유산균 발효 식혜의 품질 특성 및 기능성 평가
오병민1․전현일1․오현화1․조승화2․정도연2․김영수1․송근섭1
1전북대학교 식품공학과
2(재)발효미생물산업진흥원
Quality Characteristics and Functional Evaluation of Sikhye Fermented by Lactic Acid Bacteria
Byung-min Oh
1, Hyun-Il Jun
1, HyeonHwa Oh
1, Seung-Wha Jo
2, Do-Youn Jeong
2, Young-Soo Kim
1, and Geun-Seoup Song
11
Department of Food Science and Technology, Chonbuk National University
2
Microbial Institute for Fermentation Industry (MIFI)
ABSTRACT This study was carried out to investigate the effects of lactic acid bacteria on the quality and functional characteristics of Sikhye. Of the five lactic acid bacteria strains isolated from Makgeolli, lactic acid bacterium Lactobacillus plantarum LM001, showing the highest total acidity, was selected for the production of Sikhye fermented by lactic acid bacteria (SFLAB). Soluble solids, reducing sugar, pH, total acidity, viable cell count, and total phenolic content of SFLAB were 9.38∼11.30°Brix, 68.39∼89.11 mg/mL, 2.80∼4.54, 0.01∼0.52%, 6.33∼8.43 log CFU/mL, and 0.64∼0.68 mg/mL, respectively. As lactic acid fermentation progressed, soluble solids, reducing sugar, pH, and total phenolic content increased, whereas total acidity and viable cell count decreased. The major organic acid and free sugar contents of SFLAB were lactic acid (144.66∼961.63 mg%) and maltose (8,504.01∼6,503.92 mg%), respectively. Lipase inhibitory and antimicrobial activities for Bacillus cereus of SFLAB increased as lactic acid fermen- tation progressed. These results suggest that SFLAB may be useful as a potential functional food for enhancing health.
Key words: Sikhye, lactic acid bacteria, quality characteristics, lipase inhibition activity, antimicrobial activity
Received 18 May 2020; Accepted 20 July 2020
Corresponding author: Geun-Seoup Song, Department of Food Science and Technology, Chonbuk National University, Jeonju, Jeonbuk 54896, Korea
E-mail: [email protected], Phone: +82-63-270-2568
Author information: Byung-min Oh (Researcher), Hyun-Il Jun (Researcher), HyeonHwa Oh (Researcher), Young-Soo Kim (Pro- fessor), Geun-Seoup Song (Professor)
서 론
쌀은 옛날부터 식생활 문화에서 주식으로서 우리 민족과 함께하였으나, 현재는 국내 쌀 소비량이 1998년 99.2 kg에 서 2018년 61.0 kg으로 20년 만에 약 38.2 kg이 감소하는 등 해마다 감소하고 있어 사회적 문제가 되고 있다(Lee, 2019). 쌀 소비량을 증가시키기 위해서는 주식보다는 편리 하게 섭취할 수 있는 기능성 강화 가공식품으로 소비하는 것이 효과적이라고 판단된다(Shin과 Lee, 2018).
유산균은 당을 이용하여 젖산을 생성하는 균으로
Lacto- bacillus
,Lactococcus
,Enterococcus
,Bifidobacterium
등이 있으며 유제품, 김치, 장류 등과 같은 발효 식품 제조에 대표적인 starter로 이용되고 있다(Ahn 등, 2006). 젖산 발 효는 항비만, 항암, 항산화, 병원성 미생물에 대한 항균 등의다양한 기능성 성분을 증진시키고 pH를 낮추어 식품의 저장 성을 높이는 역할 때문에 육류, 야채, 유제품 등에 많이 이용 되고 있으며, 최근 아시아에서는 곡류에 미생물을 발효하는 곡류 발효 식품과 다양한 전통 발효 식품 등의 관심이 높아 지고 있어 곡류에 유산균을 발효하는 식품에 대한 연구가 필요하다(Nout, 2009).
식혜는 멥쌀이나 찹쌀을 증자하여 쌀에 함유된 생전분을 호화전분으로 전환시킨 후 엿기름 추출액의 amylase로 호 화전분을 limit dextrin, maltose, glucose 등으로 당화시켜 특유의 풍미와 감미를 증가시킨 우리나라의 대표적 전통 음 료이다(Park, 2006; Lee 등, 2018). 식혜의 수용성 고형분 은 쌀의 종류나 첨가량, 엿기름의 첨가량 및 당화시간에 따라 수용성 고형분의 함량이 결정되는데 일반적으로 약 10°Brix 이상으로 알려져 있다(Jeon과 Kim, 1998; Song과 Hwang, 2016; Cho와 Joo, 2010). 국내 음료시장이 보다 고급화되 고 있는 상황에서 국내산 쌀에 건강기능성이 잘 알려진 유산 균을 접목하여 새로운 형태의 기능성 강화식품의 개발이 가 능할 것으로 판단되지만 아직 유산균 발효 식혜(
Sikhye
fer- mented by lactic acid bacteria, SFLAB)에 관한 연구가 미비한 상황이다(Choi와 Son, 1992). 이에 본 연구에서는 젖산 발효를 통해 기능성이 향상된 쌀 가공제품을 개발하고자 막걸리에서 분리한
Lactobacillus plantarum
을 이용하 여 SFLAB를 제조한 후 이들의 이화학적 특성 및 기능성을 평가하였다.재료 및 방법
실험재료 및 기기
본 연구에서 식혜 제조에 사용된 쌀(우렁논 쌀)은 전북 순 창지역에서 2018년도에 재배한 우렁논 쌀을 순창농산물특 산품 직판장에서, 엿기름은 경남 함양군 함양농협 가공사업 에서 2018년에 제조한 가공품을 함양농협에서 구입하여 사 용하였다. 한편 유산균 분리에 사용된 4종의 쌀막걸리는 강 원도 영월군에 있는 영월 양조장의 영월 동강 생막걸리, 강원 도 정선군에 있는 농업회사법인 정선명주의 곤드레 생막걸 리, 강원도 동해시에 있는 낙천 주류의 지장수 호박 생막걸 리, 강원도 정선에 위치한 정선아리랑 협동조합의 황기 생막 걸리를 전북 전주의 지역마트에서 구입하여 사용하였다.
본 연구에서 사용된 glucose, maltose, fructose, oxalic acid, lactic acid, pyroglutamic acid, gallic acid, ascorbic acid, 2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl(DPPH), 2,2′-azino- bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid(ABTS)는 Sigma-Aldrich Co.(St. Louis, MO, USA)에서 구입하였다.
유산균주 분리 및 선발을 위한 배지는 lactobacilli MRS agar와 lactobacilli MRS broth, 항균 활성을 위한 배지는 nutrient agar(NA)와 nutrient broth(NB), 일반세균수 측정 배지는 plate count agar(PCA)를 Difco Co.(Sparks, MD, USA)에서 구입하였으며, 그 밖의 시약들은 analytical 및 HPLC grade를 사용하였다.
