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506

Copyright © 2017 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815

서 론

어류

,

갑각류

,

패류

,

연체류등의원료수산물의가공공정중에

“process wastewaters”

라는수세수

,

가열처리수

(

또는자숙

),

압착수등의액상의가공부산물

(100 tons

수산물원료에 대해평균유속

1100 tons/h

가공처리수를사용

)

대량으로 발생한다

(Afonso and Borquez, 2002; Dumay et al., 2008).

러한수산식품가공공정에서발생가공처리수

(process waters)

유기물부하가높기때문에환경에부정적인영향을미치지 않도록효과적인처리없이배출하는것은환경오염의원인이 된다

.

그러나이러한가공처리수는잠재적으로이용가치가 유기성분단백질성분이다량함유되어있다

.

수산 가공처리수중에 수세수

(wash water)

surimi

제조 어육중의지질성분과수용성물질

(

비타민색소

)

Fish Roe Concentrates의 제조과정 중에 발생하는 Processed Waters 의 식품기능성과 생리활성

윤인성 1,3 ·이균우 1,3 ·강상인 2,3 ·박선영 2,3 ·김진수 2,3 ·허민수 1,3 *

1경상대학교 식품영양학과/해양산업연구소, 2경상대학교 해양식품생명 의학과/해양산업연구소, 3경상대학교 수산식품산업화 기술지원센터

Food Functionality and Biological Activity of Processed Waters Produced during the Preparation of Fish Roe Concentrates by Cook-dried Process

In Seong Yoon

1,3

, Gyoon-Woo Lee

1,3

, Sang In Kang

2,3

, Sun Young Park

2,3

, Jin-Soo Kim

2,3

and Min Soo Heu

1,3

*

1Department of Food and Nutrition/Institute of Marine Industry, Gyeongsang National University, Jinju 52828, Korea

2Department of Seafood and Aquaculture Science/Institute of Marine Industry, Gyeongsang National University, Tongyeong 53064, Korea

3Research Center for Industrial Development of Seafood, Gyeongsang National University, Tongyeong 53064, Korea

This study evaluated the protein recovery and functional properties and biological activity of boiled and steamed process water (BPW and SPW, respectively) generated from the preparation of concentrated roe of bastard halibut (BH; Paralichthys olivaceus ), skipjack tuna (ST; Katsuwonus pelamis ), and yellowfin tuna (YT; Thunnus albacares ) using the cook-dry process. The protein loss from the water extracts (EXT) of 100 g of roe protein was 15.05-19.71%

and was significantly (P<0.05) higher than that of BPW (5.47-10.34%) and SPW (3.88-8.18%). The foam capacity of BPW (166-203%) and SPW (15-194%) was better than that of EXT. The emulsifying activity index of the original samples was lower than those (15.40-107.86 m 2 /g) of diluted protein samples. The 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging activity and the reducing power of BPW and SPW were stronger than those of EXT. The 2,2′-azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS + ) radical scavenging activity of EXT (0.028-0.045mg/

mL) was significantly higher those of BPW and SPW. The angiotensin I-converting enzyme (ACE) inhibitory activ- ity of SPW was the highest for BH (1.04 mg/mL), followed by YT and ST. The predominant amino acids in SPW were Glu, Ala, Leu, and His. These results demonstrate that processing water containing diluted organic components, including protein, can be consumed directly by humans as a functional reinforcing material after appropriate concen- tration processes.

Key word: Fish roe concentrate, Processed water, Food functionality, Biological activity, Tunas

This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

https://doi.org/10.5657/KFAS.2017.0506 Korean J Fish Aquat Sci 50(5) 506-519, October 2017

Received 18 August 2017; Revised 10 September 2017; Accepted 18 September 2017

*Corresponding author: Tel: +82. 55. 772. 1440 Fax: +82. 55. 772. 1430

E-mail address: [email protected]

(2)

백질성분

(sarcoplasmic protein, amines, enzymes)

대부분 제거때까지수세와탈수하는과정에서다량발생하며

(Afonso and Borquez, 2002; Dumay et al., 2008), Watanabe et al. (1982)

surimi

제조시어육중량당

10-20

배의수세수가 발생하고

,

이들중에는

2-5 g/L

수용성단백질이함유되어 으며

,

수세탈수과정에서단백질의

30%

정도가손실된다 하였다

.

