23
Copyright © 2017 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815
서 론
넙치의근육에서
Kudoa septempunctata
가기생하는것이최 초로보고된이후(Matsukane et al., 2010),
일본에서K. sep- tempunctata
가식중독의원인이되는것으로알려져(Harada et al., 2012a; Kawai et al., 2012),
우리나라에서는넙치양식장 의쿠도아감염현황조사를전국적으로실시하여 감염현황 을파악하였으며(Song et al., 2013; 2014), ‘
쿠도아자율관리지 침’(MOF, 2015)
을마련하여어업인∙
지자체∙
국가기관차원에서 넙치의위생관리를위해노력하고있다.
일반적으로쿠도아충에의한감염은숙주인어류의생리
,
행 동,
생존등에영향을미치지않지만(Moran et al., 1999), Ku- doa thyrsites, Kudoa musculoliquefaciens, Kudoa paniformis, Kudoa clupeidae, Kudoa miniauriculata
등은근섬유에기생하면서숙주가죽은후에
‘
젤리화’(
기생충의단백질분해효소에 의한근육용해)
를일으킴으로써상품가치를떨어뜨려경제적 으로피해를일으키는것으로알려져있다(Kudo et al., 1987, Moran et al., 1999, Yokoyama et al., 2004).
그러나, K. sep- tempunctata
는감염특성상숙주의염증반응을일으키거나근 육내시스트를형성하지않아육안으로감염이확인되지않으 므로(Matsukane et al. 2010),
쿠도아감염여부조사를위해서 는반드시넙치의근육세포를채취하여검사를실시하여야한 다. K. septempunctata
가감염된넙치가식품으로출하되는것 을사전에방지하기위하여,
쿠도아자율관리지침에따라넙치 의양성∙
출하단계에서기생충의감염모니터링조사를하도록 권고하고있으며,
양성단계의넙치의경우사육로트별60
마리 이상,
출하단계의경우사육로트별30
마리이상검사를기본 원칙으로한다.
본연구팀의선행연구에서,
넙치성어의쿠도넙치(Paralichthys olivaceus) 근육 채취 방법에 따른 Kudoa septempunctata 진단 효율 비교
송준영·정승희
1·최혜승
2*
국립수산과학원 남동해수산연구소, 1국립수산과학원 병리연구과, 2국립수산과학원 남해수산연구소
Evaluation of a Non-destructive Diagnostic Test for Kudoa septempunctata in Farmed Olive Flounder Paralichthys olivaceus
Jun-Young Song, Sung Hee Jung
1
and Hye-Sung Choi2
*Southest Sea Fisheries Research Institute, Tongyeong 53085, Korea
1Pathology Division, National Institute of Fisheries Science, Busan 46083, Korea
2Aquaculture Industry Division, South Sea Fisheries Research Institute, Yeosu 59780, Korea
Kudoa septempunctata , a myxosporean parasite that infects olive flounder Paralichthys olivaceus is known to cause Kudoa food poisoning. Entire trunk muscle (ETM) is used for diagnosis of the parasite in fish and this method de- mands sacrifice of the host, causing a loss of commercial value. We developed a non-destructive method that uses a plastic syringe-style implanter to draw the sample, called the part-point muscle (PPM) sampling technique. We validated the PPM method in fish infected with K. septempunctata at the level detectable by the ETM method. We confirmed that the PPM method is equally sensitive in comparison to the ETM method for diagnosing K. septem- punctata spores in olive flounder muscle. Our study also confirmed that the parasite is uniformly distributed in the dorsal muscle of infected fish. Over a period of 1 month, we observed no mortality of the host fish used for sampling by the PPM method. Thus, our studies demonstrate that the PPM sampling technique is an efficient, non-destructive method for diagnosing K. septempunctata in olive flounder.
