치료제
Dehydroevodiamine • HCl(DHED)의 변이원성 연구
성이숙 ■ 정성윤 • 정주연 . 채규영 • 진미령 • 최봉웅* • 장병모* • 김대경#
중앙 대 학 교 약학대학,*제일약품(주) (Received A pril 12,2002; Revised M ay 16, 2002)
Study on Mutagenicity of Dehydroevodiamine • HC1 (DHED)
Yi Sook Sung, Sung Yun Jung, Ju Yeon Jeong, Gyu Young Chae, Mi-Reyoung Chin, Bong Woong Choi*, Byeung Mo Chang* and Dae Kyong Kim#
Dept, of Environmental and Health chemistry, College of Pharmacy, Chung-Ang University, Seoul 156-756, Korea
*Jeil Pharmaceutical Co. Ltd., Seoul 137-041’ Korea
Abstracts —— Dehydroevodiamine HC1 (DHED), which is a component separated from Evodia rutaecarpa Bentham, has
novel anticholinesterase and antiam nesic activities in the scopolam ine-induced am nesia m odel. Several studies suggest that D H E D m ig h t be an effective d ru g for the A lzhe im e r's disease and the vascular type o f dem entia. In order to evaluate the
mutagenic potential of DHED, Salmonella typhimurium reversion assay, chromosomal aberration test on Chinese hamster lung cells, in vivo micronucleus assay using mouse bone marrow cells, and comet assay were performed. DHED did not increase the number of revertant in the reverse mutation test using Salmonella typhimurium TA1535, TA1537, TA98,
TA100. D H E D HC1, at concentration o f 5 and 10 jag/m/, increased the n u m b e r o f chrom osom e aberrated C hinese ham ste r
lung cells with 5 and 10%, respectively. In mouse micronucleus test, no significant increase in the occurrence of micro
nucleated polychromatic erythrocyte was observed in ICR mice orally administered with DHED. DHED was tested for abil
ity to induce genotoxic effect in L5178Y cells (mouse lymphoma cells) using the single cell gel electrophoresis assay (comet
assay). In co m e t assay, tail m o m e n t did n o t increase in L5178Y cells treated w ith 10,100, 300 |iM D H E D .
Keywords □ Salmonella typhimurium reversion assay, chromosomal aberration test, micronucleus assay, Comet assay,
D H E D
알츠하이머 병은대표적인 퇴행성뇌질환으로알려져 있는데 이것은뇌섬유의 신경전달부위에아세틸콜린전달과정에 결함이 있을때발병하는것으로연구되어지고있다.15 따라서 신경전달 부위에 아세틸콜린의 양을중가시키는약물을시용함으로써 이 병을치료하고자하는노력이 이어져 왔다. 그약물들가운데서 도 아세틸콜린가수분해효소 저해약물은임상적으로가장높은 치료JL율을나타낸다. 그러나, tac rine , p h y s o s tig m in e과같이치 료효율이 높은아세틸콜린가수분해효소저해약물조차임상적인 응용에 많은제약이있는것이사실이다. 그이유는이들약물이 대부분생물학적 반감기가짧고 뇌내침투능력이 낮으며 혈액내 에서불안정할뿐아니라유해한부작용이 많고치료범위가좁
#본 논문에 관한 문의는 저자에게로 (전화) 02-820-5610 (팩스) 02-8l 6-7S38 (E-mail) [email protected]
다는한계점이 있었기 때문이다.2)
또한, 뇌혈류의 흐름이 원활하지 않을 때치매가유발된다는 보고가있다.3! 허혈성 뇌질환의모델에서 아세틸콜린 양이학습
과기억을수행하는H ip p o c a m p u s에서현저히낮음을볼수있
는데, 이것은뇌내 혈류방해로인해부교감신경이 기능적인장해
를받고있기때문으로보고되고있다.4’5)
D e h y d r o e v o d ia m in e • H C l ( D H E D ) 는 Evodia rutaecarpa
B e n t h a m에서주줄된 ind ole a lk alo id 성분으로서 혈압강하,6) 혈 관확장,뇌혈류강화작용,7〉io n c h a n n e l d e p re s s io n 8) 등의약효 를지니고있다.
이약물은기존의 치매치료제인 tacrin, d o n e p e z il과같이아 세틸콜린가수분해효소의 활성을억제하고기억력감퇴 억제효 과가있는것으로밝혀져현재새로운노인성 치매치료제로개 발되고있는화합물이다.
