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Effect of OQ21 and Melatonin on Lipopolysaccharide-Induced Oxidative Stress in Rat Brain

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약학희 49 4 347~ 354 (2005)

Yakhak Hoeji Vol. 49No. 4 藥 學 舍 확

흰쥐 뇌에서의 Lipopolysaccharide-유도 산화적 스트레스에 대한 6Q21 고!' Melatonin의 작용

배 미 경 최 신 규고 문 정하 헌 주 김화정# 이화여자대학교 약학대학

(Received August 2, 2005; Revised August 182005)

Effect of OQ21 and Melatonin on Lipopolysaccharide-Induced Oxidative Stress in Rat Brain

M e e K y u n g B a e , Shinkyu Choi, M oon -Jeon g K o, H un-Joo H a and H w a-Ju n g K im #

Research Institute of Pharmaceutical Sciences, College of Pharmacy, Ewha Womans University, Seoul 120-750, Korea

Abstract — Lipopolysaccharide (LPS) induces synthesis of several inflammatory cytokines and nitric oxide (NO). NO in brain is involved not only in the regulation of important metabolic pathways via intracellular cyclic GMP-dependent path­

ways, but also in neurotoxic damage by reacting with superoxide ion leading to form peroxynitrite radical. Oxidative stress has suggested to be related to the inhibition of NO synthase/cyclic GMP pathway. OQ21 is a new fluorinated quinone com­

pound that is recently known to have inhibitory effects on both NO synthase (NOS) and guanylyl cyclase (GC). In this study, we examined effects of OQ2 1, other known NOS or GC inhibitors, or an antioxidant, melatonin, on the oxidative stress pro­

duced by LPS in rat brain. Oxidative stress was observed by using the 2',7'-dichlorofluorescin diacetate to measure intra­

cellular reactive oxygen species (ROS) production and by measuring the formation of thiobarbituric acid reactive substances to measure lipid peroxidation. LPS induced significant increase in both ROS produdction and lipid peroxidation in all brain regions tested (striatum, hippocampus and cortex), which were dissected 6 hr after intraperitoneal administration of LPS to rats. Direct striatal injection of two NOS inhibitors, N-nitro-L-arginine methyl ester and diphenyleneiodonium, or a GC inhibitor, lH -[l2 ’4]oxadiazolo[43-a]quinoxaline-l-one, produced no significant ROS increase. However, OQ21 enhanced ROS formation in striatal tissues from LPS-treated rats. Melatonin decreased LPS-induced ROS formation and decreased ROS formation increased by OQ21 in striatum of LPS-treated rats.

K eyw ords □ lipopolysaccharide, nitric oxide synthase, guanylyl cyclase, oxidative stress, rat brain

동물이 병원성 (pathogenic) 박테리아등의 미생물에감염되었

생성되는내독소(endotoxin) 횔성성분인 lipopolysaccharide

(LPS)이직접 정맥이나내로투여되면 대식세포(macrophage)

등의 면역세포 뇌의 glia 세포표면에 있는수용체와결합하

중추신경계의활성화다낑한행동변화나생리반응들을

타내게된다.1-5) LP S수용체와결합일어나는여러세포

생화학적 반응들이 알려져 있는데 inducible nitric oxide synthase(iNOS)의 mRNA단백질의 합성유도에 의한 NO

증가가 알려져 있다.1} NO iNOS 이외의 다른 NOS

isoform들에 의해서도 생성되는데 NOS isoform NOS 1

#본 논문에 관한 문의는 저자에게로 (전화) 02-3277-3021 (팩스) 02-3277-3051 (E-mail) [email protected]

(neuronal NOS; nNOS), NOS 2(iNOS), NOS 3(endothelial

NOS; eNOS)의종류로분류되며 이들은모두 대략 300 kDa

protein homodimer이다. 생성된 N O guanylyl cylase (GC)를활성화시켜서 cGM P증가시킴으로서 신경세포 중요한기능을 매개할있다.6〉

세포 Ca2+ 증가께따른 NO S활성화에 의해 Nᄋ가생성 세포높은농도의 Ca2+에 의해 superoxide anionCOj') hydrogen peroxide(H202)의 생성이 함께이루어질 있다.