Key words: Kudoa septempunctata , Olive flounder, Paralichthys olivaceus , Diagnostic test
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
https://doi.org/10.5657/KFAS.2018.0023 Korean J Fish Aquat Sci 51(1) 23-30, February 2018
Received 23 October 2017; Revised 27 November 2017; Accepted 1 December 2017
*Corresponding author: Tel: +82. 61. 690. 8970 Fax: +82. 61. 685. 9073
E-mail address: [email protected]
아감염조사를위해넙치등근육전체를절개하여근육을채취 하는방법이사용되어왔으나
(Song et al., 2013; 2014),
출하단 계에서는넙치크기가1 kg
전후로,
개체를검사에사용할경우 실험어의희생이동반되어상품가치가없어지므로경제적으로 손실을가져올수밖에없다.
그러므로본연구에서는,
사육단 계에서실험어를죽이지않고,
보다간편하게근육을채취하여 쿠도아검사에사용할수있는방법을사용하여근육채취방법 에따른쿠도아진단의효율성을검토하였다.
재료 및 방법
근육 채취 방법에 따른 K. septempunctata의 검출 효능 비교
실험어
2013
년도우리연구팀에서수행한쿠도아감염모니터링조사를위한
PCR
검사법에서쿠도아감염양성으로검출된넙치성어
5
마리(Table 1)
를획득하여근육채취방법에따른K.
septempunctata
검출효과비교실험에사용하였다.
부분 근육 (Part-point muscle; PPM) 채취 방법 (PPM 방법)
넙치성어로부터
PPM
을채취하기위하여바닥에폴리스티렌 보드를깔고그위에넙치를올려놓은후plastic syringe-style MK7 implanter (Biomark, USA)
를사용하여등근육을수직으 로관통시켜needle
내부에근육을채취하였다(Fig. 1).
한번의 샘플채취시20-25 mg
의근육이채취되므로2
회반복채취하 여약50 mg
의근육을분석에사용하였다.
채취된근육을멸균 된2 mL tube containing 2 mm ziruconia and 5 mm stainless beads (WATSON)
에넣고, 1X TE buffer (Promega)
를사용하 여5
배희석한후, FastPrep®-24 (MP, USA)
를이용하여20
초 간분쇄하여완전히균질화하였다.
균질화된용액100 µL (
근육20 mg
에해당)
를quantitative polymerase chain reaction (qPCR)
와conventional polymerase chain reaction (PCR)
분석을위한
DNA
분리에사용하였고, 10 μL
를현미경관찰에의한 기생충의포자를확인하는데사용하였다.
전체 근육 (Entire trunk muscle; ETM) 채취 방법 (ETM 방법)
ETM
샘플의채취는선행연구(Song et al., 2013)
에의한방 법에따라넙치등근육전체부위를해부용칼로긁어근육샘플(1-5 g)
을채취하여폴리스티렌지퍼백에넣어골고루마쇄하였다
.
마쇄한근육200 mg
를멸균된2mL tube containing 2 mm ziruconia and 5 mm stainless beads (WATSON)
에넣고, 1X TE buffer (Promega, USA)
를사용하여5
배희석한후, Fast- Prep®-24 (MP, USA)
를이용하여20
초간분쇄하여완전히균 질화하였다.
균질화된용액100 μL (
근육20 mg
에해당)
를qPCR
와PCR
분석을위한DNA
분리에사용하였고, 10 μL
를 현미경관찰에의한기생충의포자를확인하는데사용하였다. 넙치 등근육에서의 쿠도아 분포 조사
PPM
방법에의한효과적인근육채취부위를결정하기위하여
, K. septempunctata
에감염된넙치2
마리의등근육에서 의부위별쿠도아감염분포를조사하였다.
넙치등근육을6
개point
로나누어각point
마다PPM
방법으로근육을6
회채취하 였다(Fig. 2).
각point
당3
회채취한근육은유전자분석(qPCR, conventional PCR)
에triplicate
로사용하였으며,
나머지3
회채 취한근육은현미경관찰에의한포자계수에각각사용하였다. 사육 넙치에 대한 PPM 방법의 적용
PPM
방법의현장적용가능성을실험하기위하여,
넙치양식장에사육중인넙치
100
마리(
평균500 g)
를실험에적용하였다
. PPM
방법에 의한근육 채취를위해사육중인 넙치에스트레스를가하지않도록부드럽게채포한후즉시
MS-222 (Sigma, Germany)
를사용하여마취하였다.