어육

fillet

가공시에는원료중량에대해

10-30

배의 가공처리수가사용되고

,

과정에서어육단백질의

5-12%

손실되며

,

특히어육과직접물이닿는

fillet machine

내에서의 초기가공처리수의단백질함량이높다고하였다

(Afonso and Borquez, 2002). Lobster

자숙수에는

0.11%

단백질성분

0.025%

지질성분이함유되었다고보고하였다

(Dumay et al., 2008).

새우가공중에는가공원료중량당

50

배의가공수가 사용되며

,

희석상태의단백질성분이

0.1-0.6 g/L

함유되어

,

이를가열농축하여새우향미소재로이용하고자보고

(Dumay et al., 2008),

수세액

(Kim and Heu, 2001b; Kim et al., 2001a)

자숙액

(Kim and Heu 2001a; 2001b)

농축 분말화한인스턴트수프의제조품질안정성에대하여연구 있으며

,

대합의

3

수세수를

clam juice (Hood et al., 1976)

탈수

clam flavour (Joh and Hood, 1979)

이용하고자

,

,

참치문어자숙액의식품성분특성과건강기능특성 대한보고

(Oh et al., 2007)

그리고붉은대게자숙액효소 가수분해물의영양성분과건강기능특성에대한연구

(Kang et al., 2007)

그리고오징어자숙액

(Cho et al., 2000)

타우린 량에관한연구등이있다

.

이상의연구보고에따르면가공처리 수로부터유용성분의회수방안에대한연구가대부분이며

,

분말화하여향미소재나인스턴트수프의첨가물로이용하고 자하는연구와농축가공처리수로부터제조한효소가수분해물 건강기능성에대한연구가있을뿐이다

.

따라서수산가공 정에서가공처리수자체의식품기능성건강기능성에초점 맞춘효용성가치에대한연구는거의없으며

,

이에 연구가요구된다

.

한편

,

수산가공산업에서 수산물의가공중에머리

,

껍질

,

,

내장

,

그리고알과같은다양한고형상의가공부산물이다량 으로발생하며

,

전체중량의

30-60%

차지한다

(Narsing Rao et al., 2014; Klomklao and Benjakul, 2016).

이러한수산가 부산물은일부만이어유

(fish oil),

어분

(fish meal),

동물 사료

,

질소성분비료등으로이용되고있을뿐이다

(Dong and Bechtel, 2010).

이러한가공부산물중에서어류

(Fish roe)

알집

(skeins)

둘러싸인알을말하며

,

단백질

(Sikorski, 1994)

필수지방산

(Mahmoud et al., 2008)

풍부한고영양성의 재자원이지만

,

연어나철갑상어알의캐비어

(caviar),

명란 직접적인이용은매우한정적이다

.

대부분식품소재로이용 되지못하는어류알에대한선행연구

(Heu et al., 2006)

바탕 으로보다효율적인유용단백질자원식품소재로서의이용 위하여

,

어류알로부터분말농축물의제조

(Lee et al., 2016)

식품기능특성

(Park et al., 2016)

대해연구를수행 있지만

,

이의제조과정에도

2

차가공부산물인가열처리가공 수가발생하였다

.

따라서연구에서는넙치

(BH, bastard halibut Paralichythys olivaceus),

가다랑어

(ST, skipjack tuna Katsuwonus pelamis)

황다랑어

(YT, yellowfin tuna Thunnus albacare)

알로부터 분말농축물의제조발생하는가열처리가공수

(boiled pro- cess water

steamed process water)

대하여거품유화 형성능에따른식품기능특성과항산화활성항고혈압활성 대하여살펴봄으로서

,

수산가공산업에서가공처리수의 나의모델로서식품건강기능적인측면의가치에대해조명 하고자하였다

.

재료 및 방법

재료

넙치

(BH, Paralichythys olivaceus)

알은통영시소재수산시 장에서구입하였으며

,

가다랑어

(ST, Katsuwonus pelamis)

황다랑어

(YT, Thunnus albacares)

알은창원시소재동원산업

(Dongwon F&B Co., Ltd. Changwon, Korea)

으로부터동결 상태의알을분양을받아사용하였다

.