본 연구에 사용된 균주로는 유산균 대조군으로 사용된
Lactobacillus rhamnosus
GG,Lactobacillus plantarum
SRCM 101222를 (재)발효미생물산업진흥원(Microbial In- stitute for Fermentation Industry(MIFI), Sunchang, Ko- rea)에서, 항균 활성에 사용된 식중독 유발 세균은 그람양성 (Bacillus cereus
KACC 10097,Bacillus cereus
KACC 13064,Bacillus cereus
KACC 13066) 3종과 그람음성 (Escherichia coli
KACC 10115) 1종을 한국농업미생물자 원센터(Korean Agricultural Culture Collection(KACC), Jeonju, Korea)에서 분양받아 사용하였다.본 연구에 사용된 기기로는 배양물의 균체를 제거하기 위 해 소형 원심분리기(CT15RE, Hitachi Koki Co., Ltd., To- kyo, Japan)와 대형 원심분리기(CR21, Hitachi Koki Co., Ltd.), 균주 배양을 위하여 정치 배양기(VS-1203PI, Vision Scientific Co., Ltd., Daejeon, Korea)와 진탕 배양기(SI- 300R, Jeio Tech Co., Ltd., Daejeon, Korea)를 사용하였 다. 식혜 제조를 위해 증자기(DAS-30, Dong-A, Changwon, Korea)와 제분기(single type stainless roller, Shinpoong Eng. Ltd., Gwangju, Korea)를 사용하였다. 품질 분석에서 pH는 pH meter(SevenMulti, Mettler-Toledo GmBH,
Giessen, Germany), 수용성 고형분 함량은 당도계(PAL-1, Atago Co., Ltd., Tokyo, Japan), 색도는 색도계(Chroma meter CR 400, Konica Minolta, Tokyo, Japan), 흡광도는 분광광도계(UV-2550, Shimadzu, Kyoto, Japan), 유기산 및 유리당은 UV-VIS detecter(SPD-10A, Shimadzu Co.) 를 장착한 HPLC system(Shimadzu Co.)을 이용하여 측정 하였다.
유산균의 분리 및 동정
쌀막걸리 100 μL를 lactobacilli MRS broth 1 mL에 현탁 하고 희석(106~107)하여 lactobacilli MRS agar에 도말한 후 정치 배양(37°C, 1일)하였다. 배양된 균주의 colony를 임 의선별 및 획선도말 하여 single colony를 분리하였다. 분리 된 균주는 25% glycerol을 첨가하여 -80°C에 보관하며 사 용하였다. 분리된 균주의 동정은 16S rRNA 유전자의 염기 서열을 위해 universal primer 27F(5′-AGAGTTITGAT CC TGGCTCAG-3′)와 1492R(5′-GGTTACCTTGTTAC GA CTT-3′)을 사용하여 유전자를 증폭한 다음 PCR 산물 을 정제한 후 염기서열을 해독하였다. 이 염기서열을 이용하 여 BLASTN search(Zhang 등, 2000)와 Ribosomal Data- base Project(RDP, ver11)의 SeqMatch program에서 서 열 일치도가 높은 표준균주의 16S rRNA 유전자 염기서열 을 얻었고, 염기서열 간의 상호비교를 위해 CLUSTAL W (Thompson 등, 1994)를 사용하였다. 계통도 분석은 균주 들의 16S rRNA 유전자 염기서열들을 정렬하고 크로마토그 램의 비교와 수작업으로 gap이 최소화되게 보정한 후 Tamura-Nei model에 기초한 Maximum Likelihood 방법 (Tamura와 Nei, 1993)을 사용하였고, 각각의 계통수에서 각 분자에 대한 통계적 신뢰의 산출을 bootstrap을 1,000회 설정하여 MEGA program(Tamura 등, 2011)을 사용해 계 통분석 tree를 작성하였다.
식혜 제조
증자 쌀가루는 쌀 8 kg을 3회 수세하고 정제수 16 L를 첨가하여 4시간 수침한 후 30분간 탈수한 다음 roll mill을 이용하여 2회 제분한 쌀가루를 면포로 덮은 후 증자(0.3 pa, 20분)하여 제조하였다.
엿기름 추출액은 엿기름 4.5 kg에 정제수 25 L를 넣고 2시간 동안 침출시킨 후 착즙기로 착즙하여 제조하였다.
식혜는 증자 쌀가루에 엿기름 추출액 25 L와 정제수 25 L를 첨가하여 당화(60°C, 6시간)시킨 후 100°C에 5분간 가 열하여 제조하였다. 제조된 식혜는 원심분리(3,000 rpm, 15 min, 4°C)하여 상등액을 모아 감압여과하고 -20°C에서 보관하면서 사용하였다. 이때 제조된 식혜의 수용성 고형분 은 10.51°Brix였다.
우수 유산균 선정
쌀막걸리에서 분리된 유산균 5종(
Lactobacillus planta-
rum
LM001,Lactobacillus plantarum
LM002,Lactoba- cillus fermentum
LM003,Lactobacillus paracasei
LM 004 및Lactobacillus paracasei
LM005)과 MIFI에서 분양 받은 표준균주 2종(Lactobacillus plantarum
SRCM101222,Lactobacillus rhamnosus
GG)은 1단계(전 배양, pre-cul- ture)로 멸균된 식혜 10 mL에 유산균 1 백금이를 접종하여 진탕 배양(37°C, 120 rpm, 1일)하였다. 2단계(본 배양, main culture)는 파장 600 nm에서 흡광도가 1.00(at 생균수 6.57 log CFU/mL)으로 조절된 전 배양액 1 mL를 멸균된 식혜 100 mL에 접종하여 진탕 배양(37°C, 120 rpm, 2일)하였 다. 유산균 발효 식혜에 적합한 우수 유산균은 각 배양액의 pH, 총산도 및 생균수를 분석하여 선정하였다.유산균 발효 식혜 제조
SFLAB는 선정된 유산균 전 배양액 10 mL를 멸균된 식혜 1 L에 접종하고 진탕 배양(37°C, 120 rpm, 2일)하여 제조 하였다. 유산균 전 배양액은 식혜에 접종하기 전 파장 600 nm에서 흡광도를 1.00(at 생균수 7.22 log CFU/mL)으로 조절한 후에 사용하였다.
이화학적 특성
pH는 pH meter를 사용하여 측정했으며, 총산도는 시료 1 mL에 0.1 N NaOH를 첨가하여 pH 8.3에 도달할 때까지 소모된 양을 lactic acid 함량으로 산출하였다. 수용성 고형 분 함량은 당도계로 측정하였고, 색도는 시료를 일정량 취해 색도계를 이용하여 Y=85.6, x=0.3172, y=0.3241인 표준 백색판(standard white plate)으로 보정하여 L*, a* 및 b*값 을 측정하였다.
총 페놀성 화합물 함량(total phenolic content, TPC)은 ISO 14502-1(2005)의 방법을 이용하여 측정하였다. 시료 1 mL에 10% Folin-Ciocalteu’s phenol reagent 5 mL를 첨가하여 3분간 반응시킨 후 7.5% Na2CO3 4 mL를 첨가하 였다. 이 반응액을 암소에서 반응(23°C, 1시간)시킨 후 765 nm에서 흡광도를 측정하였으며, 총 페놀성 화합물 함량은 gallic acid를 표준물질로 하여 시료 mL당 mg gallic acid로 나타내었다. 정량 분석에 사용된 검량 회귀식은 Y=0.0105X
+0.0033(R2=0.99)으로 gallic acid 농도별 흡광도 값의 결 과에서 산출하여 나타내었다.
환원당(reducing sugar)은 Park과 Lee(2005)의 방법을 이용하여 측정하였다. 시료 1 mL에 3,5-dinitrosalicylic acid reagent 3 mL를 첨가하여 순차적으로 중탕(100°C, 5분) 및 냉각(5°C, 5분)한 용액을 540 nm에서 흡광도를 측 정하였고, 환원당은 glucose를 표준물질로 하여 시료 mL당 mg glucose로 나타내었다. 정량 분석에 사용된 검량 회귀식 은 Y=0.0052X-0.2557(R2=0.99)로 glucose 농도별 흡광 도 값의 결과에서 산출하여 나타내었다.