H202와 예 는 반응하여 매우 반응성이 강한 hydroxyl free

radical( • OH)을 형성하게 된다. Nᄋ는생성된 예 와 반응해서 peroxynitrite anion(ONOO ) 산소 유리기도형성하게 되고이것 강력한산화제이므로 protonation되어 . OH . 1나ᄋ2 환된다. 과량생성된0; 는 항산화효소인 superoxide dismutase (SOD), catalase glutathion peroxidase 등에 의해 H202를

(2)

348 배미경 ■ 최신규 • 고문정 • 하헌주 • 김화정

무해한 H2ᄋ로변화되어 제거되는데 과정에서 유독한 응성산소유리기들( • OH, R 0 0 •R 0 ■)부생하여 생체 조직에독성을나타내게 되며, 특히 여러신경계의 질병들의 , 간접적인 원인이되어 궁극적으로노화신경계질환들의 기전과연결되어지기도한다.7’8) 특히 뇌는반응성 산소유리기 의한손상이 신체의 다른어느기관보다크게 나타나는데 이유는순환하는 02의20%가뇌에 집중되어 있고, 세포막에는 불포화지방산즉쇄 (polyunsaturated fatty acid side chain)가 부하며, 반응성 산소유리기 반응의촉매인 철이풍부하기 때문 이다. 특히중추신경계에서의 NO매개하는신경독성은NOCT 관련된신경세포사멸이 원인이 된다고알려져 있으며 전으로서 지질 과산화(lipid peroxidation) 유도됨으로써 생체 막의 기능이 상실되거나, 또는 DNA손상되어 DNA 치유 소인 poly(ADP-ribose)polymerase(PARP)가활성화되고이어서 에너지가고갈됨으로서 세포사멸이유도되어 일어난다고제시되 왔다.9) 따라서 L P S 혹은 cytokine작용하면 glial cell에서 NO생성되므로손상시 nNOS iNOS억제혹은불활성 화가신경보호 작용을 일으킬 있다고 가정할있으나

pathway차단시켰을 뇌에서 산화적스트레스에 어떤영향

나타내는 지에 대한연구는 많지 않다.1M2) NOS 저해제인

N-methyl-L-arginine methyl ester(N AM E)를쥐에경구:투여 뇌에서 항산화효소인 glutathione peroxidase활성이증가되고 간에서도 전체 glutatione 농도가 중가되었고,13) N A M E in w'fro에서조직에 처리하였을 NO superoxide 형성이 소됨14비 보고된 있다. 앞에서 언급한대로 NOS의해 도하게 생성된 NONOCT형성하나적당히 생성된 NO G C 활성화하여 cGM P형성한다. GC 억제 그에 따른

cG M P 감소효과가뇌의산화적 스트레스에 미칠있는영향

대해서도많은보고가없다.

Melatonin serotonin전구물질로하여 합성되어포유동물

송과체에서 분비되는호르몬으로외부의 빛을생체내의 호로전환시켜포유동물의 계절과밤낮을주기로변화하는행동 신체의변화를나타내도록역할을지닌내분비성물질로서

려졌지만1517) melatonin강력한 항산화작용에 대한연구결과

들이 많이보고되었다. Melatonin강력한항산화효과에 의해 빈응성산소유리기로부터 DN A,단백질과세포막지질등이 호되고,11’18) 최근에는산화적 스트레스를유발하는 safrol, kainic acid, 방사선(radiation) L P S 둥에 의한독성이 억제된다고 고되었으며,19-23) 또한 glutamate 수용체활성에의한세포내로

Ca2+의과도한유입이 억제되며, NOS 저해됨으로서 NO

형성이 억제된다는것이 알려진 있다.24) Poeggeler 25>

의하면 중추 흥분성 아미노산 수용체의 활성화에 의해

melatonin합성이 억제되어H해독의 속도가감소되고,

노화가 진행되면서신체내의 melatonin농도가점점감소되는

것과여러산화적 스트레스에 의한질병에 점점취약해지는 상과는무관하지않을.것이라는의견을제시하였다.

연구에서는 L P S복강투여에 의한부위(선조체,

해마, 대뇌피질)의 ROS 생성지질과산화등의산화적스트

레스의 변화를조사하고 L P S유도되는산화적 스트레스

화에 대한 NOS 저해제, GC 저해제 새로운 fluorinated- phenylamino-quinone 합성체로서 GC억제 NOS 억제작용을 모두나타내는것으로밝혀진 O Q 2126) 화합물과 melatonin 향을알아보기 위하여쥐의 선조체내로이러한약물들을 투여하여조사하였다.