마취한어류는폴 리스티렌 보드 위에서plastic syringe-style MK7 implanter (Biomark, USA)
를사용하여꼬리부위근육을수직으로관통 시켜근육을채취한후,
다시사육수조에넣어사육하면서한달(a) (b) (c)
Fig. 1. Taking of the samples by part-point muscle (PPM) method in the fish Paralichthys olivaceus using a plastic syringe-style implanter on a polystyrene board (a). 20 to 25 mg of muscle is taken by the PPM method (b, c).
간생존여부를관찰하였다
.
채취한근육은냉장상태로실험실 로운반한후,
쿠도아감염여부진단(qPCR, PCR
과현미경확 인)
에사용하였다.
시료 분석 DNA 추출
각실험항목으로부터마쇄하여준비한근육시료
100 µL (
근 육20mg
에해당)
로부터DNA
를추출하여쿠도아의유전자분 석(qPCR, PCR)
에사용하였다. DNA
추출방법은선행연구 인Song et al. (2014)
에의한방법에따라시판되는QIAamp DNA mini kit (Qiagen, Japan)
를사용하여매뉴얼에따라추 출하였으며,
최종적으로200 µL
의volume
으로elusion
하였다.
추출한DNA
는사용할때까지-20℃
에보존하였다.
qPCR
각실험항목으로부터준비한근육시료로부터추출한
DNA
를 사용하여K. septempunctata
의18S rDNA (AB553293)
를 검출하는real-time PCR
을 수행하였다. Primers
와probe
는 일본 후생노동성(MHLW, 2011)
방법에 따라Kudoa-F (5’-CATGGGATTAGCCCGGTTTA-3’), Kudoa-R (5’- ACTCTCCCCAAAGCCGAAA-3’), Kudoa-P (5’-FAM-TC- CAGGTTGGGCCCTCAGTGAAAA-TAMRA-3’)
를 사용하였 다. PCR
반응액제조는넙치근육샘플로부터채취한DNA 4 µL
또는plasmid positive control 4 µL, Taqman 2X Universal master mix II (AB, USA) 10 µL, forward
와reverse primer
각0.4 µM, probe 0.25 M
을넣어최종20 µL
의volume
이되도록 제조하였다. PCR
반응은95℃ 10
분1 cycle, 95℃ 15
초와60℃
60
초에서45 cycles
반응하였으며모든샘플은duplicate
로반 응을수행하였다. Plasmid positive control
은Song et al.(2014)
에서제작한것을사용하여Nanodrop ND-1000 spectropho- tometer
에서DNA
를정량하고plasmid copy
수를계산하였다. 2.5×10
7(
최종10
8농도), 2.5×10
5(
최종10
6농도), 2.5×10
3(
최종
10
4농도), 2.5×10
1(
최종10
2농도) copies/µL
의농도로plasmid
를단계희석한후검량선을작성하였으며,
모든real- time PCR
반응에plasmid positive control
를함께반응하였다.
PCR
PCR
에사용한primer
는K. septempunctata
의28S rDNA
를 검출하는primer set (forward, 5’-gtgtgtgatcagactt- gatatg-3’, reverse, 5’-aagccaaaactgctggccattt -3’)
를사용하였다(MAFF, 2012).
추출한4 µL template
와위 의primer
를AccuPower® PCR premix (Bioneer, Korea)
와혼 합하여20 µL
의반응액에서PCR
을수행하였다. PCR
산물은ethidium bromide
가첨가된1.5% agarose gel
에전기영동한 후MultiImage
®II (Alphainnotech, USA)
로PCR
산물의증폭(target size 356 bp)
을확인하였다.