생균수(viable cell counts)는 Choi 등(2014)의 방법을 이용하여 측정하였다. 시료를 적절한 희석배수로 희석하여
0.1% bromo phenol blue를 첨가한 MRS agar에 100 μL를 도말하였다. 도말한 MRS agar를 정치 배양(37°C, 24시간) 하여 30~300개 사이에 형성된 집락수를 계수한 후 log CFU/mL로 나타내었다.
HPLC를 이용한 유기산 및 유리당 측정
유기산 및 유리당은 Kim과 Song(2002)의 방법으로 측정 하였다. 분석을 위해 시료를 희석하여 Sep-pak C18 car- tridge(Waters, Milford, MA, USA)에 통과시킨 다음, 0.22 μm membrane filter(Futecs Co., Ltd., Daejeon, Korea) 로 여과하여 HPLC system으로 측정하였다. 분리된 유기산 및 유리당의 각 peak는 동일 조건에서 분석한 표준물질 mix- ture의 peak 면적 비율과 retention time을 비교하여 함량 을 산출하였다. HPLC system의 분석조건은 Aminex HPX 87H Ion Exclusion column(300×7.8 mm, 9 μm, Bio-Rad Labs., Richmond, CA, USA), 이동상은 0.008 M H2SO4, 유속은 0.6 mL/min, column oven 온도는 35°C 및 검출 파장은 210 nm였다.
항산화 활성
DPPH 라디칼 검정은 Kano 등(2005)의 방법을 변형하여 측정하였다. 시료 100 μL에 100 μM DPPH용액 2 mL를 첨가하여 암소에서 20분간 반응시킨 후 515 nm에서 흡광도 를 측정했으며 대조구로는 ascorbic acid를 사용하였다.
DPPH 라디칼의 소거능은 다음의 식에 의하여 얻어진 결과 에서 산출하여 나타내었다.
DPPH radical scavenging activity (%)=
Absorbancecontrol-Absorbancesample
Absorbancecontrol ×100
ABTS 라디칼 검정은 Re 등(1999)의 방법을 이용하여 측정하였다. 시료 30 μL에 ABTS 라디칼 용액 3 mL를 첨가 하여 암소에서 6분간 반응시킨 후에 734 nm에서 흡광도를 측정하였으며, 대조구로는 ascorbic acid를 사용하였다.
ABTS 라디칼의 소거능은 다음의 식에 의하여 얻어진 결과 에서 산출하여 나타내었다.
ABTS radical cation scavenging activity (%)=
Absorbancecontrol-Absorbancesample Absorbancecontrol ×100
환원력은 Oyaizu(1986)의 방법을 이용하였다. 시료 1 mL에 0.2 M phosphate buffer(pH 6.6) 2.5 mL와 1%
K3Fe(CN)6 2.5 mL를 첨가하여 50°C에서 20분간 반응시켰 다. 이 반응액에 10% trichloroacetic acid 2.5 mL를 첨가 하여 원심분리(3,000 rpm, 10분)한 후에 상등액을 취하였 다. 이 상등액 5 mL에 증류수 5 mL와 0.1% FeCl3 1 mL를 첨가하여 700 nm에서 흡광도를 측정하였으며, 대조구로는 ascorbic acid를 사용하였다. 환원력은 시료액 첨가구와 무
Fig. 1. Phylogenetic tree of the strains
isolated from Makgeolli through the maximum likehood method based on the 16S rRNA gene sequences. Bar, 0.01 substitutions per nucleotide position.Bootstrap values are expressed as per- centages of 1,000 replicates.
첨가구의 흡광도 차이로 나타내었다.
항비만 활성
Pancreatic lipase 저해 활성을 측정하기 위해 Decha- khamphu와 Wongchum(2015)의 방법을 본 실험 목적에 맞 춰 일부 변형하여 사용하였다. Pancreatic lipase(100 unit) 를 0.01 M MOPS buffer(pH 6.8, 10 mM MOPS, 1 mM EDTA)에 1 mg/mL 농도로 용해하여 효소액으로 사용하였 고, 기질용액은
p
-nitrophenol butyrate(p
-NPB)를 DMSO 에 용해하여 0.01 Mp
-NPB로 사용하였다. 96-well plate 의 각 well에 기질용액 10 μL, 0.1 M Tris-HCl buffer(pH 7.0, 100 mM Tris-HCl, 5 mM CaCl2・2H2O) 100 μL를 분주한 다음 시료 100 μL를 첨가하여 혼합하였다. 효소액을 50 μL 첨가하여 37°C, 30분간 반응시킨 후 405 nm에서 흡광도를 측정하여 효소반응으로 생성된p
-nitrophenol의 양을 대조군과 비교하였다. Pancreatic lipase 저해 활성은 다음의 식에 의해 얻어진 결과에서 산출하여 나타내었다.Lipase inhibition activity (%)=
Absorbancesample-Absorbanceblank
Absorbancenegative control-Absorbanceblank ×100
항균 활성
항균 활성은 Sohn 등(2008)의 방법을 이용하였다. 계대 배양된 각 식중독 유발 세균 1 백금이를 NB 10 mL에 접종 하여 진탕 배양(37°C, 200 rpm, 18시간)한 후 멸균된 면봉 을 사용하여 NA에 도말하였다. 각 균이 도말된 NA의 표면 에 6 mm paper disc(ADVANTEC, Tokyo, Japan)를 올려 놓고 그 위에 시료를 20 µL 점적하여 정치 배양(37°C, 18시 간)한 후 paper disc 주위로 형성된 clear zone을 측정하였
다. 항균 활성은 paper disc diameter당 clear zone diam- eter 비율로 산출하였다.
통계 분석
각 실험은 3회 반복 실험하여 얻은 결과를 SPSS pack- age program(Version 12.0K, SPSS Inc., Chicago, IL, USA)을 이용하여 평균과 표준편차로 나타내었다. 각 시료 간의 유의성은
P
<0.05 수준에서 one-way ANOVA로 분산 분석한 후 Duncan’s multiple range test로 비교하였다.SFLAB의 이화학적 특성, 항산화, 항비만 및 항균 활성의 상 관성은 Pearson 상관분석을 이용한 이변량 상관분석(bivari- ate analysis)을 실시하여 비교하였다.