실험 방법

시약약물

L P S(£. coli serotype 026; B26, phenol extraction) NOS 저해제인 N A M E melatonin Sigma(St. Louis, MO, USA) 에서 구입하였고 GC 저해제인 lH-[l,2,4]oxadiazolo[4,3-a]

quinoxaline-l-one(ODQ)와 NOS 저해제인 diphenyleneiodonium (DPI)는 Tocris cookson(Bristol, U K)에서 구입하였고 florinated phenyl amino quinone 약물인 6-N-[(2,3,4-trifluorophenyl) amino]-5,8-quinolinedione(OQ 2 1)은이화여자대학교대학원 학과정량분석실에서 합성된 것을시용하였다. LPS생리 염수(0.9% NaCl)에 녹여 사용하였으며 melatonin, NAM E, ODQ, DPI 각각 dimethylsulfoxide(DMSO) 녹여 stock

solution제조하여시용매일 생리식염수를이용하여용매

D M S 0최종농도가 10%가되지않도록 희석하였다. 마취 제인 pentobarbital한림제약(서울, 한국)에서 구입하여사'용하 였다.

ROS를 측정하는 실험에서 HEPES, sucrose와 형광의 정량 물 질로 사용한 2\7’-dichlorofluorescin(DCF)는 Sigma(St. Louis, MO, USA)에서 구입하였고 hydrogen peroxide sensitive dye DCFH diacetate(DCFH-DA)는 molecular probe(Eugene, Oregon, USA)에서 구입하였다. Lipid peroxidation즉정을위해서사용 2-thiobarbituric acid(TBA), trichloroacetic acid(TCA)와 정량 물질로 사용된 ll33-tetaethoxypropane(TEP)액은 Sigma(St. Louis, MO, U SA)에서구입하였다.

실험동물

Sprague Dawley(SD)계의 수컷 쥐를실험 동물(제일동물,서

울)에서 구입하여 온도 2 0 ~ 2 2 oC, 습도 50 ~ 6 0%와조명시간이 12시간으로조절된실험동물실에서 고형사료 (삼양유지)와물을

자유롭게 섭취하게하면서 실험에 적당한체중인 2 0 0 ~ 3 0 0 g

때까지일주일이상사육적응시킨, 실험에시용하 였다.

(3)

LPS-유도 산회스트레스에 대한 이어 와 GC 저해제들의 작용 349

뇌의선조체복강내로의약물투여와조직적출 부위의 조직에서 L P S의해유도되는 RO S 생성과 과산화정도를조사하기위해서 먼저동물실에서 적응시킨

쥐복강내로 LPS투여하였다. 선조체로투여된약물작용

조사하기 위한실험에서는 pentobarbital sodium(40 m g^g)

마취시킨 L P S투^하고 마취시킨뒤,면도하여수술

위의 털을제거한 stereotaxic 기구(Various, USA)고정

시킨, 두피를 제거하고두개골 접합부 bregma점을

준으로 anterior 1.2 mm, lateral±2.5 mm, ventral 6.5 mm 위치 양측 선조체부위에 23 gauge disposable needle 구멍 뚫은 뒤에 Hamilton(Nevada, USA) hamilton 70 1N syringe(10 )이용하여 시험 약물들을투여하였다. GC 저해 0DQ(2 nmoW2 yd 10% DMSO/hemisphere), NOS 제인 DPI(2 nmole/2 |i/ 10% DMSO/hemisphere) NAM E(2 nmole/2 yd 10% DMSO/hemisphere), flurinated quinone 물질 Q 21(6 nmole/2 \d 10% DMSO/hemisphere), melatonin (100 nmole/2 yd 10% DMSO/hemisphere) 또는 조액 10%

DMSO(2m/) saline(2 네를 동일한 선조체 부위 0.5|o//min 속도로주입하였다. L P S 또는 saline 복강투여후6 뒤에단두하여두개골을 제거하고뇌를적출한후,뇌조직을 부위별(선조체,해마, 대뇌피질)로얼음상에서 신속히게분리하 액체 질소통에 신속히 옮겨 보관하였다.

R O S측정

쥐의 대뇌 선조체의 약물의 주입 후의 R O S # 측정하기

위하여 2',7'-dichlorofluorescin diacetate(DCFH-DA)사용하 였다. 분석은 처음에 Keston and Brandt27 의해 고안된 방법으로서 수용액에서 측정이 가능하며 원리는 D CFH -D A 형광을띠지 않는안정한물질인데 alkaline hydrolysis의해 deesterify 되고 역시 형광을 않는 D C F H 성된다.