이러한아세틸콜린가수분해효소억제작용에의한기억력증
208
치매치료제 DHED 의 변이원성 209
진효과뿐만아니라LTP 중진 및뇌허혈에의한뇌세포사멸을 억제하는효과가 있으며,또한알츠하미머의주원인단백질중의 하나인아밀로이드베타단백질의독성을 억제하는효과가알려 져있어알츠하이머병 치료제로개발되고있다.
본 연구에서는 알츠하이머병 치료제로서 가능성 있는 Dehydroevodiamine ■HCl(DHED)에대한안전성을조사할목
적으로복귀돌연변이시험,배양세포를이용한염색체이상시험 ,
마우스에서의소핵시험 및comet assay 등의변이원성시험을실 시하였다.
실 험 방 법
시험물질의조제
시험물질인 Dehydroevodiamine • HC1(DHED • HC1)은 제
일약품에서 치매치료제로 연구중인 화합물로구조식은 Fig. 1 과 같으며, dimethylsulfoxide(DMSO)로 용해하여 실험에 사 용하였다.
시 약
양성대조물질로는복귀돌연변이 시험에서는 2-aminofluorene, 2-aminoanthracene, 2-nitroflurene, N-methyl-lSr-nitro-N-nitroso-
guanidine, sodium azide, 9-aminoacridine등을염색체이상시험
에서는mitomycin C, benzo[a]pyrene을각각증류수와DMSO
에용해하여사용하였으며,소핵시험에서는 mitomycin C를중 류수에용해하여시용하였다.
S-9 mix의조제
Maron과 Ames9)의방법에 따라 S9 분획을 얻었다. 체중 약
200 g5] Spraque-Dawley rat에 Acroclor 1254를 500 mg/kg 용 량으로복강내투여하였다. 투여 5일째에간을적출하여 3 배용
량의 0.15 M KC1 용액을 넣고균질화하였다. 원심분리 (9,000 g, 10분)한후상징액을취하여 S9 분획을얻었다. 이 S9 분획에첨 가물을가하여 S9 mixture를만들어 사용하였다. S9 mixture의 조성은 10%(v/v) S9, 8 mM M gCl2, 33 mM KC1, 5 mM glucose-6-phosphate, 4 mM NADR 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4)이다.
Fig. 1 - Chemical structure of dehydroevodiamine HCI (DHED).
미생물을 이용한복귀돌연변이시험
Salmonella typhimurium 균주 4종(TA1535,TA1537, TA98, TA100)을이용하여 Maron과 Ames9)의방법에따라복귀돌연변
이시험을실시하였다. DHED를 DMSO에녹일 수 있는 최대한
의농도로용해하여 5,000 |_ig/plate를본시험에서의 최고농도로
설정하였다. 50, 16.67, 5.56, 1.82, 0.62 mg/m/의 시험물질용액 0.1 ml, 10시간 배양한 시험균 0.1 ml, S9 mix 혹은 0.1 M phosphate buffer(pH 7.4) 0.5 ml을 370C에서 20 분간반응시켰
다. 여기에 top agar 2 mZ을 혼합하여 minimal glucose agar plate에중층하며 37°C에서 48시간배양한후복귀돌연변이 집
락의수를계측하였다. 복귀돌연변이집탁의수는 plate 3매의 평
균치로나타내었으며음성대조군과비교하여 복귀돌연변이 집락 수가 2배이상을보이거나용량상관성 있게증가하는 경우에 양
성으로판정하였다.
포유류 배양세포를 이용한염색체이상시험
Chinese Hamster Lung(CHL) cells을 이용하여 Dean과 Danford10)의방법에따라in vitro염색체이상시험을실시하였다.