동결된알은

4℃

에서

24 h

동안부분해동하여

1.5 cm

크기로세절하고

food grinder (SFM-555SP, Shinil Industrial Co., Ltd., Seoul Korea)

쇄하였다

.

마쇄한알은다시

-20℃

보관하면서실험에사용

하였다

.

어류

concentrate

Lee et al. (2016)

방법에따라

-

건조공정

(boiled

steamed process)

통해 제조하였으

,

이때발생하는

processed waters

로서

boiled process wa- ter (BPW)

steamed process water (SPW)

실험의재료 사용하였다

.

, 100 g

마쇄한알을파우치

type tea bag (polyethylene polyprophylene, 16×14.5 cm)

담아

5

배량의 이온수에침지한다음

,

시료의중심온도가

80℃

되는시점 부터

20 min

동안삶기

(boiled process)

하였으며

,

또한동일 하게준비한다른시료는수증기로찌기

(steamed process)

심온도가

80℃

되는시점부터

20 min

동안실시하였다

.

정을통해액상의가공부산물인

BPW

SPW

각각얻었다

.

아울러마쇄한

100 g

5

배량의이온수를가하여균질 화한

(POLYTRON® PT 1200E, KINEMATICA AG, Luzern, Switzerland)

다음

,

원심분리

(Supra 22K, Hanil Science Indus- trial Co., Ltd., Incheon, Korea, 12,000 g, 4℃, 20 min)

하여 상층액을대조구로서추출물

(EXT, water extract)

조하였다

.

단백질

가열처리공정중에발생하는가공

(processed water)

로서

BPW

SPW

단백질농도는

Lowry et al. (1951)

방법에

(3)

따라표준단백질로서

bovine serum albumin

사용하여구한 검량선을통해측정하였다

.

또한넙치

(BH),

가다랑어

(ST)

리고황다랑어

(YT)

(Roe)

단백질함량은

semi-micro Kjel- dahl

(AOAC, 1995)

으로측정하였다

.

전기영동

시료의단백질분자량분포는

Laemmli (1970)

방법에

sodium dodecyl sulphate polyacrylamide gel electropho- resis (SDS–PAGE)

측정하였다

.

,

시료액은

SDS-PAGE

시료조제용완충액

[2% SDS (w/v), 10% glycerol (v/v), 2%

β-mercaptoethanol (v/v)

0.002% bromophenol blue (w/v)

함유하는

62.5 mM Tris–HCl buffer pH (6.8)]

4:1 (v/v)

율로혼합한

, 100℃

에서

3 min

동안가열하여조제하였다

.

렇게준비한시료

(20 μg

단백질

)

10% Mini-PROTEAN®

TGX™ Precast gel (Bio-Rad Lab., Inc., California, USA)

주입하고

, Mini-PROTEAN® Tetra cell (Bio-Rad Lab. Inc., California, USA)

장착한다음

,

일정한전류

(10 mA per gel)

통하게하여전기영동실시하였다

.

단백질의분자량분포는

Precision Plus Protein™ standards (10-250 K, Bio-Rad Lab., Inc., California, USA)

사용하여확인하였다

.

총 아미노산

시료의아미노산분석은

AOAC

(AOAC 1995)

측정하였다

.

,

액상의시료

(2.5 mL)

진한염산

(12 N HCl)

동량으로 혼합한

, 110℃

heating block (HF21;

Yamoto Science Co, Tokyo, Japan)

에서

24 h

동안가수분해를 실시하였다

.

시료의가수분해물은

glass filter

장착한감압여 과장치

(ASPIRATOR A-3S, EYELA, Tokyo, Japan)

여과 다음

, sodium citrate buffers (pH 2.2)

50 mL

정용하였

.