D CFH RO S반응하여 빠른 속도로 산화되어 매우 형광을

띠는 D C F으로 되며 형광을 측정하는 원리이다. 액체 질소

보관된 선조체륜 꺼내 신속히 무게를 재고무게의 1 5

용량의 0.32 M sucrose 용액음 가하여 homogenizer(Wheaton ’ millville, NJ, USA)분쇄한 저온 원심분리기(54 17R ; Eppendolf사,Hamburg, Germ any)이용하여 4°C, 20800 ^ g 에서 10분간 원심 분리하였다. 다음 pellet 만유 취하여 sucrose동량의 H E P E S buffer(PH 7.4)가하여 resuspen­

sion 시켜대략 0 .0 7 g/m/ 농도가 되도록 하였다. 25 |o/

suspension 탄올로 조한 12 .5 mM stock solution 62.5 nM되도록 DCFH -DA incubation하였는데 이때는 최종부피가 lm Z되도록 H E P E S buffer넣어 3시간동안 370C에서 시행하였다. 이후 96 well plate각각 2 0 0여씩 excitation wavelength 485 nm (bandwidth 20 nm), emission

wavelength 530 nm(bandwidth 2 5n m ) 에서 florom eter F L - 600(Bio-Tek, VT, U SA)이용하여 형광을 측정하였다. 획의 autofluorescence DCFH-DA 넣지않은 blank 실험을 함으로써보정하였고 RO S 정량은 D C F검량선(0 .0 5 ~ 1.0 ^M ) 조직의 단백질 정량으로부터 계산하여 nmol DCF/h/m g protein으로표시하였다.28)

지질고 ^화 측정

L P S 등에 의해서 생성되는 R O S의해 지질 과산화(lipid

peroxidation)일어난다. 따라서 산화적 스 레 스 의 척도로

과산화의측정을하였으며 측정은 Baegue 295방법에

따라측정한 T B A test따랐다. 이는 실험동물의 조직에서

과산화반응을측정할널리사용되는민감한분석 방법으 조직 homogenate공기와의 접촉하에 incubation

과산화 반응시 생성되는 이차 생성물인 malondialdehyde

(MDA) alk-2-enal 등과 같은 물질과 T B A서로 반응하여

적색 색소를형성하게 되이 이를 5 3 2 n m에서흡광도를 측정하

방법이다.30’31)

액체 질소에 보관된 선조체를 꺼내 신속히 무게를 측정하고 조직 15 0 mg P B S(P H = 7.4 ) 2 m/비율로 넣어분쇄시켰다. 렇게마련된 선조체 homogenate 10 j i , 10% T C A 500 pi, 0.6% T B A 500 P B S 완충액 490 p/를 넣고 혼화시

100oC에서 1시간동안 가열시켰다. 경우공기와의접촉을

있도록 반응용기의 뚜껑은 열어두었다. 반응얼음상 (0oC)에서 일마동안식힌 800 |a/ n-butyl alcohol첨가하

혼합액을 섞이도록혼화한 4000 rpm에서 5분간 원심

분리히여 96 well plate증으로분리된용액 red pigm ent 추출된 상등액을 200 n/취하여 54 0 n m Bio-Rad사의 Benchmark microplate reader(Richmond, CA, U S A )ir 이용하 흡광도를측정하였다. 정량할때의 기준물질로는 T E P 량곡선 (calibration curve)얻어 시료-2 * 정량하고 단백질 분석 하여보정해주었다. 단백질 정량은표준물질로서 B S A 용하여 Low ry법321으로시행하였다.

자료분석

실험 data분석은평균값에대해 ANOVA시행하여 p <

0.05것음유의성 있는결과로하였다.

결과 및 고찰

L P S복강투여에의해 유도된산화적 스트레스

L P S복강 내로용량 별로투여했을 조직 선조체

(striatum), 해마(hippocampus), 대뇌피질(cerebral cortex) 용량의존적으로 RO SS} 지질과산화이 증가됨을 있다

(4)

350 배미경 • 최신규 • 고문정 * 하헌주 * 김화정

Fig. 1 - The changes of ROS formation administered LPS i.p. in brain. (A) In striatum, (B) in hippocampus, and (C) in cerebral cortex, LPS increased dose dependency ROS formation. Rats were sacrificed by decapitation 6 hrs after LPS administration (i.p) were done. Values represent mean±S.E.M. * <0.05 relative to saline administration (0 mg/kg).