현미경 검사
각실험항목으로부터채취한근육샘플을
TE buffer (Pro- mega, USA)
에5
배희석후완전히마쇄하여Loffler’s methy- lene blue solution
과1:1
로혼합하여cell-counting chamber
에 서포자를계수하여근육1 g
당포자수로환산하였다.
사육넙 치에대한PPM
방법의적용(
재료및방법3)
을위한실험을위 해, PPM
에의해채취한근육을slide glass
두장사이에끼워 압착하여근육을얇게편후, Loffler’s methylene blue solution
을떨어뜨리고1
분후현미경으로관찰하여포자의검출유무 를확인하였다.
결 과
근육 채취 방법에 따른 Kudoa septempunctata의 검출 효능 비교
쿠도아감염양성으로판정된
5
마리의넙치를사용하여PPM
과
ETM
방법에의해채취한근육에서의쿠도아검출효능을Fig. 2. Sampling points for testing Kodoa septempunctata distribution in the dorsal muscle of fish Paralichthys olivaceus. From each point, part-point muscle (PPM) was obtained six times for qPCR, PCR and microscopy.
Point 1
Point 2
Point 3
Point 4 Point 5
Point 6
Table 1. Comparison of PPM and ETM methods for detecting Kudoa septempunctata in the fish Paralichthys olivaceus infected with the parasite, by qPCR, PCR and microscopy
Fish no. Fish size
(cm) PCR qPCR (log rDNA copy no./g) Microscopy (log spore no./g)
PPM1 ETM2 PPM ETM PPM ETM
1 43 P P 9.72 9.56 5.57 6.48
2 35 P P 9.20 9.31 5.27 4.98
3 38 P P 8.20 7.89 5.91 6.02
4 42 N P 5.75 6.28 nd nd
5 33 P P 7.32 7.77 5.24 5.10
1PPM, part-point muscle. 2ETM, entire trunk muscle. P, positive (≥7.0 log rDNA copy); N, negative (<7.0 log rDNA copy); nd, not detected.
비교하였다
(Table 1). qPCR
결과, 5
마리의넙치중4
마리(
넙치1, 2, 3, 5
번)
에서PPM
과ETM
샘플모두쿠도아감염양성기 준치(7.00 log rDNA copy no./g)
이상으로검출되었다(PPM
샘플은7.32-9.72 log rDNA copy no./g
검출, ETM
샘플은7.77-9.56 log rDNA copy no./g
검출).
반면, 4
번넙치는PPM
과
ETM
모두기준치이하로검출되어두실험의결과가일치하였다
. PCR
결과, qPCR
에서감염양성기준치이상으로검출 된4
마리(
넙치1, 2, 3, 5
번)
에서는PPM
과ETM
샘플모두쿠도 아양성으로검출되었으나, 4
번넙치는PPM
샘플의경우음성,
ETM
샘플의경우양성으로검출되어두실험결과가불일치하였다
.
현미경에의한쿠도아포자확인결과, qPCR
과PCR
실험 에서양성으로검출된4
마리넙치에서는PPM
과ETM
샘플모 두쿠도아포자가검출되었으나(4.98-6.48 log spore no./g), 4
번넙치의경우두방법에의한샘플모두현미경으로포자가검 출되지않았다.
이상의결과로부터,
유전자검사의결과양성이 며,
현미경으로포자가검출되는수준으로감염된넙치에서는,
쿠도아검출을위한PPM
과ETM
두실험방법의결과가일치 함을확인하였다.
넙치 등근육에서 Kudoa septempunctata의 분포 조사
쿠도아양성넙치2
마리를사용하여등근육부위별(Point 1-6)
쿠도아의분포조사를위해PPM
방법으로근육을채취하여분 석한결과, 1
번넙치에서는6
개point
의샘플모두에서PCR
양 성이었으며, qPCR
결과모든point
에서(point 2
의1
개샘플제 외) 7.72-9.73 log rDNA copy no./g
의범위로검출되어쿠도아 유전자검출양성이었다.