세포는 10% fetal bovine serum어 포함된 Eagle's minimal essential medium(EMEM)을이용하여 배양(5% C02, 포화습도, 370C)하였다. DHED를 DMSO에용해하여 시험 7]능한 최고농
도로 10 ng/mZ을 설정하였다. 양성대조물질로는 직접법에는
mitomycin C(0.2 를 대사활성화법에는 Benzo[a]pyrene (50 나g/m/>를각각 배양액에 녹여사용하였다. 대사활성화법에
이용되는대사계(S9 mix)는 랫드의 간균질액(S9)과 cofactor를 1:9로혼합하여사용하였다. 25 cm2의플라스크에 5 m/의 CHL
세포현탁액(2.5X104 cells/m/)을분주하여 24시간배양한후, 직
접법은 시험물질또는양성대조물질을 함유한신선한 배양액을 처리하며 6시간동안배양하였다. 시험물질 및양성대조물질 처
리개시후 6시간후에 시험물질 및양성대조물질이 첨가된 배
지를신선한배지로교환해준다음추가로 18시간동안배양한
후분열중기세포를수거하여 염색체표본을 제작하였다. 용매대
조군은희석용완충액으로 배양액에 물질처리군과 같은 농도로 처리하였다. 대사활성화법은시험물질 또는 양성대조물질을 함
유한신선한배양액에 S9 mix가 10%가 되도록첨가하여 6시간
동안 배양하였다. 시험물질 및양성대조물질 처리 개시 후 6시
간후에 각물질이 첨가된배지를신선한배지로교환해준 다음 추가로 18시간동안배양한후분열중기세포를수거하여 염색체
표본을제작하였다. 직접법 및대사활성화법 모두의 경우에 분
열중기세포수거 2시간 전에 colcemid를최종농도 0.2 (祖W가
되도록 각플라스크에 처리하였으며 분열중기세포를 trypsin- EDTA(0.25%) 용액을사용해서 수거하여 1,000 rpm으로 5분간
원심분리하여 상층액을제거하고저장액(0.075 M KC1)을 가해
37°C 수욕상에서 15분간처리하였다. 다시 원심분리하여 상층액
을제거한후냉각된고정액(메틸알콜 : 빙초산=3 : 1,v/v)을가
하여 20분간전고정을하였다. 다시 원심분리하여 고정액을 2회
교환해준다음공기건조법으로염색체표본을민들고 5% Giemsa
액 (pH 6.8 인산염완충액으로희석)^로 염색해서 cover glass로
봉입하였다. 염색체이상세포의 계수를위해분열중기세포를 각
시험군당염색체표본 3매를제작하고 100개의분열중기세포로
부터구조적 이상유무를관찰하였고 polyploidy세포의 계수를위
해각시험군 당 100개의분열상의 세포를관찰하였다.
마무스에서의 소핵시험
7주령의 SPF ICR 암컷,수컷口!우스를 대한바이오링크로부터
분양받아온도 23±10C, 상대습도 55±5 %,환기횟수 10-18회/
시간, 조명시간 12시간조건의동물실험실에서 1주일간순화시
켜사용하였다. 사료는실험동물용고형사료(신촌사료(주))를자
유롭게섭취토록하였으며 물은수도물을자유섭취시켰다. 투여
용량은 50% 치사량의 1/2용량으로결정하였다. DHED를수컷
마우스는 450 mg/kg, 암컷마우스는 396 mg/kg으로미리 4시간
절식시킨마우스에하루간격으로 2회투여하고 24시간후에마
우스를경추탈구에 의하여 도실하여 대퇴골을분리하였다. 대퇴
골내부를 fetal bovine serum.0■■로씻어내어 골수세포현탁액을
얻었고원심분리 (1,000 rpm, 5 min)하며상징액을버렸다. 최종
현탁액의적당량을 slide glass에도말하여실온에서하루동안건
조하였다. 메탄올에 5분간고정한후 4% Giemsa 용액 (in PBS, pH 6.8)에서 25분간 염색하였다. 염색액을흐르는물로씻어내
고 0.004 % citric acid 용액에 잠깐담그었다꺼낸후다시 물
로씻어자연건조하였다. 현미경으로관찰하여 1,000개의 다염성
적혈구(PCE,polychromatic erythrocyte) 중 MNPCE(micronu- cleated PCE)의비율및 500개의적혈구중 PCE의비율을결정
하였다. Comet assay
L5178Y cells(mouse lymphoma cells) 에 DHED를농도별로 2시간처리하여 세포독성을 tryphan blue exclusion으로관찰했
을때 20%이하인농도를기준으로하며 comet assay11}를실시
하였다. 슬라이드를각시료당네개씩준비하였다. Microscopic slides에 1% regular melting agarose(40-42 °C) 110 |i® 가하고 coverslip를올린다음 40C에서 10분동안방치하였다. 한편, 농
도별로 DHED를 2시간처리한 세포현탁액에 1% low melting agarose(370C)을 1:1비율로 넣었다. Microscopic slides위에 있
는 coverslips를조심스럽게 제거한후세포현탁액과 agarose가
들어있는시액 110 바를그위에덮고다시 40C에 10분간방치
하였다. cover slip를제거하고 0.5% low melting agarose 110 Mi를슬라이드위에덮어씌운후다시 40C에 10분간방치하여고
정시켰다. 이렇게 만든슬라이드를 lysis solution(2.5 M NaCl,
Table I 一 Reverse mutation test of DHED in Salmonella typhimurium
C o m pound D ose ( O p i a t e ) S9 m ix
No. of revertant colonies per plate (M ean 土 S. D.)