결과 및 고찰
유산균 동정 및 우수 유산균 선정
막걸리에서 분리한 5종 균주의 유전학적 안전성을 확인 하고자 16S rRNA 유전자 염기서열을 이용하여 동정한 결 과는 Fig. 1과 같다. 이들 균주는 유산균과 서열 일치도가 99% 이상으로 나타나서 이들을 막걸리에서 분리한 유산균 균주라는 의미로 LM
(Lactobacillus
fromMakgeoli
)으로 명명하였으며 계통도 tree에서 LM001과 LM002는Lacto-
bacillus plantarum
으로, LM003은Lactobacillus fer-
mentum
으로, LM004와 LM005는Lactobacillus para-
casei
으로 동정되었다. 본 연구에서 동정한Lactobacillus
plantarum
,Lactobacillus paracasei
및Lactobacillus fer-
mentum
은 식품의약품안전처 건강기능식품의 기준 및 규격 에 등재되는 등 안전성이 확인된 균주로 식품의 원료로 사용 이 가능할 것으로 판단된다(Kang 등, 2017).Table 1. Fermentation characteristics of lactic acid bacteria in Sikhye
Physicochemicalproperties Strains Fermentation time (day)
0 2
pH
Control4)
Lactobacillus plantarum LM001 Lactobacillus plantarum LM002 Lactobacillus fermentum LM003 Lactobacillus paracasei LM004 Lactobacillus paracasei LM005 Lactobacillus plantarum SRCM101222 Lactobacillus rhamnosus GG
5.51±0.01H1)2) 4.42±0.01B 4.65±0.05D 4.75±0.02E 5.13±0.10G 4.50±0.02C 5.02±0.01F 4.34±0.03A
5.40±0.00F 2.96±0.00A 3.01±0.01C 3.00±0.01B 3.03±0.01D 2.99±0.00B 3.41±0.00E 2.98±0.00B
Total acidity (%)
Control
Lactobacillus plantarum LM001 Lactobacillus plantarum LM002 Lactobacillus fermentum LM003 Lactobacillus paracasei LM004 Lactobacillus paracasei LM005 Lactobacillus plantarum SRCM101222 Lactobacillus rhamnosus GG
0.01±0.00A 0.04±0.01C 0.03±0.01C 0.02±0.01B 0.01±0.00A 0.04±0.00C 0.02±0.00B 0.04±0.01C
0.01±0.01A 0.45±0.01G 0.31±0.00C 0.27±0.01B 0.34±0.00D 0.31±0.01C 0.40±0.01E 0.43±0.01F
Viable cell counts (log CFU/mL)
Control
Lactobacillus plantarum LM001 Lactobacillus plantarum LM002 Lactobacillus fermentum LM003 Lactobacillus paracasei LM004 Lactobacillus paracasei LM005 Lactobacillus plantarum SRCM101222 Lactobacillus rhamnosus GG
ND3) 6.52±0.17AB 6.35±0.19AB 6.55±0.36AB 6.13±0.10A 6.54±0.06AB 6.20±0.25A 6.70±0.37B
ND 8.47±0.41BC 7.72±0.18A 8.75±0.24C 8.17±0.15AB 8.24±0.41B 8.15±0.13AB 8.78±0.23C
1)Values are mean±SD (n=3).
2)Different capital letters (A-H) in the same column indicate a significant difference according to Duncan’s multiple range test (P<0.05).
3)ND is an abbreviation for not detected.
4)Control is not added lactic acid bacteria in Sikhye.
그람 양성의 간균인
Lactobacillus
속 균주들은 식품에 사용이 가능한 안전한 균주(GRAS, generally regarded as safe bacteria)로 곡물, 유제품, 과일, 채소 등을 이용한 가공 제품에 사용하고 있으며 발효과정 중에 식품원료에 함유된 탄수화물을 소모하여 주로 lactic acid를 생성한다(Yoon 등, 2013). 또한 병원성 곰팡이에 대한 생육 저해 활성, 체내의 지방 축적을 저해하는 항비만 효과, 대장 내에서 정장작용 등과 같은 기능성이 있다고 알려지면서 현재는 단순한 식품 의 형태로 소비되기보다는Lactobacillus
속 균주들의 가공 제품인 유산균 제제 형태의 기능성 식품으로 소비되고 있다 (Xie 등, 2011; Lee 등, 2012; Gilliland, 1990; Goldin, 1998).막걸리에서 분리한 유산균(
Lactobacillus
LM001~LM 005) 5종으로 SFLAB(100 mL)를 제조하여 분석한 이화학 적 특성에 관한 결과는 Table 1과 같다. pH는 발효 초기(0 일)에 유산균 무첨가구인 식혜(control)가 5.51, 유산균 첨 가구가 4.34~5.02로 나타나 식혜는 유산균 배양액 첨가로 pH가 감소하였다. 발효 말기(2일)에는 control이 5.40으로 발효 초기와 큰 차이를 보이지 않았으나 유산균 첨가구가 2.96~3.41로 2일간의 발효로 인하여 발효 초기보다 pH는 낮아지는 것으로 나타났다. 한편 총산도와 생균수는 발효 초기에 control이 0.01%와 불검출, 유산균 첨가구가 0.01~0.04%와 6.13~6.70 log CFU/mL이며, 발효 말기에는 con- trol이 0.01%와 불검출, 유산균 첨가구가 0.27~0.45%와 7.72~8.78 log CFU/mL로 나타나 유산균 첨가 및 발효로 인하여 총산도와 생균수가 증가하였는데, 이는 유산균 발효 쌀 음료가 젖산 발효가 진행되면서 pH는 감소하지만 총산도 와 생균수는 증가한다는 결과와 유사하였다(Kim 등, 2011).
이와 같은 현상은
Lactobacillus
속의 젖산 발효(lactic acid fermentation)가 탄소원을 유산균의 증가 및 생장의 영양원 으로 사용한 후에 남아있는 일부 탄수화물들이 Krebs cy- cle을 거쳐 생산된 최종 대사산물(pyruvic acid)을 환원시 켜 lactic acid를 생성하기 때문이다(Liu, 2010). 또한 비교 균으로 사용된 GRAS 균주 2종(Lactobacillus
SRCM101222,Lactobacillus rhamnosus
GG)의 이화학적 특성은 발효 말 기에 pH가 2.98~3.41, 총산도가 0.40~0.43, 생균수는 8.15~8.78 log CFU/mL로 나타나 5종의 유산균과 유사한 경향 을 나타내었다. 따라서 SFLAB 제조에 우수한 유산균주는 발효과정 중에 이상발효 없이 수용성 고형분에 함유된 탄소 원을 효율적으로 사용하여 목적성분인 lactic acid를 최대한 생성하는 균주이기 때문에 총산도 함량이 가장 높은
Lacto-
bacillus plantarum
LM001를 가장 적합한 균주로 선정하 였다(Bhowmik과 Steele, 1994; Behera 등, 2018).Table 2. Fermentation characteristics of Sikhye fermented by Lactobacillus plantarum LM001
Physicochemical properties Fermentation time (day)0 1 2
Soluble solids (°Brix) Reducing sugar (mg/mL) pH
Total acidity (%)
Viable cell counts (log CFU/mL) Total phenolic content (mg/mL)4) Color3) L*
a* b*
11.30±0.01c1)2) 89.11±1.07c 4.54±0.03c 0.01±0.00a 6.33±0.08a 0.68±0.01c 26.79±0.43b 2.12±0.23a 3.22±0.24a
10.22±0.02b 75.06±0.74b 3.01±0.02b 0.42±0.01b 8.30±0.05b 0.65±0.00b 23.27±0.52a 2.01±0.24a 5.30±0.28b
9.38±0.02a 68.39±2.23a 2.80±0.01a 0.52±0.01c 8.43±0.03c 0.64±0.01a 23.84±0.03a 2.06±0.09a 5.40±0.03b
1)Values are mean±SD (n=3).
2)Different small letters (a-c) in the same row indicate a significant difference according to Duncan’s multiple range test (P<0.05).
3)L*, a* and b* mean the degrees of lightness, redness, and yellowness, respectively.
4)Total phenolic content of malt extract solution is 1.26 mg/mL.
