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부산 민락동 오수처리장에서 분리된 장내세균
Klebsiella pneumoniae 와 Escherichia coli 가 생성한 광범위 베타 락탐 ( Extended-Spectrum β -Lactamase, ESBL ) 분해효소의 유형
이훈구
부경대학교 자연과학대학 미생물학과
본논문은부산소재하수처리장중계시설인민락오수처리장의하수에서광범위베타락탐분해효소
(extended- spectrum
β-lactamase, ESBL)
생성균주를분리동정하고이들이생성한ESBL
유형을조사하였다.
민락오수처리 장은부산남구수영구의민락동일대에밀집한횟집의하수를모아서남구용호동에있는하수종말처리장으로 중계시키는시설이다. 2009
년1
월하수검체로부터항균제이중디스크확산시험(double disk synergy test)
에양 성반응을나타낸19
균주를1
차시험균주로선택하였다.
인돌생성시험methyl-red, Voges-Proskauer, Simmon ’ s citrate, decarboxylase-dihydrolase
및 당 발효능 생화학 시험을 통하여Klebsiella pneumoniae (3
균주)
와Escherichia coli (16
균주)
가동정되었다.
이균들을공여균주로, Escherichia coli J53 (sodium azide
r)
를피전달균주 로하여접합시험을실시하여plasmid
로매개된4
균주접합체를얻었다.
이들로부터plasmid
를추출하여PCR
로유전자증폭을시켜유전자를분석하고등전점을조사한결과
Klebsiella pneumoniae
에서생성된ESBL
유형은모두
SHV-12 (3
균주)
였고, Escherichia coli
에서생성된ESBL
유형은SHV-12/TEM-1 (1
균주)
였다.
Key words
□double disk synergy test, Escherichia coli , extended spectrum beta-lactamase (ESBL), Klebsiella pneumoniae , SHV-12, TEM-1
1980
년대 초 유럽에서Klebsiella pneumoniae
와Escherichia coli
등일부장내세균에서plasmid
매개성광범위 베타락탐분해효소
(extended spectrum
β-lactamase, ESBL)
생성균주가 병원 에서환자로부터분리된이후우리나라를포함한전세계적으로 여러병원에서폭넓게분리되어질병치료에중요한문제로대두 되고있다(1, 18).
β
-Lactamase (EC 3.5.2.6)
는amide, amidine,
기타C-N
결합을 가수 분해시키는 효소로서 특히환상의amide
를 분해시킨다(5, 6).
그결과penicillin
류나cephalosporin
류또는 이와관련이 되 는 β-lactam
항균제에서amide
결합,
즉β-lactam ring
을가수분 해시킴으로써 불활성화 시킨다(4, 8).
크게TEM
형과SHV
형의 두계열로나뉘며이들은대부분TEM
이나SHV
β-lactamase
구 조에서1~4
개의아미노산치환이일어난 변이형으로서구조유 전자의 점돌연변이(point mutation)
가일어난 것이다(9).
이들은Bush
의DNA
의 분자구조 차이에 의한 분류와Ambler
의 β-
lactamase
구조에서아미노산서열을기준으로분류하는두가지의분류체계를가지고있다
(2, 5).
현재임상에서빈번하게분리되고있는
ESBL
생성균주는주로장내세균과
( Enterobacteriaceae )
세균에서생성되며cephalosporin
계열의소위제
3
세대항균제들에대해서내성을획득하고있다.
일부는세균의염색체성
DNA
에의해서매개되기도하지만세균접합에의한
plasmid
로쉽게다른종의세균에게도약제내성이전달되고있다
(6, 8).
환자나 임상가검물로부터제
3
세대약제내성을획득한 균주 가분변이나생활하수,
양식장이나축산폐기물들을통하여자연계로확산될경우
,
자연계내에서서식하고있는여러종류의세 균군에게내성을전달시킬수있고,
이와같이내성을전달받은균주는가축이나음식물
,
기타여러가지복잡한생활환경을통하여 인체로재유입될 위험성을가지고 있다
.