이렇게제조한시료는

0.2 μm syringe filter (13HP020AN, Hydrophilic type, AVANTEC, Tokyo, Japan)

여과하여아미 노산분석기

(model 6300; Biochrom 30, Biochrom Ltd., Cam- bridge, UK)

아미노산을분석하였으며

,

분석결과는

100 g

단백질에대한개별아미노산의

mg

함량으로나타내었다

. 거품성 및 거품안정성

시료의 거품성

(FC, forming capacity)

거품안정성

(FS, form stability)

Thiansilakul et al. (2007)

방법을다소수정

Park et al. (2016)

따라측정하였다

.

, 10 mL

시료용액은

25 mL

메스실린더에옮겨담고

,

균질기

(POLYTRON® PT 1200E, KINEMATICA AG, Luzern, Switzerland)

12,500 rpm

에서

1 min

동안균질화하였다

.

거품이형성된시료는 어진시간

(0, 15, 30

60 min)

동안실온에서정치하면서

,

부피와거품의부피를측정하여아래의식에따라

FC

FS

구하였다

.

Foaming capacity (%) =

VTV0 ×100

Foam stability (%) =

(FT/VT)(Ft/Vt) ×100

이때

VT

균질후부피

, V

0균질전의부피

, FT

직후거품의부피

, Ft

Vt

주어진시간

(t = 15, 30 and 60 min)

경과후의거품부피부피를각각나타낸다

.

유화능과 유화안정성

유화능

(EAI, emulsifying activity index)

유화안정성

(ESI, emulsion stability index)

Pearce and Kinsella (1978)

방법 다소수정한

Park et al. (2016)

따라측정하였다

.

시료 식용유

(soybean oil, Ottogi Co., Ltd., Seoul, Korea)

1:3 (v/v)

비율로혼합하여균질화한

(12,500 rpm, 1 min)

다음

,

균질액이 담긴 메스실린더의 아래쪽에서 일정량

(50 μL)

emulsion

취하여

5 mL of 0.1% sodium dodecyl sulfate (SDS)

용액과혼합하였다

.

혼합액은분광광도계

(UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)

사용하여

500 nm

파장에서균질화한 직후의 흡광도

(A0min)

10

분경과 후의 흡광도

(A10min)

측정하여아래의식으로각각

EAI (m2/g protein)

ESI (min)

구하였다

.

EAI (m

2

/g protein) =

2×2.303×A×DF

l

×

φ

×

C

이때

, A

500 nm

에서의흡광도

, DF

희석비

(100), l

통과하는

cuvette

(1 cm), φ

혼합액중에식용유가 지하는비율

(0.25)

그리고

C

단백질의농도

(g/mL)

각각 타낸다

.

ESI (min) = A

0×

Δ t ΔA

여기서

ΔA

A

0min대한

A

10min흡광도의차이

, Δt

10 min

의미한다

.

DPPH 라디칼 소거활성

시료의

2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH)

라디칼 거활성은

Blois (1958)

방법을수정하여측정하였다

.

시료

(1.5 mL)

대하여동량의

0.4 mM DPPH radical ethanolic

solution (1.5 mL)

혼합하고

,

실온의암소에서

30 min

동안 응시킨

,

파장

517 nm (UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)

흡광도를측정하였다

. DPPH

라디칼소거활성

(%)

아래 식에따라구하였으며

, IC

50

value (mg/mL)

50%

DPPH

소거활성을나타내는시료의농도

(mg/mL)

정의하였다

.

(4)

DPPH radical scavenging activity (%) =

(Control517-Sample517)

Control517

×100

이때

,

대조구

(control517)

시료용액대신탈이온수를가하

,

측정한흡광도를나타낸다

.

ABTS + 라디칼 소거 활성

2,2'-Azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) di- ammouium salt (ABTS

+

)

라디칼 소거활성은

Binsan et al.

(2008)

방법을다소수정하여측정하였다

.

먼저각각

7.4 mM ABTS

용액과

2.6 mM potassium persulfate

용액을제조한

,

동량혼합하여 실온의암소에서

12 h

동안반응시킨 용액

사용하였다

.

실험용액

(2 mL)

50 mL

ethanol

합한다음

,

파장

734 nm (UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)

서의흡광도가

1.00±0.02 units

되도록하여

, ABTS

+용액 최종적으로제조하였으며

,

용액은실험직전에바로 조하여사용하였다

.