유산균 발효 식혜의 이화학적 특성
선정된 유산균(
Lactobacillus plantarum
LM001)으로 식품의 적용 가능성을 확인하고자 SFLAB를 1 L로 제조 (scale up)하여 분석한 이화학적 특성에 관한 결과는 Table 2와 같다. pH는 발효 초기 4.54에서 발효 말기 2.80으로 1.6배 감소하였으나 총산도와 생균수는 발효 초기 0.01%와 6.33 log CFU/mL에서 발효 말기 0.52%와 8.43 log CFU/mL로 52.00배와 1.33배 증가하였는데, 이는 우수 유산균 선정에서 분석한 이화학적 특성과 유사한 경향이었다. 한편 수용성 고형분과 환원당은 발효 초기 11.30°Brix와 89.11 mg/mL에서 발효 말기 9.38°Brix와 68.39 mg/mL로 1.20 배와 1.30배가 감소하였는데, 이는 유산균 발효 식혜가 젖산 발효 중 수용성 고형분과 환원당이 감소한다는 것과 유사하 였다(Shin 등, 2017). 유기산, 아미노산, 페놀성 화합물, es- sential oil 및 유리당 등의 다양한 성분으로 구성된 수용성 고형분 중에서 환원당이 73.20~78.76%를 차지하여 SFLAB 의 주성분은 유리당으로 나타났다(Son 등, 2011). TPC는 발효 초기 0.68 mg/mL에서 발효 말기 0.64 mg/mL로 1.06 배가 감소하였는데, 이는 백미로 제조한 식혜의 TPC가 1.03 mg/mL였으며 홍삼 추출물의 TPC가 젖산 발효 중 TPC 함량이 감소하였다는 보고와 유사한 경향이었다(Song 과 Hwang, 2016; Kang 등, 2013). SFLAB에 함유된 TPC 는 전분이 주성분인 쌀가루보다는 전분 당화를 위해 첨가한 엿기름 추출액의 TPC(1.26 mg/mL)에서 기원하며, 발효과 정 중 TPC 감소는 SFLAB와 ester 결합을 하는 TPC가 es- terase로 인해 유리되어 증가하는 양보다 발효과정 중에서 강한 환원성을 가진 TPC의 phenolic hydroxyl group의 일 부가 산화되어 감소하는 양이 많기 때문으로 판단된다(Oh 와 Lim, 2017; Park 등, 2017).
색도(L*, a* 및 b*)는 각각 발효 초기 26.79, 2.12 및 3.22 에서 발효 말기 23.84, 2.06 및 5.40으로 발효과정 중 L*은 1.12배 감소하였으나 b*는 1.68배 증가하였는데, 이는 블루 베리 유산균 발효액이 발효과정 중 L*은 감소하였으나 b*는 증가한다는 경향과 유사하였다(Lee와 Hong, 2015). 이와
같은 결과는 식물체에 함유된 phenolic hydroxyl group의 수소 일부가 polyphenol oxidase에 의해 quinone으로 산화 된 후 중합과정을 거치면서 갈색 색소인 melanin이 생성되 기 때문에 L*이 감소하고 b*가 증가한 것으로 판단된다(Pa- ranjpe 등, 1978).
따라서 pH가 3.27~4.53, 생균수가 8.00 log CFU/mL 이 상으로 규정되어있는 상업적 요거트의 규격보다 발효 말기 SFLAB의 pH가 차이를 보일지라도 생균수가 법적 규격에 적합하여 선정된 유산균(
Lactobacillus plantarum
LM001) 의 식품 적용에 대한 가능성을 제시한 것으로 판단된다(In 등, 2010; Shin 등, 2010).유산균 발효 식혜의 유기산 및 유리당 함량
선정된 유산균(
Lactobacillus plantarum
LM001)으로 제조한 SFLAB의 유기산 및 유리당 함량에 관한 결과는 Table 3과 같다. SFLAB의 유기산은 oxalic acid, lactic acid, pyroglutamic acid 등 3종이 검출되었다. 특히 lactic acid는 총 유기산(185.23~988.31 mg%)의 78.10~97.30%를 차지한 주요 유기산으로 발효 초기보다 발효말기에 6.65배가 증가하였는데, 이는 현미 요거트의 주된 유기산인 lactic acid가 요거트의 제조과정 중 증가하였다는 보고와 유사하였다(Hong과 Ko, 1991). Oxalic acid와 pyrogluta- mic acid는 발효 초기(11.60 mg%, 28.97 mg%)보다 발효 말기에 각각 2.85배와 1.28배가 감소하였으나 lactic acid 는 발효 초기(144.66 mg%)보다 발효 말기에 6.64배가 증가 하여 발효과정 중 SFLAB의 총 유기산 증가의 주된 원인으 로 나타났다. SFLAB에서 acetic acid가 불검출된 것으로 미루어보아 본 연구에 사용된 유산균(
Lactobacillus plan-
tarum
LM001)은 glucose, fructose 등과 같은 단당류와 maltose, sucrose, lactose 등과 같은 이당류를 소모하여 lactic acid, acetic acid, CO2 및 에탄올 등을 생성하는 이상 젖산 발효균(hetero lactic fermentation)이 아닌 lactic acid만을 생성하는 정상 젖산 발효균(homo lactic fermen- tation)으로 나타났다(Park 등, 2013; Shin 등, 2017; BaeTable 4. Antioxidant activities and antiobesity activity of Sikhye fermented by Lactobacillus plantarum LM001
Component Fermentation time (day)
0 1 2
Antioxidant activity3)
DPPH radical assay (%) ABTS radical assay (%) Reducing power
66.90±0.71b1)2) 46.09±0.14c 0.46±0.01c
60.19±1.23a 42.39±0.51b 0.43±0.01b
58.65±0.45a 39.57±0.72a 0.39±0.01a Antiobesity activity Lipase inhibit activity (%) 0.71±0.31a 56.69±2.58b 60.61±2.30b
1)Values are mean±SD (n=3).
2)Different small letters (a-c) in the same row indicate a significant difference according to Duncan’s multiple range test (P<0.05).
3)Comparison is 0.01% (w/v) ascorbic acid for DPPH radical assay (100%), ABTS radical assay (100%) and reducing power (1.26).
Table 3. Organic acid and free sugar content of Sikhye fermented by Lactobacillus plantarum LM001
Component Fermentation time (day)
0 1 2
Organic acid (mg%)
Oxalic acid Lactic acid Pyroglutamic acid Total organic acids
11.60±0.97c1)2) 144.66±4.22a 28.97±0.48b 185.23±2.89a
7.31±0.51b 755.54±9.06b 28.62±0.18b 791.47±9.20b
4.07±1.05a 961.63±5.74c 22.60±0.27a 988.31±6.33c
Free sugar content (mg%)
Maltose Glucose Fructose
Total free sugar contents
8,504.01±153.68c 992.85±19.13c 188.67±7.34b 9,685.52±177.55c
8,230.88±30.45b 626.55±7.44b 28.24±3.32a 8,885.67±36.25b
6,503.92±40.77a 205.91±5.22a
ND3) 6,719.33±45.85a
1)Values are mean±SD (n=3).
2)Different small letters (a-c) in the same row indicate a significant difference according to Duncan’s multiple range test (P<0.05).
3)ND is an abbreviation for not detected.
등, 2004).
SFLAB의 유리당 조성은 maltose, glucose, fructose 등 3종이 검출되었다. 주요 유리당은 총 유리당(6,719.33~
9,685.52 mg%)의 87.80~96.79%를 차지한 maltose로 나 타났으며, 발효 초기보다 발효 말기에 1.31배가 감소하였고 glucose도 이와 유사한 경향이었다. 이는 감자 주스의 젖산 발효가 진행될수록 maltose와 glucose가 감소하여 lactic acid가 증가한다는 보고와 유사하였다(Kim과 Yoon, 2013).
한편 fructose는 발효 초기 188.67 mg%로 소량이 검출되 었는데 이마저도 젖산 발효 중 소모되어 발효 말기에는 불검 출되었다. 이는 유산균이 lactose와 maltose 같은 이당류보 다는 glucose, fructose 등과 같은 단당류를 우선적으로 소 모하지만, 경우에 따라서는 α-amylase를 생성하여 mal- tose를 glucose로 분해하여 lactic acid를 생성하기 때문으 로 알려져 있다(Amapu 등, 2016).