그러나ESBL
생성균주와이들이생성하는
ESBL
유형의 연구는환자로부터기인된것이대부분이며생활환경으로부터분리된것에대한연구 는많이이루어진바가없다
.
본연구자는이러한문제의중요성 을감안하여부산경남지역의오수펌프장,
도축장,
소하천등생 활환경으로부터ESBL
생성장내세균군을분리하여,
이중디스크확산시험
,
접합시험,
유전자분석과등전점시험을통하여plasmid
매개성
ESBL
생성세균과 이들이생성하는ESBL
의유형을조사해오고있다
(12).
본연구는부산 수영구민락동 횟집밀집지역과그인근주거 지역으로부터생활하수를모아서이지역최종하수처리시설인 부산남구용호동소재남부하수종말처리장으로하수를중계시키 는 민락오수처리장하수로부터
ESBL
생성균주를분리하고 그 유형을파악하기위하여이루어졌다.
*To whom correspondence should be addressed.
Tel: 82-51-629-5613, Fax: 82-51-611-6358
E-mail: [email protected]
재료 및 방법
균주분리민락오수처리장 하수로부터 균주분리는 다음과 같이 하였다
. 2009
년1
월멸균된 채수병에2
개의 중계 시설하수를 받은 후 실험실로옮겨각각0.1 ml
을취하여제3
세대cephalosporin
계열 항균제인ceftazidime (4
µg/ml, Young-Jin Pharm., Korea)
을첨가 한 장내세균 선택배지인MacConkey agar
배지(Difco Labora- tory, USA)
에고르게 도말하여37
oC
에서17
시간배양하여 균집락을 얻었다
.
이를2
회에 걸쳐Brain Heart Infusion agar
(BHIA, Difco)
상에서순수 분리하였다.
이렇게 분리된균주를생화학 검사를 실시하여종수준까지 최종동정하였다
.
균주의 동정은Ewing (7)
을따랐다.
항균제내성검사는시판되는항균제감 수성검사 디스크(BBL, Becton Dickinson, Microbiology System, USA)
를구입하여디스크확산법으로하였고판정기준은NCCLS
를따랐다
(15).
사용된 항균제는ampicillin (AM), amikacin (AN), cephalothin (CF), chloramphenicol (C), gentamicin (GM), kanamycin (K), nalidixic acid (NA)
와tetracycline (Te)
등8
종이었다.
이중디스크 확산(
Double disk synergy
) 시험항균제검사방법과같이
McFarland No. 0.5
농도에맞춘신선 한균부유액을멸균된면봉으로적셔Mueller-Hinton agar
배지(MHA, Difco)
에 고르게 도말 하였다.
이 평판의 중앙에ticarcillin/clavulanate (75/10
µg, Becton Dickinson Microbiology System, USA) disk
를놓고disk
로부터25 mm
떨어진 곳에제3
세대 항균제인
cefotaxime (30
µg), ceftazidime (30
µg), ceftriaxone (30
µg) disk
를올려놓고37
oC
에서18
시간배양한후에억제대의형태를관찰하여상승효과
(synergism)
를판정하였다(10, 13).
이때 사용된 항균제는 모두BBL (Becton Dickinson Microbiology System)
제품이었다.
교차접합시험(
Transconjugation
)에 의한 내성 전달이중디스크확산시험결과양성을 나타낸균주를
ESBL
생성plasmid
내성잠재전달균주(donor)
로하고sodium azide (50
µg/
ml)
가첨가된Mueller-Hinton agar
배지에서 감수성을 확인하였다
. E. coli J53 (sodium azide
rceftazidime
s)
을 피전달균주(recipient)
로하여교차접합시험을 실시하였다.
시험균주들은모두
BHI
에서 배양된 대수증식기 중반의 신선한균주를 선정하 였다.