시료용액

(1 mL)

3 mL

ABTS

+ 액과혼합하여

,

실온의암소에서

30 min

동안반응시킨

,

734 nm

에서흡광도를측정하였다

. ABTS

+라디칼소거활

(%)

아래의식으로계산하였으며

, IC

50

value (mg/mL)

50%

ABTS

+라디칼소거활성을나타내는시료의농도

(mg/

mL)

정의하였다

.

ABTS

+

radical scavenging activity (%) =

(Control734-Sample734)

Control734

×100

이때의대조구

(control

734

)

시료용액대신탈이온수를가하

,

측정한흡광도를나타낸다

.

Superoxide dismutase (SOD) 유사활성

SOD

유사활성은

Marklund and Marklund (1974)

방법을 일부수정하여측정하였다

. 500 μL

시료용액은

500 μL of 7.2 mM pyrogallol (10 mM HCl

용해

)

3 mL

1 mM EDTA

함유하는

50 mM Tris-HCl

완충액

(pH 8.5)

혼합하

, 30 min

동안반응시켰다

.

이어서

100 μL of 1 N HCl

가하 반응정지시키고

,

파장

420 nm (UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)

에서흡광도를측정하여아래의식을통해

SOD

유사활

(%)

계산하였다

.

SOD-like activity (%) =

[ (Control420-Sample Black420)

]×100

(Control420-Control Black420)

이때의

sample blank

시료에

1 N HCl

가해반응정지

, pyrogallol

첨가하여측정한흡광도이며

, control blank

시료대신탈이온수와

1 N HCl

혼합한다음

, pyrogallol

첨가해측정한흡광도를나타낸다

.

환원력

시료용액의환원력

(RP, reducing power)

Oyaizu (1988)

방법을일부수정하여측정하였다

.

시료용액

(1 mL)

1 mL

0.2 M sodium phosphate

완충액

(pH 6.6)

1 mL

1%

(w/v) potassium ferricyanide

혼합하여

50℃

항온수조에

20 min

동안반응시켰다

.

이어서

1 mL

10% (w/v) trichlo- roacetic acid (TCA)

가해반응정지하고

,

원심분리

(1,890 g, 10 min)

하였다

. 1.5 mL

상층액은

1.5 mL

탈이온수와

0.3 mL

0.1% (w/v) ferric chloride

용액을혼합하여

, 10 min

동안 반응

,

파장

700 nm (UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)

에서 흡광도를측정하였다

.

환원력의

EC

50

(mg/mL)

흡광도

0.5

나타내는데필요한시료의농도로정의하였다

.

Tyrosinase 저해활성

시료용액의

Tyrosinase

저해활성은

Iida et al. (1995)

법을다소수정하여측정하였다

.

, 300 μL

시료용액은

900 μL

mushroom tyrosinase (50 Unit/mL)

1.5 mL of 50 mM phosphate buffer (pH 6.8)

혼합하여실온에서

30 min

동안 단계반응을실시한

, 300 μL of 10 mM 3,4-dihydroxy-L- phenylalanine (L-DOPA)

용액을가하여

,

파장

475 nm

에서

20 min

동안

1 min

간격으로생성되는

dopachrome

흡광도를 니터링하면서측정하였다

. Tyrosinase

저해활성

(%)

아래의 식을통하여계산하였다

.

Tyrosinase inhibitory activity (TIA, %) =

(Control475-Sample475)

Control475

×100

여기서대조구

(control

475

)

시료대신탈이온수가하여측정 흡광도를의미한다

.

Angiotensin I-converting enzyme (ACE) 저해활성 ACE

저해활성은

Cushman and Cheung (1971)

방법을 수정하여측정하였다

. 100 μL

시료용액

, 50 μL

ACE extracts (rabbit lung acetone powder, Sigma-Aldrich Co.

LLC. St. Louis, MO)

그리고

50 μL

0.05 M sodium borate

완충액

(pH 8.3)

혼합한반응액은실온에서

30 min

동안 반응을실시한다음

, 50 μL

5 mM hippurly-his-leu (HHL)

acetate salt

함유한

0.05 M sodium borate

완충액

(pH 8.3)

가하여

37℃

항온수조에서

60 min

동안반응을진행하였다

.

