:
PJ01339802)의 지원에 의해 수행되었으며, 이에 감사드립 니다.
REFERENCES
Alper CM, Mattes RD. Peanut consumption improves indices of cardiovascular disease risk in healthy adults. J Am Coll Nutr. 2003. 22:133-141.
AOAC. Official methods of analysis. 18th ed. Association of Official Analytical Chemists, Washington, DC, USA. 2005.
Apak R, Gorinstein S, Böhm V, Schaich KM, Özyürek M, Güçlü K. Methods of measurement and evaluation of natural anti- oxidant capacity/activity (IUPAC Technical Report). Pure Appl Chem. 2013. 85:957-998.
Arya SS, Salve AR, Chauhan S. Peanuts as functional food:
a review. J Food Sci Technol. 2016. 53:31-41.
Attree R, Du B, Xu B. Distribution of phenolic compounds in seed coat and cotyledon, and their contribution to antioxidant capacities of red and black seed coat peanuts (Arachis hypo- gaea L.). Ind Crops Prod. 2015. 67:448-456.
Bhat EA, Sajjad N, Manzoor I, Rasool A. Bioactive compounds in peanuts and banana. Biochem Anal Biochem. 2019. 8:2.
doi: 10.4172/2161-1009.1000382
Blois MS. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature. 1958. 181:1199-1200.
Brown DF, Cater CM, Mattil KF, Darroch JG. Effect of variety, growing location and their interaction on the fatty acid com- position of peanuts. J Food Sci. 1975. 40:1055-1060.
Cho GS. Chemical compositions in the various plant types of peanut (Arachis hypogaea L.). J Korean Soc Food Nutr. 1993.
22:576-580.
Choi JS, Park SH, Choi JH. Nitrite scavenging effect by fla- vonoids and its structure-effect relationship. Arch Pharm Res.
1989. 12:26-33.
Chuenchom P, Swatsitang P, Senawong T, Jogloy S. Antiox- idant capacity and phenolic content evaluation on peanut skins from 3 peanut types. Chiang Mai J Sci. 2016. 43:123-137.
Delgado T, Malheiro R, Pereira JA, Ramalhosa E. Hazelnut (Corylus avellana L.) kernels as a source of antioxidants and their potential in relation to other nuts. Ind Crops Prod. 2010.
32:621-626.
Dinis TCP, Madeira VMC, Almeida LM. Action of phenolic derivatives (acetaminophen, salicylate, and 5-aminosalicylate) as inhibitors of membrane lipid peroxidation and as peroxyl radical scavengers. Arch Biochem Biophys. 1994. 315:161- 169.
Greenblatt M, Mirvish S, So BT. Nitrosamine studies: induction of lung adenomas by concurrent administration of sodium ni- trite and secondary amines in Swiss mice. J Natl Cancer Inst.
1971. 46:1029-1034.
Gröber U, Schmidt J, Kisters K. Magnesium in prevention and therapy. Nutrients. 2015. 7:8199-8226.
Gülçin İ. Antioxidant properties of resveratrol: A structure-ac- tivity insight. Innovative Food Sci Emerging Technol. 2010.
11:210-218.
Jonnala RS, Dunford NT, Chenault K. Nutritional composition of genetically modified peanut varieties. J Food Sci. 2005.
70:S254-S256.
Kato H, Lee IE, Chuyen NV, Kim SB, Hayase F. Inhibition of nitrosamine formation by nondialyzable melanoidins. Agric Biol Chem. 1987. 51:1333-1338.
Lee SE, Park CH, Bang JK, Seong NS, Chung TY. Comparison on antioxidant potential of several peanut varieties. J Korean Soc Food Sci Nutr. 2004. 33:941-945.
Li L, Shao J, Zhu X, Zhou G, Xu X. Effect of plant polyphenols and ascorbic acid on lipid oxidation, residual nitrite and N‐ni- trosamines formation in dry‐cured sausage. Int J Food Sci
Technol. 2013. 48:1157-1164.
Lim HJ, Kim MS, Kim DS, Kim HS, Pae SB, Kim JK, et al.
Comparison of lipid constituents and oxidative properties be- tween normal and high-oleic peanuts grown in Korea. Korean J Food Sci Technol. 2017. 49:235-241.
Liu K, Liu Y, Chen F. Effect of storage temperature on lipid oxidation and changes in nutrient contents in peanuts. Food Sci Nutr. 2019. 7:2280-2290.
Lozano MG, de Oliveira Sartori AG, Markowicz Bastos DH, Regitano‐d’Arce MAB. Selected nutrients and antinutrients in peanut cultivars harvested in Brazil. J Sci Food Agric.
2019. https://doi.org/10.1002/jsfa.9772
Mira L, Fernandez MT, Santos M, Rocha R, Florêncio MH, Jennings KR. Interactions of flavonoids with iron and copper ions: a mechanism for their antioxidant activity. Free Radical Res. 2002. 36:1199-1208.