전달균주와피전달균주의균체수비율을1:10
이되게하여 새로운BHI
에혼합한후37
oC
에서24
시간배양하였다.
이배양 액을멸균된면봉에 적셔ceftazidime (32
µg/ml)
과sodium azide (50
µg/ml)
가 함께 첨가된MacConkey agar
에 고르게 도말하고37
oC
에서24
시간배양하여균집락생성된균주를선별하고생화학검사를통하여
E. coli
로확인된균을최종실험균주로선별하고접합자의약자인
C
를해당균주번호앞에부여하여모균 주와구별하였다(13).
이후이균주들에대한PCR,
전기영동,
등전점시험으로
plasmid
에의한내성이 전달되었음을확인한 다음
Gel Extraction kit (DyneBio Inc., Korea)
를사용하여plasmid
DNA
를순수정제하여제노택(Genotec, Korea)
에의뢰하여염기 서열을분석하였다.
염기서열결정후
, NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov)
와BCM Search Launcher (http://searcherlaumcher.bcm.tmc.edu/)
를 이용하 여Multiple Sequence Alignment, Sequence Utility
에서개시코돈을확인하고해당아미노산결정과유사도등을비교하고
ESBL
유형을 분류하였다
.
형별분류동정 기준은Bush
와Jacoby
에의 해서 운영되고 있는lahey clinical study (http://www.lahey.org/
temtable.asp)
를따랐다.
등전점(
Isoelectric focusing, IEF
)등전점 측정을 위하여 균주로부터
crude
β-lactamase
추출, polyacrylamide gel
제조및전기영동을실시하였고 단계별방법 은다음과같았다(12, 13).
BHI
액체배지30 ml
에접종하여37
oC
에서24
시간진탕 배양 한후1,000
×g
에서15
분간원심분리하여침전된 세균을모아3
차증류수
1 ml
에재부유시켰다.
이를초음파파쇄기(Ultrasonic homogenizer 4710. Cole-Palmer Instrument Co., USA)
를 이용하 여30
초간4
회분쇄하였다. 5,000
×g
에5
분간원심분리하여상등 액을eppendorf tube
에옮긴후검사실시전까지-20
oC
에서보관하였다
(13).
등전점 검사는 유리판 위에
pipette
을이용하여증류수 몇방울을떨어뜨리고
gel support film
의소수성부분을유리판에기 포가생기지않도록하여부착시켰다. Polyacrylamide gel
을적당량
(3~4 ml)
을분주하고,
분주된gel
위에gel support film
의친수 성부분을기포가생기지않도록주의하면서부착시켰다.
이렇게 준비한 유리gel
판을 형광등불빛 아래에서1
시간 중합시켰다.
유리
gel
판위에sample template
를 놓고sample 2
µl
를loading
한후
5
분간상온에서방치한다음조심스럽게sample template
를제거하였다
. Isoelectrofocusing Chamber (Mine IEF Cell 111.,
Bio-Rad Co., USA)
의흑연전극에 증류수로적당히 습윤한상태를유지시키고유리
gel
판의gel
이흑연전극에닿도록하여100 V
에30
분, 200 V
에30
분, 450 V
에60
분간순차적으로전기영동시켰다
.
등전점검사를위한gel
조성은전보를따랐다(12, 13).
전기영동이 끝난유리
gel
판으로부터gel support film
을분리하여
nitrocefin (500
µg/ml in phosphate buffer, pH 7.0)
을1~2
ml
정도를gel
표면 위에 뿌려준 후 적색band
가 나타나면Wattman No. 2
여과지를gel
위에 덮어 착색시키고band
를단 백질표준marker
와비교하면서판독하였다(1, 12).
Plasmid
분리와Polymer Chain Reaction (PCR)
을 이용한ESBL
유전자의 형별 분류실험균주를
BHI
에접종하여37
oC
에서18
시간 진탕배양한후 배양액1 ml
을3,000
×g
로원심분리하여얻은 침전된 세균을같은 양의 생리식염수로 재부유 시켜
3
회 세척하였다.