효소반응의정지는

250 μL of 1 N HCl

가하여실시하였으

(5)

,

이어서

1.5 mL

ethyl acetate

가한다음

,

원심분리

(1890 g, 10 min, 4℃)

하였다

. 1.0 mL

상층액을시험관에옮기고

100℃

heating block

에서

1 h

동안

ethyl acetate

완전히 발시킨다음

,

유리된

hippuric acid

1.0 mL

이온수로 해시킨

,

파장

228 nm (UV-2900, Hitachi, Kyoto, Japan)

흡광도를측정하였다

. ACE

저해활성

(%)

아래의식에 구하였으며

, IC

50

(mg/mL)

ACE

활성의

50%

저해하 시료의농도로정의하였다

.

ACE inhibitory activity (%) =

[1- (Control228-Sample Black228)

]×100

(Control228-Control Black228)

이때의

sample blank

시료에

1 N HCl

가하여반응정지 시킨

, HHL

첨가해측정한흡광도이며

, control blank

대신탈이온수와

1 N HCl

혼합한다음

, HHL

가하여 정한흡광도를나타낸다

.

통계처리

모든 실험은

3

반복 실시하여

,

평균

(average)

표준편

(standard deviation)

나타내었다 데이터는

SPSS 12.0 K (SPSS Inc., Chicago, IL, USA)

통계프로그램을이용하여

ANOVA test

통해분산분석을실시하고

, Duncan

다중위 검정법으로최소유의차검정

(P<0.05)

실시하였다

.

결과 및 고찰

단백질 회수율

Table 1

넙치

(BH),

가다랑어

(ST)

그리고황다랑어

(YT)

농축물

(roe concentrate)

제조과정중에발생하는가공처리수

(processed water)

단백질회수율

(

시료의기준에서는단백질 손실율

)

대하여나타낸것이다

.

먼저

,

시료인어류알의단백 함량은

BH

18.21, ST

20.42

그리고

YT

18.27 g/100 g

이었다

.

이들어류알로부터

5

배량의이온수를가해얻어 추출물인

EXTs

581-669 mL

범위이었으며

,

삶기 공정

(boiled process)

에서얻어진

BPWs

경우는

83-105 mL

수준그리고찌기공정

(steamed process)

에서얻어진

SPWs

95-103 mL

수준이었다

.

100 g

어류알에대하여

EXTs

단백질함량은각각

3.59 (BH), 3.11 (ST)

그리고

2.75 g/100 g (YT)

이었으며

,

이때

,

백질의회수율또는손실율

(Protein loss, %)

각각

19.1(BH), 15.23(ST)

그리고

15.05% (YT)

이었다

.

백색육어류인넙치가 회유성혈합육어류인다랑어류에비해단백질의손실율이 것으로나타났다

.

한편

,

삶기공정의

BPWs

1.11-1.88 g/100 g

단백질함량 범위를나타내었으며

,

찌기공정의

SPWs (0.71-1.49 g/100 g)

비하여유의적으로높았다

(P<0.05).

이는삶기공정

(BPW)

찌기공정

(SPW)

비해시료와가공처리수가접촉되는

면적이상대적으로넓어

,

용해되어유리되는아미노산단백 등의유기성분의함량이많아진것에기인하는것으로판단 되었다

.

가공처리수의 이용측면에서 단백질성분의 회수율

(

어류 측면에서는단백질손실율

)

EXTs (15.05-19.71%)

하여가열처리 공정

(BPWs

SPWs)

상대적으로조직 백질의가열변성응고로인한유리되는단백질성분의함량 적어손실율

(3.88-10.43%)

낮은것으로확인되었다

.

실험결과 어종가열처리공정에따라단백질성분의농도 함량에는차이가있었으며

,

이들가공처리수에는

4%

상의단백질이함유되어있는것으로확인되었다

.

수산원료의 처리에있어서

,

어획단계에서의간단한수세가공공장에서 원료의전처리수세공정등에서수세수가발생하게되고

,

가열처리공정에서발생하는가공수다양한액상의가공부 산물

(liquid byprotucts)

발생한다

.