(Figs. 1 & 2). 복강내에 LPS lm ^ k g용량으로투여했을 때,선조체에서 RO S증가가 대조군(0.9% NaCl)에비해 1.4 증가하였으나유의할만한수준은아니었고2 mg^kg농도 투여하였을 2정도높게 유의성 있게 중가하였다(Fig.

1A ). 해마에서 역시 나징의 복강투여에 의해 농도의존적으로

ROS2 mg/kg농도로투여한경우대조군에비해 2가량

유의성 있게증가되었으며 해마에서의수치는선조체의 수치와 유사하였다(Fig. IB ). 대뇌피질에서도 L P S복강투여에 대해서 농도 의존적으로증가하여 RO S2 mg/kg 투여에 의해서 2 가량높게유의성있게증가하였다(Fig. 1C ). 따라서 RO S L P S 농도 의존적으로증가하였음을확인하였다. 지질 과산화 농도의존적으로증가하여 선조체에서 L P S 2 mg/kg투여

Fig. 2 - The changes of lipid peroxidation administered LPS i.p. m brain. (A) In striatum, (B) in hippocampus, and (C) in cerebral cortex, LPS increased dose dependency lipid peroxidaton. Rats were sacrificed by decapitation 6 hrs after LPS administration (i.p) were done. Values represent mean±S.E.M. * <0.05 relative to saline administration (0 mg/kg).

했을대조군의 1.5증가하였으나유의성을 나타내는농도

아니었고(Fig. 2A), 해마에서는나징의 1 mg/kg농도에서 1.5, 2 mg/kg농도에서 1.7높게유의성있게중가하였 (Fig. IB). 대뇌피질에서는 L P S 1 mg/kg농도에서 1 . 1 배,

2 mg/kg농도에서 1.5가량유의성 있게중가하였다(Fig. 2).

이러한결과로부터 LPS복강내로투여시 L P S뇌의 blood brain barrier(BBB)를통과하여 조직에 RO S지질과산화 증가의 산화적스트레스를농도의존적으로 나타냄을 었다. 연구의이러한결과는 Sew erynek 등22’23)의 L P S 투여로뇌,폐,간에서 지질과산화가증가되었다는보고와 에서 항산화작용을 가진 glutathione 농도가 증가하고간과

뇌에서 glutathione peroxidase활성의 증가되었다는보고가

A

* B *

* C *

14 12 108

6

4

2

109 8 7 6 5 4 3 2

9 8

7 6

5 4

3 2

UOOJ

Q. a>O^UEvaE/

.E CDQall

a)E /va2OEUulsOJa

n)OD^UEvE/

A

76

54

32

10

.0 .0.0 .0 .0 .0.0 o.

o.o.

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o.o.

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u _o q OE U

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07 06 0504 0302 01G o.

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c * 0.05 0.04 0.03 0.02

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(5)

LPS-유도산회스트레스에대한 NOS GC 저해제들의작용 3 5 1

있었으므로실험의 결과도 이러한 L P S인한산화적스트 레스의중가결과와일치한다.

L P S의해유도된 R O S 증가에대한 N O S 저해제와 G C 저해 제의영향

NO/cGMP 경로는세포내주요 생리기능에관여하므로

로가 저해되면 뇌의 기능손상이 유발되고반대로과도한 NO

생성에 의해 유도되는 R O S S 인한세포내 산화적 스트레스가

NOS 억제에 의해서 감소될 있다고예측할 있다. 그러나

이러한경로가뇌의 산화적스트레스반응에 어떠한역할을

하는지에대한연구는많이보고되어 있지 않다. 따라서 LP S

의해유도된 ROS 생성증가효과에 대한 NOS 억제제 GC 제제들의 영향을알아보기 위하여 약물을뇌의 선조체 내로 투여하여 조사하였다. 사용한약물인 ODQ처음으로밝혀 선택적이고강력한 soluble GC 저해제이고335 DPI NOS NADH oxido-reductase 같은 flavoenzyme 저해제이다. N A M E NOS 기질인 arginine구조 유사체로서 작용하여

NOS 저해하는약물이다.

먼저쥐를 pentobarbital마취시키고대조군혹은 L P S

강으로투여한 stereotaxic 기구에 고정시켜서 시험 약물들을

선조체로투여하고6시간뒤에단두,뇌의 선조체를 적출하 였다. 실험에서는조직으로의약물의 주입없이 LP S

□ CONTROL (I.p.)