또한,
현미경으로포자확인결과6
개point
의샘플모두에서쿠도아포자가5.06-6.59 log spores/g
범위로검출되어쿠도아가등근육전체에고르게분포함을확 인하였다.
반면, 2
번넙치의경우등근육부위별쿠도아분포에 차이가나타났는데, point 1
에서는3
샘플(triplicates)
모두PCR
음성이었으며, point 2
에서는3
샘플중1
개, point 2
에서는3
샘 플중2
개에서PCR
양성으로검출되었으며, point 4-6
에서는 모든샘플에서PCR
양성으로검출되었다. qPCR
결과, point 1-3
은기준치이하의검출로(nd
또는5.45-6.87 log rDNA copy no./g
범위)
음성, point 4-6
은양성으로검출되었다.
현미경검사결과모든샘플에서쿠도아가검출되지않았다
(Table 2).
이 상의결과로부터,
쿠도아포자가검출되는수준의감염단계에 서는근육의6
개point
에서쿠도아가동일한수준으로검출되 는것을확인하였다.
사육 넙치에서의 쿠도아 검사를 위한 PPM 방법의 적용
양식장에사육중인넙치100
마리(
평균전중500g)
에대하여 꼬리근육부분에서PPM
방법에의한근육채취후,
한달간사 육한결과폐사가발생하지않아(data not shown)
넙치를죽이 지않고살아있는상태에서근육채취방법의가능성을입증하 였다. 100
마리넙치에대한쿠도아감염조사결과, 7
마리의넙 치에서모든실험방법(PCR, qPCR,
현미경검사)
에서쿠도아 감염양성으로나타났으며, 4
마리의넙치에서PCR
과qPCR
에 의한쿠도아양성, 1
마리의넙치에서PCR
에의한쿠도아양성 판정을받았다(Table 3).
이러한결과로부터, PPM
방법을사용 하여넙치의상품가치를훼손하지않으면서살아있는넙치에 서효율적으로쿠도아감염여부확인이가능함을확인하였다고 찰
Kudoa septempunctata
의감염특성상넙치에증상을나타내 지않아육안으로는감염여부를판단할수없으므로,
진단을위 해서는근육속에있는K. septempunctata
의유전자를확인하 거나현미경으로포자를확인하여검출하는방법이사용되고 있다(MOF, 2015).
양식넙치성어에서K. septempunctata
감 염모니터링을위해,
선행연구에서는넙치의등근육전체를절 개하여근육을채취하는방법이사용되어왔으며(Song et al., 2013; 2014),
이를위해서는실험어의희생이동반되어출하크 기의넙치를사용할경우에는검사어의상품가치하락으로인 한경제적인손실을초래할수밖에없었다.
그러므로,
본연구 에서는출하크기의양식넙치에대한K. septempunctata
의감 염조사를위해넙치를죽이지않고근육을채취하여검사하는 방법에대한실효성을검토하였다.
먼저
, K. septempunctata
감염모니터링선행연구를통해얻 은감염넙치5
마리를사용하여기존에사용된근육채취방법인등근육전체로부터근육을채취하여검사를하는
ETM
방법 과,
넙치를죽이지않고도가능한부분적근육채취방법인PPM
방법에대하여쿠도아검출효과를비교하였다.
그결과,
쿠도 아양성기준치이상(7 log rDNA copy/g
이상)
감염어의경우ETM
과PPM
의PCR
검출결과는모두양성으로동일하였고,
쿠도아포자도모두검출되었다.
하지만,
유전자농도가기준치이하이며포자가검출되지않는수준의감염어의경우
, ETM
샘플은
PCR
양성이었으나, PPM
의경우PCR
음성으로나타 나두방법의결과가일치하지않았다.
본결과로부터,
유전자 검출결과기준치이상이검출되고포자가검출되는수준의감 염단계에서는PPM
방법을사용하여국소적으로근육샘플을 채취하더라도ETM
방법에의한결과와일치하여쿠도아감염 진단에충분히실효적인것으로나타났다.