이들가공부산물에는

sarcoplasmic protein,

효소

,

혈액등의단백질성분지질 성분을함유하고있다

(Dumay et al., 2008). Cho et al. (2000)

오징어탈피수세수와자숙수의단백질함량은각각

1.1%

0.6%

라고하였으며

,

오징어단백질의

5.5%

3.0%

차지하 였다

. Kim et al. (2001b)

식품소재로서수세수자숙수 Table 1. Protein recovery (%, w/v) of processed waters obtained from fish roe during cook-dried process

Sample Volume

(mL/100 g roe) Protein1

(mg/mL) Total protein

(g/100 g roe) Protein loss (%)

BHRoe 18.21 0.00

EXT 669.03 5.36 3.59a 19.71a

BPW 105.11 17.91 1.88b 10.34b

SPW 97.79 15.27 1.49c 8.18c

ST Roe 20.42 0.00

EXT 646.44 4.81 3.11a 15.23a

BPW 95.29 13.52 1.28b 6.31b

SPW 103.32 8.10 0.84c 4.11c

YT Roe 18.27 0.00

EXT 581.64 4.72 2.75a 15.05a

BPW 83.08 12.02 1.00b 5.47b

SPW 95.83 7.40 0.71c 3.88c

1Based on Lowry at al. method (1951). BH, bastard halibut Parali- chthys olivaceus; ST, skipjack tuna Katsuwonus pelamis; YT, yel- lowfin tuna Thunnus albacares; EXT, water extract; BPW, boiled process water; SPW, steamed process water. Values are mean of triplicate determination. Means with different letters within the same sample are significantly different at P<0.05 by Duncan’s mu- tiple range test.

(6)

단백질함량은

0.4%

0.8%

이었고자숙수의단백질함량이 높다고보고하였다

.

가다랑어

,

문어자숙수의단백질함량 각각

3.64, 1.48

1.36 g/100 mL

이었으며

(Oh et al., 2007),

붉은대게자숙수의단백질함량은

12.2%

라고보고한있다

(Kang et al., 2007).

수산가공산업에서의가열처리공정은참치

,

,

대합등과 통조림원료의경우주로레토르트를이용하여살균공정을 동반한고온가압의찌기공정을통해가열처리가이루어지며

(Hood et al., 1976; Yeo et al., 1998; Kim and Heu, 2001a; Oh et al., 2007),

갑각류의경우도찜솥을이용한찌기공정

(Kang et al., 2007)

,

일부문어와오징어등의연체류는원료를 지하여삶기공정

(Cho et al., 2000; Oh et al., 2007)

,

건멸치 경우선상에서해수로직접단시간삶기공정을통한가열 처리

(Ji et al., 2002)

하게된다

.

또한수세가열처리공정 통해원료중량당단백질의손실은

5-30% (Watanabe et al., 1982; Afonso and Borquez, 2002)

이른다

.

공정에서

중량당

10-50

배의수세수가열처리가공수가발생하고

가용성단백질성분지질성분이

2-5 g/L (

0.2-0.5 %)

유되어있다

(Watanabe et al., 1982; Dumay et al., 2008).

이상 실험결과와연구보고에따르면

,

어류가열처리공정에서 발생하는가공처리수

(BPWs

SPWs)

에는단백질성분의이용 가능성이높은것으로판단되었으며

,

이를이용하고자하는 력이절실하다

.

따라서연구에서는이들가공처리수의식품 기능성생리활성에초점을맞춰이용가치에대해살펴보 고자하였다

.

단백질 분자량 분포(SDS-PAGE)

넙치

(BH),

가다랑어

(ST)

그리고황다랑어

(YT)

알의가공처 리수의

SDS-PAGE

의한단백질분자량분포는

Fig. 1

타내었다

.

넙치

(roe)

단백질분포

(Lane 1)

100-10 K

위에서

9

개의단백질밴드의분포가확인되었으며

,

각각

100- 75 K

에서

3

개의밴드

, 75-50 K

사이에서

3

개의밴드가

,

그리고

25-10 K

범위에서

3

개의밴드가관찰되었다

.