■ L P S (I.p .) *

control ODQ DPI NAME

Fig. 3 - Effects of intrastriatal treatement of ODQ, DPI or NAME on LPS-induced ROS generation. Rats were anesthetized and intrastriatally injected with ODQ (2 nmole/2 \d/

hemisphere), DPI (2 nmole/2 (j//hemisphere) or NAME (2 nmole/2 (^//hemisphere) right after the treatment (i.p.) of saline (control) or LPS (2 mg/kg). Rats are sacrificed 6 hr after i.p. treatment. Striatal homogenates were prepaired for ROS assay. None increased significantly ROS production.

* P <0.05 relative to control of control (i.p.). Values represent mean±S.E.M.

투여시의 RO S 생성을측정한앞의실험과비교할 점이 있었

는데마취제 자체가 RO S생성에 미치는영향과 약물을녹일

사용하였던 용매효과에 대한것이었다. Fig. 3에서 듯이 대조군과 LP S투여한모두 pentobarbital투여하지 않았던선조체에서 p en to b a rb ita l 투여했을대조군은 3 5 .1% , L P S투여하였을 경우는 70.2%의 RO S 생성 증가를 보였다.

Sew erynek 동13’22’23)에 의한 보고에서도 쥐에 복강으로

phenobarbital투여했을간과뇌에서 산화적 스트레스가

가된것이관찰된있다. 따라서 pentobarbital 자체가내에 작용하여 선조체에서 ROS중가시켰을것으로사료된다. 약물 ODQ DPI용매로서 10% DM SO사용하였고 DM SO 의한산화적 스트레스에 대한영향을살펴본 결과복강으로 대조군과 L P S투여한 경우 모두에서 10 % D M SO 처리는

선조체에 RO S 형성에영향을미치지 않았다. L P S복강투

(Fig. 1 A)에서와마찬가지로마취시킨 L P S 복강투여했

역시 대조군을투여한것에비하여 R O W 유의성있게

가된것을 관찰하였다. 그러나마취제를투여한경우 L P S

RO S 생성효과가미취제를■¥여하지 않은 경우보다약간

나타났다. , 마취제를투여하지않았을 (Fig. 1A)에는 L P S

2 mg/kg의해서 100%가증가되었으나마취제를투여하였을

경우는선조체에서 대조군과비교시 30%의증가효과가

찰되었다. 이런 현상은 pentobarbital의해이미 산화적스트레

스가형성되었으므로 L P S의한산화적 스트레스증가반응이 둔화되어 나타난것으로추정된다.

복강으로 L P S투여한군과대조군동물의 선조체로 ODQ,

DPI 또는 N A M E약물을주입했을 RO S 생성에변화가 타나지 않았다(Fig. 3). 대조군동물에서 L P S같이 RO S 생성 증가시키는 자극이 존재하지 않았을 때는 ODQ, D PI

N A M E 모두약물자체가 ROS 생성에아무 영향도미치지 않은

것으로 생각된다. L P S 처치에 의해 NOS 유도에 의한 NO 생성 증가되고따라서 GC활성화 되리라예측되는상태에서도 NO S저해또는 G C저해가 L P S유도된 RO S증가에

영향을주지못한이유는 L P S의해서 N O S 뿐만 아니라다른

여러 세포내단백질중 cytokine 생성이중가되는 연쇄빈움이

어나고 이에 따라 NOS 이외의 염증 반응 관련 단백질들(e.g.

cyclooxygenase)의발현증가둥의 NOS 경로이외의다른 경로

로도 RO S생성할있으므로실험에사용된 약물농도에

서의 NOS 저해작용만으로는 L P S의한최종적인 RO S 생성 변화에 영향을나타내지 않는것으로설명되어 수도 있다. 러나약물들의작용을명확히 확인하기 위해서는이들

물들의 농도를 변화시켜 RO S 생성변화를비교해 보는실험

아니라연구에서 조사된 1투여에 의한 단시간 (6시간) 효과이외에 24시간이상으로실험하는 것이 필요하리라 겨진다.

수치

Fig.  2 -  The  changes  of lipid  peroxidation  administered  LPS  i.p.  m  brain.  (A)  In  striatum,  (B)  in  hippocampus,  and  (C)  in  cerebral  cortex,  LPS  increased  dose  dependency  lipid  peroxidaton
Fig.  3 -  Effects  of intrastriatal  treatement  of ODQ,  DPI  or  NAME  on  LPS-induced  ROS  generation
Fig.  4 -  Effects  of  intrastriatal  treatement  of  OQ21,  melatonin  and  OQ21  with  melatonin  on  LPS-induced  ROS  generation

참조

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