TA1535 TA1537 TA98 TA100
Vehicle - 19 ± 5 132 ± 9 25 ± 3 22 ± 6
D H E D 5,000 - 7 ± 3* 60 士12** 0 51 9 ± 3*
1,667 - 16 i 7 141 ± 17 16 ± 16 ± 3
556 - 9 ± 1* 119 ± 17 17 1* 20 1;7
182 - 13 土6 150 ± 14 26 6 25 ± 5
62 - 13 ± 2 150 ± 13 13 4* 24 ± 8
2-NF 10 - 1571 ± 161
MNNG 10 - 2542 ± 189
SAZ 0.5 - 75 土10
9-AA 80 - 395± 140
Vehicle + 22 ± 4 150 ±26 20 ± 5 23 ± 3
DHED 5,000 + 12 ± 2** 79 ± 20* 3 ± 5 ± 2**
1,667 + 30 ± 3 146 ± 62 15 + 2 19;t:2
556 + 22 ± 2 123 ± 9 17 ± 3 17 + 4
182 + 29 ± 10 131 ± 9 16 + 2 16土4
62 + 29 ± 8 130 ± 11 21 ± 4 13 4*
2-AF 10 + 3460:二875 785 ± 19 30士4
2-AA 2 + 142 + 31
aNumbers represent the mean 士 SD of three plates
b2-AF, 2-aminofluorene; 2-AA, 2-aminoanthracene; 2-NF, 2-nitroflurene; MNNG, N-methy-N'-nitro-N-nitrosoguanidine; SAZ, sodium azide; 9-AA, 9-aminoacridine were used as positive controls for the corresponding strains.
* cytotoxic; significantly different from the control (p<0.05)
**cytotoxic; significantly different from the control (p<0.01)
J. Pharm . Soc. Korea
치매치료제 DHED 의 변이원성 211
100 mM Na2EDTA, 10 mM Tris-HCl, pH 10, 1% N-lauro- ylsarcosine, 1% Triton X-100) 에넣고 40C에서 1시간 반동안
방치하였다. 슬라이드를다시 알카리성 완충액(300 mM NaOH, 1 mM EDTA, pH 13)에 40C에서 30분간담가 DNA의이중나
선를풀리도록한후전기영동을 300 mA, 25 Volt에서 20분간
실시하였다. 반응이끝난후슬라이드를 neutralization buffer(0.4 M Tris-HCl, pH 7.5)에 10분씩 3번담가서 세척하였다. 마지막
으로 메탄올에 담갔다가실온에서 건조시킨후슬라이드를 50
\il ethidium bromide(10 로염색한후형광현미경0-로관
찰하였다. 손상된 DNA는c o m e t모양을나타내게되는데밝은형
광을나타내는 head부위와 tail이보이고 정상적인 DNA는 head
부분만보이게 된다. 처리물질에 대한손상정도는 tail의형광강
도즉 DNA양과관련이있는데각세포에 대한 DNA 손상의 양
적인측정은 tail moment로나타내었다.
실 험 결 과 및 고 찰
Salmonella typhimurium TA1535, TA1537, TA98 및 TA100
을이용하며수행한복귀돌연변이시험 결과를 Table I에표시하
였다. DHED는 5,1.667,0.556,0.182, 0.062 mg/plate 의모든
농도에서대사활성화여부에관계없이복귀돌연변이 colony의중
가를 일으키지않았다. 반면, 양성 대조물질들은 각시험균주에
대하여복귀돌연변이 colony를증가시켰다.
CHL세포를 이용한 in vitro 염색체이상시험 결과는 Table II
에나타냈다. 대사활성화계가존재할때나존재하지 않을 때모
두 DHED 5 에서 5% 이상의 염색체이상빈도를보였으
며 10 에서는 10% 이상의 빈도를나타내염색체이상유발
양성으로 판명되었다. 이때 양성 대조물질인 mitomycin C, benzo[a]pyrene은각각 25%, 41%의빈도를나타내었다.