넙치

EXT

단백 질분포

(Lane 2)

100-75 K

범위에

3

개의밴드

, 75-25 K

사이 범위에서

5

개의밴드가그리고

20-10 K

범위에서밴드를 하지않았다

. BH

알과

EXT

간의단백질분포는

50-25 K

15-10 K

범위에서다소차이가있었다

. BH

BPW (Lane 3)

SPW (Lane 4)

단백질분포는

250 K

에서하나의가늘고 확한밴드가확인되었으며

, 37-20 K

범위에는희미하게단백질 분포가인지되었고

, 20-10 K

10 K

이하에서진하게단백 분포가확인되었다

.

또한

BPW

SPW

간에는단백질의 포에는거의차이가없었으며

,

이들의단백질농도차이에따른 단백질의발색정도에서차이가있을뿐이었다

.

가다랑어

(ST)

알의단백질분포

(Lane 5)

250-100 K

범위에 단백질의분포가확인되었으나밴드를형성하지는않았다

. 100-75 K

범위에명확한

2

개의밴드

, 37 K, 25 K

15 K

부근에

각각하나의밴드가관찰되었고

, 15-10 K

범위에서도

2

개의 밴드가확인되었다

.

가다랑어

(ST) EXT

단백질분포

(Lane 6)

100-75 K

범위에희미한

2

개의밴드

, 50 K

부근의희미한

2

개의밴드가확인되었으며

, 50-37 K

25 K

부근에서단백질 분포가관찰되었고

, 15 K

범위에서희미한

2

개의단백질밴드 확인되었다

. ST

BPW (Lane 7)

SPW (Lane 8)

단백

밴드는

37-20 K

범위에는희미하게단백질의분포가인지

되었고

, 20-10 K

10 K

이하에서진하게단백질분포가확인 되었다

.

또한

BPW

SPW

간에는단백질의분포에는거의 이가없었다

.

황다랑어

(YT)

알의단백질분포

(Lane 9)

250-100 K

범위에 넓은단백질밴드의분포가관찰되었으며

, ST (Lane 5)

찬가지로

100-75 K

범위에명확한

2

개의밴드가관찰되었으나

, 50-37 K

범위에서

2

개의명확한밴드가확인되어

ST (Lane 5)

와는다소차이를보였다

.

그러나

ST (Lane 5)

같이분자

25 K

15 K

부근에서각각하나의밴드가관찰되었고

, 15- 10 K

범위에서도

2

개의희미한밴드가확인되었다

. YT

EXT (Lane 10)

YT

(Lane 9)

유사한단백질밴드의분포를 였으며

, 100-75 K

범위에서

2

개의밴드가선명하게관찰되었

. YT

BPW (Lane 11)

SPW (Lane 12)

단백질분포는

50 K

부근에서명확한하나의밴드가확인되었으며

, 37-25 K

범위에는희미하게

3

개의단백질밴드가인지되었고

, 25-20 K, 15 K

10 K

부근에서희미한단백질밴드가관찰되었다

.

BPW

SPW

간에는단백질밴드의분포에는두드러진차이 없었다

.

이상의

SDS-PAGE

따른단백질의분자량분포는 어종간의차이가확인되었으며

,

어종가공처리수간에도 Fig. 1. SDS-PAGE pattern of processed waters obtained from fish roe during cook-dried process. M, molecular weight maker; Lane 1, 5 and 9 for fish roes; Lane 2, 6 and 10 for water extract (EXT);

Lane 3, 7 and 11 for boiled process water (BPW); Lane 4, 8 and 12 for steamed process water (SPW).

skipjack tuna yellowfin tuna bastard halibut

250 150 100 75 50 37

25 20

15

10

M 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12

0 10 20 30

Ty ro si na se inh ib itio n (% )

7.50

14.17

8.73

2.50

0.41 1.25

BH ST YT

Sample

EXT SPW

0.0 1.0 2.0 3.0

IC

50

(m g/ m L) 1.63

1.19 1.14

1.04

1.31 1.22

BH ST YT

Sample

EXT SPW

수치

Table 2. Foam capacity (FC), foam stability (FS), emulsifying activity index (EAI) and emulsion stability index (ESI) of processed waste- waste-water obtained from fish roe during cook-dried process
Fig. 3. ACE inhibitory activity of processed waters obtained from  fish roe during cook-dried process

참조

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