Moncada S, Higgs A. The L-arginine-nitric oxide pathway. N Engl J Med. 1993. 329:2002-2012.
Moure A, Cruz JM, Franco D, Domínguez JM, Sineiro J, Do- mínguez H, et al. Natural antioxidants from residual sources.
Food Chem. 2001. 72:145-171.
Nam JS, Park SY, Jang HL, Rhee YH. Phenolic compounds in different parts of young Annona muricata cultivated in Korea and their antioxidant activity. Appl Biol Chem. 2017.
60:535-543.
Nam JS, Park SY, Oh HJ, Jang HL, Rhee YH. Phenolic profiles, antioxidant and antimicrobial activities of pawpaw pulp (Asi- mina triloba [L.] Dunal) at different ripening stages. J Food Sci. 2019. 84:174-182.
Pae SB, Kim SU, Lee MH, Hwang CD, Oh KW, Jung CS, et al. A peanut variety ‘Heuksaeng’ with short stem and purple testa. Korean J Breed Sci. 2017. 49:103-108.
Palafox‐Carlos H, Ayala‐Zavala JF, González‐Aguilar GA. The role of dietary fiber in the bioaccessibility and bioavailability of fruit and vegetable antioxidants. J Food Sci. 2011. 76:R6- R15.
Phan-Thien KY, Wright GC, Tillman BL, Lee NA. Peanut anti- oxidants: Part 1. Genotypic variation and genotype-by-envi- ronment interaction in antioxidant capacity of raw kernels.
LWT-Food Sci Technol. 2014. 57:306-311.
Pravina P, Sayaji D, Avinash M. Calcium and its role in human body. Int J Res Pharm Biomed Sci. 2013. 4:659-668.
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice- Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biol Med.
1999. 26:1231-1237.
Ros E, Mataix J. Fatty acid composition of nuts-implications for cardiovascular health. Br J Nutr. 2006. 96:S29-S35.
Shin EC. Relationships between fatty acids and tocopherols of conventional and genetically modified peanut cultivars grown in the United States. J Korean Soc Food Sci Nutr. 2013. 42:
1618-1628.
Singleton VL, Orthofer R, Lamuela-Raventós RM. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of folin-ciocalteu reagent. Methods Enzymol. 1999.
299:152-178.
Stalker HT. Peanut (Arachis hypogaea L.). Field Crops Res.
1997. 53:205-217.
Taghizadeh SF, Rezaee R, Davarynejad G, Karimi G, Nemati SH, Asili J. Phenolic profile and antioxidant activity of Pista- cia vera var. Sarakhs hull and kernel extracts: the influence of different solvents. J Food Meas Charact. 2018. 12:2138- 2144.
Terker AS, Zhang C, McCormick JA, Lazelle RA, Zhang C,
Meermeier NP, et al. Potassium modulates electrolyte balance and blood pressure through effects on distal cell voltage and chloride. Cell Metab. 2015. 21:39-50.
United States Department of Agriculture (USDA). National nutri ent database for standard reference legacy release. 2018 [cited 2019 Apr 1]. Available from: https://ndb.nal.usda.gov/ndb/fo ods/show/16087?n1=%7BQv%3D1%7D&fgcd=&man=&lfac et=&count=&max=&sort=&qlookup=&offset=&format=Abri dged&new=&measureby=&ds=&Qv=1&qt=&qp=&qa=&qn
=&q=&ing=
Wang J, Yuan X, Jin Z, Tian Y, Song, H. Free radical and reactive oxygen species scavenging activities of peanut skins extract. Food Chem. 2007. 104:242-250.
Wang L, Wang Q, Liu H, Liu L, Du Y. Determining the contents of protein and amino acids in peanuts using near‐infrared re- flectance spectroscopy. J Sci Food Agric. 2013. 93:118-124.
Yamada T, Yamamoto M, Tanimura A. Studies on the formation of nitrosamines (Ⅶ). The effects of some polyphenols on ni-
trosation of diethylamine. J Food Hyg Soc Japan. 1978. 19:
224-227.
Young CT, Mason ME, Matlock RS, Waller GR. Effect of ma- turity on the fatty acid composition of eight varieties of pea- nuts grown at perkins, Oklahoma in 1968. J Am Oil Chem Soc. 1972. 49:314-317.
Yu J, Ahmedna M, Goktepe I. Effects of processing methods and extraction solvents on concentration and antioxidant ac- tivity of peanut skin phenolics. Food Chem. 2005. 90:199- 206.
Zhao Z, Wu M, Zhan Y, Zhan K, Chang X, Yang H, et al.
Characterization and purification of anthocyanins from black peanut (Arachis hypogaea L.) skin by combined column chro- matography. J Chromatogr A. 2017. 1519:74-82.
Zhishen J, Mengcheng T, Jianming W. The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chem. 1999. 64:555-559.