유산균 발효 식혜의 기능성 평가
선정된 유산균(
Lactobacillus plantarum
LM001)으로 제조한 SFLAB의 항산화 및 항비만 활성에 관한 결과는 Table 4와 같다. 발효과정 중 SFLAB의 항산화 활성(DPPH 라디칼 검정, ABTS 라디칼 검정 및 환원력)은 각각 58.65~66.90%, 46.09~39.57% 및 0.39~0.46으로 발효 초기보다 발효 말기에 각각 1.4배, 1.2배 및 1.2배 감소하였는데, 이는 버섯 유산균 발효액이 발효과정 중 DPPH 라디칼과 ABTS 라디칼 소거능이 감소하였다는 보고와 유사하였다(Yang 등,
2014). 이와 같은 결과는 SFLAB에 함유된 TPC의 phe- nolic hydroxyl group의 일부가 발효과정 중 산화되어 DPPH 라디칼이나 ABTS 라디칼에 전자를 제공하여 이들을 소거하는 환원력이 감소하기 때문이다(Kaur와 Kapoor, 2002; Machowetz 등, 2007).
SFLAB의 lipase 저해 활성은 발효 초기 0.71%에서 발효 말기 60.61%로 85배가 증가하였다. 이는 꾸지뽕 유산균 발 효물과 여주 유산균 발효음료가 발효 후에 lipase 저해 활성 이 증가한다는 경향과 유사하였는데, 꾸지뽕, 여주 등과 같 은 식물의 젖산 발효 중 생성되는 lactic acid, acetic acid, esterase 등과 같은 유용성분에 의한 것으로 알려져 있다 (Lee 등, 2014; Park 등, 2017; Behera 등, 2018). 또한 유산균이 생성하는 lactic acid와 같은 유용성분들이 지방세 포의 수를 조절하거나 지방 축적량을 감소시키는 등 지방 분화 과정을 지연시킨 것으로 알려져 있기 때문에 SFLAB의 lipase 저해 활성의 주요 원인은 lactic acid로 판단된다 (Kadooka 등, 2010; Takemura 등, 2010). 따라서 SFLAB 는 lipase의 활성을 저해시켜 지방 분해산물 중에 하나인 지방산이 체내로 흡수되어 중성지방으로 재합성될 가능성 을 감소시키는 항비만 활성이 있는 것으로 판단된다(Lee 등, 2019).
선정된 유산균(
Lactobacillus plantarum
LM001)으로 제조한 SFLAB의 식중독 유발세균에 대한 항균 활성에 관한 결과는 Table 5와 같다. SFLAB의 clear zone diameter 값은E. coli
KACC 10115에서 발효과정 중에 유의적 차이Table 5. Antimicrobial activities of Sikhye fermented by Lactobacillus plantarum LM001
Food-borne pathogenClear zone diameter ratio1) value Fermentation time (day)
0 1 2
Bacillus cereus (KACC 10097) Bacillus cereus (KACC 13064) Bacillus cereus (KACC 13066) Escherichia coli (KACC 10115)
1.00±0.00a2)3) 1.00±0.00a 1.00±0.00a 1.00±0.00a
1.47±0.01b 1.58±0.00b 1.50±0.02b 1.00±0.00a
1.75±0.02c 1.80±0.01c 1.62±0.02c 1.00±0.00a
1)Clear zone diameter ratio value is expressed as clear zone diameter (mm)/ paper disc diameter (mm).
2)Values are mean±SD (n=3).
3)Different small letters (a-c) in the same row indicate a significant difference according to Duncan’s multiple range test (P<0.05).
가 나타나지 않았던 반면에
Bacillus cereus
KACC 10097, KACC 13064 및 KACC 13066에서는 발효 초기보다 발효 말기가 각각 1.75, 1.80 및 1.62배 항균 활성이 증가하였다.이는 감귤과 동치미 유산균 발효액이
Bacillus
속의 생육을 저해했다는 보고와도 유사하였다(Choi 등, 2015; Park 등, 2012). 이와 같은 결과는 젖산 발효 중 생성되는 lactic acid, acetic acid 등과 같은 유기산들이 세포 내 pH를 낮춰 세포질 을 산성화하여 기질의 이동을 제한함과 동시에 전자 전달 체 계에 영향을 주어 세균의 생육을 억제하기 때문이다(Freese 등, 1973). 한편 lactic acid, acetic acid 등과 같은 유기산 이외에도 diacetyl, acetaldehyde, short chain fatty acid, hydrogen peroxide, bacteriocin 등과 같은 다양한 젖산 발효 생성물이 병원성 세균, 식중독 세균 및 유해균의 생육 억제에 영향을 준다고 알려져 있다(Tagg 등, 1976). 그중에 서도 bacteriocin은B
.cereus
,S. aureus
등과 같은 그람 양성균에는 항균 활성이 높으나E
.coli
와 같은 그람 음성균, 효모 및 곰팡이에 대해서는 항균 활성이 거의 없는 것으로 알려져 있는데, 이는 bacteriocin의 specific binding site에 대해 민감하게 반응하는 세포에만 특이적으로 항균력을 갖 기 때문이다(Lee 등, 2010; Klaenhammer, 1988).유산균 발효 식혜의 이화학적 특성 및 기능성의 상관성 비교
선정된 유산균(Lactobacillus plantarum
LM001)으로 제조한 SFLAB의 이화학적 특성(수용성 고형분, pH, 환원 당, 총산도, 생균수, lactic acid 및 TPC)과 기능성(항산화, 항비만 및 항균 활성)의 상관성을P
<0.01의 유의수준에서 상관 계수(correlation coefficient, R)로 정리한 결과는 Table 6과 같다. 환원당, 총산도, lactic acid, TPC 등을 함 유하여 SFLAB의 이화학적 특성을 대표하는 수용성 고형분 은 pH, 환원당 및 TPC와 각각 0.942, 0.982 및 0.949의 양의 상관성을 나타내었으나, 총산도, 생균수 및 lactic acid 와 각각 -0.964, -0.922 및 -0.979의 음의 상관성을 나타 내었다. 이는 유산균이 환원당의 주요 성분인 수용성 고형분 을 소모하며 생장하면서 생성한 lactic acid로 인해 총산도 가 증가하였으나, 젖산 발효 중 TPC가 산화되어 감소하기 때문으로 판단한다. 그 결과 수용성 고형분은 기능성의 상관 성 비교에서 항산화 활성(DPPH 라디칼 검정, ABTS 라디칼검정 및 환원력)에서는 각각 0.944, 0.989 및 0.971의 양의 상관성을, 항비만 및 항균 활성(
B
.cereus
KACC 10097,B
.cereus
KACC 13064 및B
.cereus
KACC 13064)에서 는 각각 -0.923, -0.954, -0.942 및 -0.930의 음의 상관성 을 나타내어 젖산 발효과정 중 이화학적 특성 변화가 항산 화, 항비만 및 항균 활성에 영향을 주는 것으로 나타났다.본 연구를 통해서 SFLAB에 함유된 기능성 성분으로 판 단한 lactic acid와 TPC를 중심으로 살펴본 기능성의 상관 성은 lactic acid가 항산화 활성에서 DPPH 라디칼 검정, ABTS 라디칼 검정 및 환원력이 각각 -0.980, -0.969 및 -0.931의 상관성을, 항비만 활성에서 0.981, 항균 활성에서
B
.cereus
KACC 10097,B
.cereus
KACC 13064 및B
.cereus
KACC 13064가 각각 0.995, 0.991 및 0.985의 상 관성을 나타냈다. 한편 TPC가 항산화 활성에서 DPPH 라디 칼 검정, ABTS 라디칼 검정 및 환원력은 각각 0.941, 0.970 및 0.918의 상관성을, 항비만 활성에서 -0.919, 항균 활성 에서B
.cereus
KACC 10097,B
.cereus
KACC 13064 및B
.cereus
KACC 13064가 각각 -0.937, 0.934 및 -0.923 의 상관성을 나타냈다. 결과적으로 SFLAB는 lactic acid의 증가로 인해 항비만 및 항균 활성이 증가하기 때문에 젖산 발효는 식혜의 기능성을 강화할 수 있는 가공방법으로 판단 된다.요 약
본 연구에서는 국내산 쌀의 활용도를 높이고자 국내산 막걸리 에서 분리한 유산균을 활용하여 유산균 발효 식혜(SFLAB) 를 제조했으며, 그에 따른 이화학적 특성 및 기능성을 평가 하였다. 쌀막걸리에서 분리한 5종의 유산균 중에서 식혜를 기질로 하는 젖산 발효에 적합한 유산균으로 총산도 함량이 가장 높은
Lactobacillus plantarum
LM001을 선정하여 이 를 이용해 제조한 SFLAB의 이화학적 특성 및 기능성의 결 과는 다음과 같다. SFLAB의 수용성 고형분, 환원당, pH, 총산도, 생균수 및 TPC는 각각 9.38~11.30°Brix, 68.39~89.11 mg/mL, 2.80~4.54, 0.01~0.52%, 6.33~8.43 log CFU/mL 및 0.64~0.68 mg/mL였으며, 젖산 발효가 진행됨 에 따라 수용성 고형분, 환원당, pH 및 TPC는 감소하였으나