또한
, PPM
방법에의한넙치등근육부위별검출효과를비교하기위해
,
쿠도아감염넙치2
마리를사용하여등근육6
개point
에따른쿠도아검출효과를비교한결과,
포자가검출되 는수준의감염단계에서는모든부위에서쿠도아가검출되었 으나,
포자가검출되지 않는수준의감염단계에서는 부위별 로차이가발생하였다. Iijima
등(2012)
에의한보고에서쿠도 아감염은유안측/
무안측의몸전체에퍼지는것을제안하였으 며, Harada
등(2012b)
의연구에서,
쿠도아포자수가1.1×10
6spores/g
이상의감염수준에서는등근육전체에rDNA copy
수 가동일하게분포하였으며, 5.6×10
4- 8.4×10
5spores/g
의감 염수준에서는rDNA copy
수가다양하게나타남을보고하였 다.
이번연구의결과,
포자가검출되는수준의감염단계에서는채취부위에관계없이
PPM
방법에의해쿠도아진단을할수있는것이확인되어
,
근육층의두께가비교적얇은꼬리부위 를이용하여근육을채취하는것이현장에서간단하게채취할 수있는방법임을제안한다.
마지막으로
,
본연구에서는양식장에서사육중인넙치를대 상으로PPM
법을이용한근육채취후다시사육하였을경우 의생존율을조사한결과,
실험어100
마리모두한달동안폐 사가발생하지않았다.
또한, 100
마리의쿠도아감염여부조사 결과,
포자가검출되는7
마리의감염어는유전자검사법(PCR,
qPCR)
에서도모두쿠도아양성반응을나타내었고,
현미경으로포자가검출되지않는경우에도
5
마리에서유전자검사법에 의해쿠도아가양성으로검출되었다.
대서양연어의
Kudoa thyrsites
의감염진단을위해연어의필 렛(Fillets)
을사용하지않고아가미뚜껑안쪽의hyohyoid ven- tralis
근육을잘라검사를하는방법이보고되었으며,
필렛를사 용한진단법과비교하여79% (
중감염의경우93%)
의검출감 도효율성이있는것이보고되었다(St-Hilaire et al., 1997).
본 Table 2. Distribution of Kudoa septempunctata from the 6 points of the dorsal muscle in the fish Paralichthys olivaceusFish 1 (38 cm, 877 g) Fish 2 (43 cm, 949 g)
PCR qPCR1 Microscopy2 PCR qPCRa Microscopyb
P1
P P (9.19) P (5.30) nd N (6.58) nd
P P (8.89) P (5.85) nd N (5.49) nd
P P (7.72) P (6.18) nd N (5.45) nd
P2
P N (6.51) P (5.90) nd nd nd
P P (9.03) P (6.59) P N (6.87) nd
P P (7.90) P (5.63) nd N (5.65) nd
P3
P P (9.04) P (6.29) nd N (6.57) nd
P P (8.86) P (6.00) P N (6.60) nd
P P (9.15) P (5.85) P N (6.77) nd
P4
P P (9.48) P (6.36) P P (7.09) nd
P P (9.15) P (5.57) P N (6.84) nd
P P (9.73) P (5.74) P P (7.48) nd
P5
P P (9.09) P (6.36) P P (7.42) nd
P P (9.32) P (6.23) P P (8.37) nd
P P (9.20) P (6.20) P P (7.42) nd
P6
P P (9.30) P (6.37) P P (7.30) nd
P P (9.36) P (6.26) P P (7.59) nd
P P (9.24) P (5.06) P N (6.96) nd
1qPCR, The letter indicates log rDNA copy no./g of fish muscle.2Microscopy, The letter indicates log spore no./g of fish muscle. P, positive (≥7.0 log rDNA copy); N, negative (<7.0 log rDNA copy); nd, not detected.