마우스를이용한소핵시험에서 DHED는음성 대조군과비교
하여소핵을지닌다염성적혈구(MNPCE)의유의한증가를가져
오지않았으며 적혈구중 PCE의비율에 있어서도유의한증가
나감소가관찰되지 않았다(Table III). 반면, 양성 대조물질인
mitomycin C 투여군에서는 MNPCE가유의하게 증가하였고
PCE의비율이 유의성 있는감소를보였다.
L5178Y세포에 DHED를 2시간처리했을때음성대조군에 비
해 80% 이상세포가살아있는농도를 comet assay에적용시켰
다(Fig. 2). 10,100, 300 nM DHED를 L5178Y세포에 처리하고 comet assay를실시하였을 때농도에 따른 comet tail moment
의 중가를 나타내지 않았고 이때 양성대조물질인 MMS
Table II - Chromosomal Aberration test of DHED on CHL cell with or without metabolic activation
Dose No. of Structural Aberration Normal Observed
ctg ctb cte csg csb cse cell cell
Vehicle 0 - 0 0 1 0 0 0 99 100
DHED 2.5 - 2 0 1 0 0 0 97 100
5 - 3 1 1 0 1 0 94 100
10 - 6 3 1 1 1 0 88 100
MMC 0.2 - 7 5 11 2 0 0 75 100
Vehicle 0 + 2 0 0 0 0 0 98 100
DHED 2.5 + 1 1 2 0 0 0 96 100
5 + 3 0 2 3 2 0 90 100
10 + 5 2 2 3 0 0 88 100
B[a]P 50 + 5 12 24 0 0 0 59 100
MMC : mitomycin C, B[a]P Ctg : Chromatid Gap, Ctb Chromosomal Exchange
: benzo[a]pyrene
Chromatid Break, Cte : Chromatid Exchange, Csg : Chromosomal Gap, Csb : Chromosomal Break, Cse :
Table III - Micronucleus test in ICR mice treated orally administered with DHED
Compound Route Dose (mg/kg) No. of
animals
MNPCE (Mean ± S.D./1000PCE)
PCE/(PCE+NCE) (%,Mean ± S.D.)
Vehicle p.o. 0 male 6 0.39 ± 0.57 57.2 ± 3.8
DHED p.o. 450 male 10 0.45 ± 0.35 53.5 ± 4.7
MMC i.p. 0.5 male 6 2.45 ± 0.59 45.2 ± 8.9
Vehicle p.o. 0 female 6 0.36 ± 0.78 56.0 ± 8.7
DHED p.o. 396 female 10 0.46 ± 0.38 54.7 ± 5.5
MMC i.p 0.5 female 6 2.65 ± 0.67 42.2 ± 10.8
Mitomycin C, MNPCRs: Mononucleated polychromatic erythrocytes, PCEs: Polychomatic erythrocytes, Each value represent mean 土 S.D. '
H 3.5 3.0 2.5 2.0
1.0 0.5 0.0
10 100 300 MMS
D oseof D H E D ( |iM)
Fig. 2 - Mean comet tail moment exposed to different doses of DHED. L5178Y mouse lymphoma cells were treated with DHED and analyzed in the comet assay. Results represent the mean values 土 standard error of four slide counting, Positive control used 200 (jM MMS (Methylmethane sulfonate).
(methylmethane sulfonate) 의경우 comet tail moment의값이 2.8± 0.27이었다.
이상과같이치매치료제로서 개발 7]능성이 있는신약후보물
질인 DHED에대한유전독성에 대하여실험하였다. 미생물을이
용한복귀돌연변이 시험에서는돌연변이를생성하지 않았으며, comet assay에서도 DNA손상을일으키지 않아유전독성의 위
험이 없는것으로결과가나온것에 반하쉬, 배양세포을이용한
염색체이상시험에서는처리용량에따라염색체이상이중가되는 용량-반응상관성을나타내어 유전독성의 가능성을나타내었다.
이상의 in vitro실험에서 일관성있는결과를얻지못하였으므로,
유전독성을명확히판단하기위하여 in vivo시험인마우스를이 용한소핵시험을행한소핵실험에서는변이유발성을나타내지 않았다. 따라서, 본연구자들은 이상의 시험결과를 종합하여 DHED는유전독성을나타내지않는것으로판단하였다.
감 사 의 글
본연구는보건복지부 G7 신약개발으}업연구비로수행되었으
며,이에감사드립니다.
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