이를plasmid
의 분리kit
인plasmid Minipreps DNA Purification kit (Injae Science Co. Korea)
으로 조작지시서를 따랐다. ESBL
균주의 형별 확인을 위하여 사용된
primer
는 각각TEM type
과SHV type
의 보존적 염기서열을 이용하여 제노택(Genotec, Korea)
에서제작하였다.
TEM
형primer
는F (5 ’ -ATA AAA TTC TTG AAG ACG AAA-3 ’) R (5 ’ -GAC AGT TAC CAA TGC TTA ATC-3 ’ )
였고SHV
형primer
는F (5 ’ -TGG TTAT TGC GTT ATA TTC GCC- 3 ’ ) R (5 ’ - GGT TAG CGT TGC CAG TGC T-3 ’)
였다(13)
TEM
형 확인을 위한PCR
조건은denaturation 94
oC 30
초, annealing 50
oC 90
초, extension 72
oC 60
초로 하여30 cycle
을 반복하였고, SHV
형 확인은denaturation 96
oC 30
초, annealing 50
oC 15
초, extension 72
oC 120
초로하여24 cycle
을반복하였다.
사용된
primix Taq
은TaKaRa
제품(TaKaRa Bio Inc., Japan)
이었고최종량은
20
µl
가 되게조절 하였다. PCR
기기는GeneAmp PCR system 2400 (Perkin Elmer, USA)
를 사용하였다.
이와 같이하여 얻어진
PCR
생성물을1.0% agarose gel
에TBE buffer
속에서
100 V
로15
분간전기영동을하여각각의전형적인TEM
(1 kb)
과SHV (800 bp)
형의band
를UV
형광등 아래에서 확인 하였다(13).
결 과
ESBL
생성 장내세균의 분리동정2009
년1
월민락오수처리장의방류수를채취하여ceftazidime (4
µg/ml)
이첨가된MacConkey agar
배지상에서성장된균집락을선별하여이중디스크확산시험결과중앙에놓여진
ticarcillin/
clavulanic acid
와주변에놓인제3
세대항균제사이에간섭현상을 나타내 투명대를 형성한
19
균주를 실험균주로 선택하였다(Fig. 1).
그람염색및oxidase
시험 결과2
종모두음성을 나타 내었고, catalase
시험은양성을나타내었다.
이들에대한생화학 검사결과Klebsiella pneumoniae (3
주)
와E. coli 16
주등 총19
균주의장내세균이동정되었다
(Table 1).
각균종에대한생화학 검사결과는다음과같았다(Table 1).
E. coli
는MacConkey
평판배지에서전균주가고원(plateau)
형 의적색집락을 형성하였고KIA
배지slant
와butt
에서산생성(A/A), 0.4%
한천이첨가된nutrient
반고체배지에서일부균주들이운동성이있었고
, indole, methyl-red
시험에서양성을나타 내었다.
그러나전균주는VP
배지에서acetoin
을생성하지못하였고
Simmon ’ s citrate
배지에서citrate
를단독탄소원으로이용하 지못하였다. Lysine decarboxylase
시험과ornithine decarboxylase
시험은양성반응을 나타내었고
, arginine dihydrolase
시험에서는균주에따라변화가있었다
. Glucose
를비롯한여러종류의당을발효시켰다
.
K. pneumoniae
는MacConkey
평판배지에서전균주가중앙이 선명한 적색,
주변부가투명한 동심원으로 집락 표면에점성을 띄는 매끄러운convex
형태였다. KIA
배지 상에서slant
부분과butt
부분에서 산생성(A/A), 0.4%
한천이 첨가된nutrient
반고체배지에서운동성이없었다
. Indole, methyl-red
시험에서음성Fig. 1. Detection of ESBL positive strains by the double-disk synergy test between 3rd generation cephalosporins (ceftazidime, ceftriaxon, and cefotaxime) and ticacillin/cavulanic acid (center). The synergic effects between 3rd generation cephalosporins and ticacillin/clavulanic acid are marked in arrow.