총산도와 생균수는 증가하였다. SFLAB의 유기산은 oxalic acid, lactic acid, pyroglutamic acid 3종이 검출되었고 lactic acid가 총 유기산(185.23~988.31 mg%)의 78.10~
97.30%를 함유하여 주요 유기산으로 나타났으며, 유리당은 총 유리당(6,719.33~9,685.52 mg%)의 87.80~96.79%를 함유한 maltose가 주요 유리당으로 나타났다. 항산화 활성 (DPPH 라디칼 소거 활성, ABTS 라디칼 소거 활성 및 환원 력)은 각각 58.65~66.90%, 46.09~39.57% 및 0.39~0.46 으로 젖산 발효가 진행됨에 따라 각각 1.4배, 1.2배 및 1.2배 가 감소하였으나, lipase 저해 활성은 0.71~60.61%로 85배 증가하였다. 항균 활성은
Bacillus cereus
KACC 10097, KACC 13064 및 KACC 13066에서만 활성을 확인하였다.결과적으로 SFLAB의 항산화 활성은 감소했을지라도 항비 만과 항균 활성이 증가하였기에 새로운 형태의 기능성 강화 식품으로서의 가능성이 있다고 판단된다.
감사의 글
본 논문은 농림축산식품부 향토산업 육성사업(과제명: 친환 경 쌀 융복합 고부가 제품개발, MIFI 2019-1)의 연구비 지 원으로 이루어졌으며, 이에 감사드립니다.
REFERENCES
Ahn YT, Lim KS, Huh CS. Current state of functional yogurt in Korea. J Korean Dairy Technol Sci. 2006. 24:29-42.
Amapu TY, Ameh JB, Ado SA, Abdullahi IO, Dapiya HS. Amy- lolytic potential of lactic acid bacteria isolated from wet milled cereals, cassava flour and fruits. Br Microbiol Res J. 2016.
13(2):1-8.
Bae HC, Paik SH, Nam MS. Fermentation properties of rice added yogurt made with various lactic acid bacteria. J Anim Sci Technol. 2004. 46:677-686.
Behera SS, Ray RC, Zdolec N. Lactobacillus plantarum with functional properties: an approach to increase safety and shelf- life of fermented foods. Biomed Res Int. 2018. 2018:
9361614. doi: 10.1155/2018/9361614.
Bhowmik T, Steele JL. Cloning, characterization and insertional inactivation of the Lactobacillus helveticus D(-)lactate de- hydrogenase gene. Appl Microbiol Biotechnol. 1994. 41:432- 439.
Cho KM, Joo OS. Manufacture of Sikhe (a traditional Korean baverage) using corn silk extracts. Korean J Food Preserv.
2010. 17:644-651.
Choi C, Son GM. A study on the preparation of traditional Andong sikhe with lactic acid bacteria. Korean J Diet Cult.
1992. 7:259-270.
Choi HJ, Kim YJ, Lee NR, Park HW, Jang JY, Park SH, et al.
Selection of lactic acid bacteria with antibacterial activity for extension of kimchi shelf-life. J Korean Soc Food Sci Nutr.
2014. 43:328-332.
Choi SY, Kim SK, Youn UY, Kang DO, Choi NS, Mun MS, et al. Antimicrobial and ACE inhibitory activities of Citrus
unshiu fermented with lactic acid bacteria. J Korean Soc Food
Sci Nutr. 2015. 44:1084-1089.Dechakhamphu A, Wongchum N. Screening for anti-pancreatic
lipase properties of 28 traditional Thai medicinal herbs. Asian Pac J Trop Biomed. 2015. 5:1042-1045.
Freese E, Sheu CW, Galliers E. Function of lipophilic acids as antimicrobial food additives. Nature. 1973. 241:321-325.
Gilliland SE. Health and nutritional benefits from lactic acid bacteria. FEMS Microbiol Rev. 1990. 7:175-188.
Goldin BR. Health benefits of probiotics. Br J Nutr. 1998. 80:
S203-S207.
Hong OS, Ko YT. Study on preparation of yogurt from milk and rice. Korean J Food Sci Technol. 1991. 23:587-592.
In MJ, Kim HM, Jin HJ, Kim DC, Oh NS, Chae HJ. Production of a fermented Korean pear puree using a new strain Leuco-
nostoc mesenteroides KACC 91495P isolated from Kimchi.
J Appl Biol Chem. 2010. 53:51-55.
ISO 14502-1. Determination of substances characteristic of green and black tea-Part 1: Content of total polyphenols in tea-
Colorimetric method using Folin-Ciocalteu reagent. Interna- tional Organization for Standardization, Geneva, Switzerland.
2005.
Jeon ER, Kim KA. Changes of components and morphology of milled rice and brown rice Sikhe during saccharification. J Sci Better Living. 1998. 8:68-75.
Kadooka Y, Sato M, Imaizumi A, Ogawa A, Ikuyama K, Akai Y, et al. Regulation of abdominal adiposity by probiotics (Lactobacillus gasseri SBT2055) in adults with obese tenden- cies in a randomized controlled trial. Eur J Clin Nutr. 2010.
64:636-643.
Kang CH, Han SH, Kim YG, Jeong Y, Paek NS. Antibacterial activity and probiotic properties of lactic acid bacteria iso- lated from traditional fermented foods. KSBB Journal. 2017.
32:199-205.
Kang HJ, Park JD, Lee HY, Kum JS. Effect of grapefruit seed extracts and acid regulation agents on the qualities of Topok-
kidduk. J Korean Soc Food Sci Nutr. 2013. 42:948-956.
Kano M, Takayanagi T, Harada K, Makino K, Ishikawa F.
Antioxidative activity of anthocyanins from purple sweet po- tato, Ipomoera batatas cultivar Ayamurasaki. Biosci Biotech- nol Biochem. 2005. 69:979-988.
Kaur C, Kapoor HC. Anti-oxidant activity and total phenolic content of some Asian vegetables. Int J Food Sci Technol.
2002. 37:153-161.