Table 3. Kodoa septempunctata detection from the 100 fish Paralichthys olivaceus for non-destructive diagnostic test
Fish no. PCR qPCR1 Microscopy Fish no. PCR qPCR1 Microscopy
1 N nd nd 51 N nd nd
2 N nd nd 52 N N (4.87) nd
3 N nd nd 53 N nd nd
4 N nd nd 54 N nd nd
5 N nd nd 55 N nd nd
6 N nd nd 56 N nd nd
7 N nd nd 57 N nd nd
8 N nd nd 58 N nd nd
9 N nd nd 59 N nd nd
10 N nd nd 60 N nd nd
11 P P (7.06) nd 61 N nd nd
12 N nd nd 62 N nd nd
13 P P (7.24) P 63 N nd nd
14 N nd nd 64 N N (4.67) nd
15 N nd nd 65 N nd nd
16 N nd nd 66 N nd nd
17 N nd nd 67 N nd nd
18 N nd nd 68 N N (5.35) nd
19 N nd nd 69 N nd nd
20 N nd nd 70 N N (5.23) nd
21 P P (8.73) P 71 P N (6.53) nd
22 P P (7.29) P 72 N nd nd
23 N nd nd 73 P P (7.22) P
24 N nd nd 74 N nd nd
25 N N (5.05) nd 75 N nd nd
26 N nd nd 76 N nd nd
27 P P (7.96) nd 77 N nd nd
28 N N (5.02) nd 78 N nd nd
29 P P (8.15) nd 79 N nd nd
30 N nd nd 80 N nd nd
31 N nd nd 81 N nd nd
32 P P (8.24) P 82 N nd nd
33 N nd nd 83 P P (7.11) nd
34 N nd nd 84 N nd nd
35 N N (4.94) nd 85 N nd nd
36 N N (5.37) nd 86 N nd nd
37 N nd nd 87 N nd nd
38 N nd nd 88 N nd nd
39 N nd nd 89 N nd nd
40 N nd nd 90 N nd nd
41 P P (7.16) P 91 N nd nd
42 N N (5.00) nd 92 N nd nd
연구에서의
PPM
방법을사용한쿠도아검사법은사육과정또 는출하단계의넙치를죽이지않고넙치의가식부위근육을사 용하여쿠도아검사가가능하므로현장에서매우유용하게사 용될수있는방법임을제안한다.
이러한결과로부터, PPM
방 법을사용하여넙치를죽이지않고상품가치를훼손하지않으 며근육샘플채취가가능하므로,
양식장에서넙치를사육하는 동안지속적인쿠도아의감염모니터링에매우유용하게활용 될수있을것으로기대된다.
특히, PPM
방법에의해근육을부 분채취하더라도현미경검사법으로포자검출이가능하므로고 가의장비를사용하지않고도양식장자체나협회등에서자신 의사육생물을모니터링할수있는효율적인방법으로사용될 수있음을제안한다.
사 사
이연구는국립수산과학원시험연구사업
(R2017064)
의지원 에의해운영되었습니다.
또한,
넙치의근육채취방법연구에도 움을주신Yokoyama Hiroshi
와Shirakashi Sho
교수님께감 사드립니다.
References
Harada T, Kawai T, Jinnai M, Ohnishi T, Sugita-Konishi Y and Kumeda Y. 2012a. Detection of Kudoa septempunctata 18S ribosomal DNA in patient fecal samples from novel food- borne outbreaks caused by consumption of raw olive floun- der (Paralichthys olivaceus). J Clin Microbiol 50, 2964- 2968. https://doi.org/10.1128/jcm.01218-12.
Harada T, Kawai T, Sato H, Yokoyama H and Kumeda Y. 2012b.
Development of a quantitative polymerase chain reaction assay for detection of Kudoa septempunctata in olive floun- der (Paralichthys olivaceus). Int J Food Microbiol 156, 161- 167. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2012.03.018.
Iijim Y, Nakanishi N, Furusawa H, Ohnishi T and Sugita-Kon- ishi Y. 2012. Inter-laboratory validation and applications
of quantitative real-time PCR for the detection of Kudoa
septempunctata in olive flounder (Paralichthys olivaceus).