Table 1. Biochemical reactions of strains isolated from sewage plant drain water at Minragdong in Busan, Korea Strain No.
Test 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
KIA A/A A/A A/A A/A A/A A/A A/A A/A A/A A/A
H
2S - - - - - - - - - -
Indole Production + + + + + + + + + +
Methyl-Red + + + + + + + + + +
Voges-Proskauer - - - - - - - - - -
Citrate, Simmons - - - - - - - - - -
Lysine, Moeller ’ s + + + + + + + + + +
Arginine, Moeller ’ s - - + - - - + + + -
Ornithine, Moeller ’ s + + + + + + + + + +
Motility + - + - - - + - + -
Gas from Glucose + + + + + + + + + +
Table 1. Biochemical reactions of strains isolated from sewage plant drain water at Minragdong in Busan, Korea (continued)
Acid production from: +
Glucose + + + + + + + + + +
Lactose + + + + + + + + + +
Sucrose - - - - - - - - - -
Mannitol + + + + + + + + + +
Dulcitol - - - - - - - - - -
Salicin - - + - + - + + - -
Adonitol - - - - - - - - - -
Inositol - - - - - - - - - +
Sorbitol + + + + - + + + + +
Arabinose + + + + + + + + + +
Raffinose - - - - - - - - - -
Rhamnose + + + + + + + - + +
Trehalose + + + + + + + + + +
Species E. coli E. coli E. coli E. coli E. coli E. coli E. coli E. coli E. coli E. coli Table 1. Biochemical reactions (continued)
Strain No.
Test 11 12 13 14 15 16 17 18 19
KIA A/A A/A A/A A/A A/A A/A A/A A/A A/A
H
2S - - - - - - - - -
Indole Production + + + - + + - - +
Methyl-Red + + + - + + - - +
Voges-Proskauer - - - + - - + + -
Citrate, Simmons - - - + - - + + -
Lysine, Moeller ’ s + + + + + + + + +
Arginine, Moeller ’ s - + + + - + + + +
Ornithine, Moeller ’ s + + + - + + - - +
Motility + - + - - - - - +
Gas from Glucose + + + + + + + + +
Acid production from:
Glucose + + + + + + + + +
Lactose + - + + - - + + +
Sucrose - - - + - - + + -
Mannitol + + + + + + + + +
Dulcitol - - - - + - - - -
Salicin - + + + - + + + +
Adonitol - - - + - - + + -
Inositol - + + + - + + + +
Sorbitol + + + + - - - - +
Arabinose + + + + - - - + +
Raffinose - - - + + + + + -
Rhamnose + - - + + + + +
Trehalose + + + + + + + + +
Species E. coli E. coli E. coli K. pneu-
moniae E. coli E. coli K. pneu-
moniae K. pneu-
moniae E. coli
을나타내었고
VP
시험에서acetoin
을생성하여적색을나타내었 고, Simmon ’ s citrate
시험양성을나타내었다. Lysine decarboxylase
시험 양성이었고
ornithine decarboxylase
시험 음성이었다. Glucose
를비롯한 여러종류의 당을발효시켰다. Glucose
로부터 가스를생성하였다.
교차접합시험(
Transconjugation
)에 의한 내성 전달 검사Plasmid
매개에의해서ESBL
이전달된것을확인하기위하여동정된
19
균주(ceftazidime
rsodium azide
s)
를전달균주로, E. coli J53 (ceftazidime
ssodium azide
r)
을피전달균주로하여ceftazidime (32
µg/ml)
과sodium azide (50
µg/ml)
가첨가된MacConkey agar
배지에균을접종하였다
.