Kim DC, Choi JW, In MJ. Utilization of Leuconostoc mesenter-
oides 310-12 strain in the fermentation of a traditional Korean
rice-based beverage. J Appl Biol Chem. 2011. 54:21-25.Kim NJ, Yoon KY. Qualities and antioxidant activity of lactic acid fermented-potato juice. J Korean Soc Food Sci Nutr.
2013. 42:542-549.
Kim YS, Song GS. Characteristics of kiwifruit-added traditional
kochujang. Korean J Food Sci Technol. 2002. 34:1091-1097.
Klaenhammer TR. Bacteriocins of lactic acid bacteria. Bichimie.
1988. 70:337-349.
Lee DH, Hong JH. Physicochemical properties and storage sta- bility of blueberry fermented by lactic acid bacteria. Korean J Food Preserv. 2015. 22:796-803.
Lee ES, Jo SW, Yim EJ, Kim YS, Park HS, Kim MK, et al.
Fermentation characteristics of mulberry (Cudrania tricuspi-
data) fruits produced using microbes isolated from traditional
fermented food, and development of fermented soybean food.Korean J Food Preserv. 2014. 21:866-877.
Lee JA. Quality characteristics of rice cereal bars containing different levels of mulberry leaf (Morus alba Linne) powder.
Culi Sci & Hos Res. 2019. 25:119-126.
Lee JJ, Kim AR, Chang HC, Lee MY. Repeated-dose oral toxicity study of Lactobacillus plantarum AF1 isolated from
kimchi in rats. J Korean Soc Food Sci Nutr. 2012. 41:612- 620.
Lee JY, Oh SB, Choi NS, Park YW, Kang DO. Biological activ- ity of Viola mandshurica fermented with Bacillus methylo-
trophicus CBMB205 and Leuconostoc pseudomesenteroides
NRIC1777. J Life Sci. 2019. 29:239-247.Lee KI, Park HY, Choi HS, Choi ID, Park JY, Cho DH, et al. Comparison of the quality characteristics of commercial barley malts in Korea. Korean J Food Nutr. 2018. 31:598-603.
Lee SG, Han KS, Jeong SG, Oh MH, Jang A, Kim DH, et al.
A study on the sensory characteristic of yogurt and anti- microbial activity of Lactobacillus plantarum LHC52 isolated from kimchi. Korean J Food Sci Ani Resour. 2010. 30:328- 335.
Liu B, Yang M, Qi B, Chen X, Su Z, Wan Y. Optimizing L-(+)- lactic acid production by thermophile Lactobacillus planta-
rum As.1.3 using alternative nitrogen sources with response
surface method. Biochem Eng J. 2010. 52:212-219.Machowetz A, Poulsen HE, Gruendel S, Weimann A, Fitó M, Marrugat J, et al. Effect of olive oils on biomarkers of oxida- tive DNA stress in Northern and Southern Europeans. FASEB J. 2007. 21:45-52.
Nout MJR. Rich nutrition from the poorest-Cereal fermenta- tions in Africa and Asia. Food Microbiol. 2009. 26:685-692.
Oh HJ, Lim SB. Quality changes in kiwifruit wines during fer- mentation and aging with different yeasts. J Korean Soc Food Sci Nutr. 2017. 46:481-489.
Oyaizu M. Studies on products of browning reaction: antioxidant activities of products of browning reaction prepared from glucosamine. Jpn J Nutr. 1986. 44:307-315.
Paranjpe MS, Chen PK, Jong SC. Phenolic and other organic compounds in morphologically different tissues of Agaricus
bisporus. Trans Mycol Soc Jpn. 1978. 19:193-204.
Park JH, Oh DH, Chung HY. Antimicrobial activity of Lactoba-
cillus sakei J4 isolated from Korean Dongchimi and its pro-
biotic properties. Food Eng Prog. 2012. 16:122-128.Park JM, Lee HM, Eom HJ, Kim SH, Song IG, Yoon HS. Quality characteristics of sourdough bread with lactic acid bacteria in the antibacterial activity. Korean J Food Nutr. 2013. 26:
199-207.
Park S, Yeo S, Lee Y, Jeong Y, Kim M. Inhibitory activities of digestive enzymes and antioxidant activities of fermented beverages using Momordica charantia L. J Korean Soc Food Sci Nutr. 2017. 46:1308-1315.
Park SH, Lee JH. The correlation of physico-chemical character- istics of kimchi with sourness and overall acceptability. Kore- an J Food Cook Sci. 2005. 21:103-109.
Park SI. Application of green tea powder for sikhe preparation.
Korean J Food Nutr. 2006. 19:227-233.
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice- Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Bio Med.
1999. 26:1231-1237.
Shin AS, Lee KH. Study on the preparation of rice focaccia by cooking method of Jeung-pyun. J East Asian Soc Diet Life. 2018. 28:279-289.
Shin JH, Kim GM, Kang MJ, Yang SM, Sung NJ. Preparation and quality characteristics of yogurt with black garlic extracts.
Korean J Food Cook Sci. 2010. 26:307-313.
Shin JY, Shin JH, Kang MJ, Choi MH, Park HR, Choi JS, et al. Physicochemical characteristics of lactic acid fermented
Seomaeyaksuk (Artemisia argyi H) Sikhye added with differ-
ent addition ratio of MSG. Korean J Food Preserv. 2017. 24:254-265.
Sohn HY, Ryu HY, Jang Y, Jang HS, Park YM, Kim SY. Evalu- ation of antimicrobial, antithrombin, and antioxidant activity of aerial part of Saxifraga stolonifera. Kor J Microbiol Biotechnol. 2008. 36:195-200.
Son HS, Park BD, Ko BK, Lee CH. Quality characteristics of
Takju produced by adding different amounts of water. Korean
J Food Sci Technol. 2011. 43:453-457.Song KJ, Hwang ES. Quality characteristics and antioxidant ac- tivities of Sikhye added with Artemisia capillaris extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr. 2016. 45:1630-1637.
Tagg JR, Dajani AS, Wannamaker LW. Bacteriocins of gram- positive bacteria. Bacteriol Rev. 1976. 40:722-756.
Takemura N, Okubo T, Sonoyama K. Lactobacillus plantarum strain No. 14 reduces adipocyte size in mice fed high-fat diet.
Exp Biol Med. 2010. 235:849-856.
Tamura K, Nei M. Estimation of the number of nucleotide sub- stitutions in the control region of mitochondrial DNA in hu- mans and chimpanzees. Mol Biol Evol. 1993. 10:512-526.
Tamura K, Peterson D, Peterson N, Stecher G, Nei M, Kumar S. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum
parsimony methods. Mol Biol Evol. 2011. 28:2731-2739.
Thompson JD, Higgins DG, Gibson TJ. CLUSTAL W: improv- ing the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic Acids Res. 1994. 22:4673- 4680.
Xie N, Cui Y, Yin YN, Zhao X, Yang JW, Wang ZG, et al.
Effects of two Lactobacillus strains on lipid metabolism and intestinal microflora in rats fed a high-cholesterol diet. BMC Complementary Altern Med. 2011. 11:53. https://doi.org/10.
1186/1472-6882-11-53
Yang HS, Choi YJ, Oh HH, Moon JS, Jung HK, Kim KJ, et al. Antioxidative activity of mushroom water extracts fer- mented by lactic acid bacteria. J Korean Soc Food Sci Nutr.
2014. 43:80-85.
Yoon SS, Park YS, Choi HJ. Genetics and research revolutions in the lactic acid bacteria: focused on probiotics and immuno- modulation. Curr Top Lact Acid Bact Probiotics. 2013. 1:9- 19.
Zhang Z, Schwartz S, Wagner L, Miller W. A greedy algorithm for aligning DNA sequences. J Comput Biol. 2000. 7:203-214.