Jpn J Infect Dis 65, 436-438. https://doi.org/10.7883/yo- ken.65.436.
Kawai T, Sekizuka T, Yahata Y, Kuroda M, Kumeda Y, Iijima Y, Kamata Y, Sugita-Konishi Y and Ohnishi T. 2012. Identi- fication of Kudoa septempunctata as the causative agent of novel food poisoning outbreaks in Japan by consumption of
Paralichthys olivaceus in raw fish. Clin Infect Dis 54, 1046-
1052. https://doi.org/10.1093/cid/cir1040.Kudo G, Barnett H and Nelson R. 1987. Factors affecting cooked texture quality of Pacific whiting, Merluccius productus, fil- lets with particular emphasis on the effects of infection by the myxosporeans Kudoa paniformis and K. thyrsitis. Fish Bull 85, 745-756. https://spo.nmfs.noaa.gov/sites/default/
files/pdf-content/1987/854/kudo.pdf.
MAFF (Ministry of Agriculture, Forestry and Fisheries). 2012.
Retrieved from http://www.jfa.maff.go.jp/test/saibai/pdf/ku- doa_notice_03.pdf on Sep 17, 2017.
Matsukane Y, Sato H, Tanaka S, Kamata Y and Sugita-Konishi Y. 2010. Kudoa septempunctata n. sp. (Myxosporea: Mul- tivalvulida) from an aquacultured olive flounder (Parali-
chthys olivaceus) imported from Korea. Parasitol Res 107,
865-872. https://doi.org/10.1007/s00436-010-1941-8.MHLW (Ministry of Health, Labour and Welfare). 2011. Re- trieved from http://www.mhlw.go.jp/file/06-Seisakujouhou- 11130500-Shokuhinanzenbu/0000124372.pdf on Sep 17, MOF (Ministry of Oceans and Fisheries) 2015. Hygienic man-2017
agement guidelines for domestic flounder farm. MOF, Se- jong, Korea.
Moran JDW, Whitaker DJ and Kent ML. 1999. A review of the myxosporean genus Kudoa Meglitsch, 1947, and its impact on the international aquaculture industry and com- mercial fisheries. Aquaculture 172, 163-196. https://doi.
org/10.1016/s0044-8486(98)00437-2.
Song JY, Choi JH, Choi HS, Jung SH and Park MA. 2013.
Table 3. Continued
Fish no. PCR qPCR1 Microscopy Fish no. PCR qPCR1 Microscopy
43 N nd nd 93 N nd nd
44 N nd nd 94 N nd nd
45 P P (7.79) P 95 N N (4.79) nd
46 N nd nd 96 N nd nd
47 N nd nd 97 N nd nd
48 N nd nd 98 N nd nd
49 N N (4.27) nd 99 N nd nd
50 N nd nd 100 N nd nd
1qPCR, The letter indicates log rDNA copy no./g of fish muscle. P, positive (≥7.0 log rDNA copy); N, negative (<7.0 log rDNA copy); nd, not detected.
Monitoring of Kudoa septempunctata in cultured olive flounder during 2012. J Fish Pathol 26, 129-137. https://doi.
org/10.7847/jfp.2013.26.3.129.
Song JY, Kim MJ, Choi HS and Jung SH. 2014. Monitoring
Kudoa septempunctata in Cultured Olive Flounder Parali- chthys olivaceus in Different Regions of Korea in 2013. Ko-
rean J Fish Aquat Sci 47, 611-621. https://doi.org/10.5657/kfas.2014.0611.
St-Hilaire S, Ribble C, Whitaker DJ and Kent ML. 1997. Evalu- ation of a nondestructive diagnostic test for Kudoa thyrsites in farmed Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture 156, 139-144. https://doi.org/10.1016/s0044-8486(97)00081-1.
Yokoyama H, Whipps CM, Kent ML, Mizuno K and Kawaka- mi H. 2004. Kudoa thyrsites from Japanese flounder and