교차접합시험을실시하기전피전달균 주인E. coli J53
은ceftazidime (32
µg/ml)
이 첨가된MacConkey
agar
배지에서성장이되지않는것을확인하였고,
전달균주들은모두
sodium azide (50
µg/ml)
에서성장되지않는것을확인하였 다. K. pneumoniae 3
균주(
균주번호c14, c17, c18)
와E. coli 1
균 주(
균주번호c12)
가접합자를형성하였다.
이접합자들에대한생 화학검사를실시하여피전달어미균주인E. coli J53
과일치함을 확인하였다.
항균제 감수성 검사
이중디스크확산시험에서양성반응을나타낸
19
모균주에대하여
8
종의항균제로감수성시험을실시한결과, E. coli 16
균주 는조사된8
가지항균제에대하여 최소3
종부터 최대8
종의항균제에내성을획득하였다
.
이중5
가지항균제에내성을획득한 균주(5
균주)
가가장많았다(Table 2).
K. pneumoniae
는분리된 균주가3
균주로 적게분리되었기때 문에통계적유의성은없으나이들역시5~6
종의항균제에내성을획득하였다
(Table 2).
접합자의 β
-lactamase
등전점접합자를형성한 균주에대한 등전점은
E. coli
는pI 5.4
와pI 8.3
이었고(Fig. 2), K. pneumoniae
는pI 8.3
에서단일한 생성물을만들었다
(Fig. 2).
Plasmid
분리 및Polymer Chain Reaction (PCR)
를 이용한ESBL
유전자의 염기서 열 분류접합자집락으로부터
plasmid
를추출하여PCR
로증폭한다음 전기영동을실시한결과는다음과같았다. E. coli
는1,000 bp
부 근과800 bp
부근에서 생성물을형성하여TEM
형(1,080 bp)
과SHV
형(780 bp)
이동시에 전달되었다.
그러나K. pneumoniae
는모두
800 bp
부근에서단일한생성물을형성하여SHV
형이었다.
이들을
elution kit
를사용하여정제한DNA
를유전자 서열분석 과단백질분석을한결과E. coli
접합자는TEM-1
과SHV-12
였다
. K. pneumoniae
의경우 전기영동 결과SHV
단독 생성물을 형성한3
균주는모두SHV-12
였다(Fig. 3).
고 찰
광범위 베타 락탐 분해효소
(extended-spectrum
β-lactamase,
ESBL)
를생성하는 장내세균은국내외를 막론하고대부분 임상가검물로부터얻어진것들이며
(11, 14)
그외의환경검체등에서는자주보고되지않고있다
(3, 20).
그러나 우리나라의경우부산지역의 도축장이나하천수 등생활환경에서이미
plasmid
매개성
ESBL
생성균들이분리되었고이들의ESBL
유형도조사되었다
(12, 13).
본 연구에서는 부산지역의 민락오수처리장에서plasmid
매개성ESBL
생성균주를분리동정하고이들이생성하는
ESBL
유형을분류하기위하여실시되었다.
이오수처리장으로하수가유입되는구역은 상당히광법위하여 부산남구에있 는황령산록의고지대부터저지대인민락동포구까지이다
.
역세 권은아파트대단지를포함한주거지역,
대형회센터나재래시장Table 2. Multidrug resistance patterns of the isolates
Species Antibiotics Strains (Strain No.)
E. coli
Nal AN K Te C Am Ce Ge 1 (8) Nal AN K Te Am Ce Ge 1 (4)
AN K Am Ce Ge 1 (12)
Nal K Am C Ge 3 (1, 2, 6)
Nal K Am C Ce 2 (7,10)
Nal Am C Ce 2 (3,9)
Nal K Am Ce 2 (5,11)
Nal Am Ce Ge 1 (15)
Nal T Am Ce 1 (16)
Nal Am Ce 1 (15)
pneumoniae K.
K Te C Am Ce Ge 1 (17)
Nal AN Am Ce Ge 1 (14)
AN K Am Ce Ge 1 (18)
Abbrivations: ampicillin (AM), amikacin (AN), cephalothin (CF), chloramphenicol (C), gentamicin (GM), kanamycin (K), nalidixic acid (NA), tetracycline (Te)
Fig. 2. Isoelectric focusing points of each ESBL producing transconjugants. E. coli C12 produced the products of pI 5.4 and pI 8.3.
K. pneumoniae (C14, C17, C19) produced only one product at pI 8.3.
이산재해있고민락포구의해산물폐기물뿐아니라인근에종 합병원급내지준종합병원의하수도혼입되고있다
.
이렇게광범 위하고다양한 생활권으로부터모여진 하수들이이곳에서용호 동소재하수종말처리장으로중계되어처리된다음용호만으로 방류된다.
Plasmid
매개성ESBL
생성세균은장내세균과( Enterobacteriaceae )
에속한
E. coli
와K. pneumoniae
가가장대표적인세균이며이 두 종의 세균은 기회감염균과 원내감염균으로 매우 중요하다(18).
우리나라에서는
TEM
형의경우,
임상가검물에서TEM-52
형이 우점종으로분리되는것으로 보고되었고(17), SHV
는SHV-12
가 우점종으로 분리되고 있다(11).
부산지역의 환경에서 분리되는TEM
유형 역시TEM-52
와TEM-1
가 자주 분리되고 있다(12, 13).
환경에서분리된SHV
형은제한된자료이지만SHV-12
가단일유형으로분리되고
(12, 13)
있으며,
본연구에서도동일한결과 를얻었다.
따라서부산지역에서분리된결과만가지고우리나라전체의생활환경에서분리되는
SHV
유형을단언하기는어렵지만
SHV-12
가우리나라에서분리되는SHV
유형의우점종일가능성이 높다고 생각된다
(13). SHV-12
는SHV-1
에서35Leu
→Gln, 238Gly
→Ser, 240Glu
→Lys
로치환된것으로pI 8.2
로SHV-5a
로분류되던것이었다
(16).
입원환자들에게집단적인원내감염을일으키기도한다
(19).
본연구에서 이중디스크확산 시험결과 얻어진
19
균주 중E.
coli
는16
균주, K. pneumoniae
는3
균주였고이중K. pneumoniae
는
plasmid
매개로 전 균주가ESBL
유전자를 피전달체인E.
coli J53
에전달시켰지만E. coli
는단지1
개균주만이전달되어 상대적으로K. pneumoniae
보다전달율이훨씬낮았다.
Plasmid
매개성ESBL
생성균주는현재범세계적으로아주흔하게 임상에서 분리되고 있으며
,
이들이생성하는ESBL
유형역시점돌연변이결과 아주높은빈도로새로운 유형들이보고
되고있다
.
우리나라역시빈번하게분리되고있다(1, 10).
그러나현재는
ESBL
생성균주서식처가병원의환자나환자의가검물에만국한된것은아닌것으로생각되며
,
비록한정된지역이기는하지만 하수처리장
,
소하천,
도축장등다양한 생활환경에서분리되는것을고려할때
,
부산경남지역의생활환경에널리 확대된것으로생각된다.
현재까지는환경검체에서E. coli
와K.
pneumoniae
등 장내세균( Enterobacteriaceae )
과의특정 세균속에국한되어 분리되고 있고 그유형 역시
TEM-1, TEM-52, SHV-
12
등매우단순하지만이들의점돌연변이특성과plasmid
매개 로쉽게다른종의세균에게내성전달이가능하기때문에가까 운시일내에자연계내서식하고있는세균들에게다양한유형 이분리 될것으로 생각된다.
생활환경으로부터 분리되는장내 세균들은이미기존의치료약으로쓰이는여러종류의항균제에 내성을획득한상태이며(12, 13)
이들에게plasmid
매개성ESBL
생성능이전달되어사람에게재유입 될가능성은매우높을것 으로생각된다
.
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