임상병리검사과학회지 : 제 28권 제 1 호 1996.
임 상 가검 물에 서 Nested-PCR과 PCR - dot blot 법 을 이용한 결핵균 검출의 비교
서울의과학연구소 • 서울임상병리검사센터 (SCL)
이성수·검미영·박영석
Comparison of Nested-PCR with PCR-Dot Blot for the Detection of Mycobacierium tuberculosis
in Clinical Samples
Lee , Seong-Soo , Kim , Mi- Young , Park , Young-Suk Se oul Mediclll Scienæ Institute ‘ Seoul Cliniclll Lllboratories( SCL)
The polymerase chain reaction (PCR) technique has widely been used in the direct di- agnosis of Mycobacterium tuberculosis(M. tuberculosis) from variety of clinical samples.
Recently , with development of molecular biological techniques , several PCR methods , in cluding nested - PCR , PCR- RFLP(Restriction Fragment Length Polymorphism) and PCR-dot blot hybridization , have been applied for the clinical diagnosis of M. tubercul o- sis. 1n this study , we evaluated the sensitivity of nested - PCR in comparison with the PCR-dot blot for the determination of M. tuberculosis. Two pairs of primers for nested - PCR were designed from 1S6110 locus of M. tuberculosis. Biotin labeled probe designed in the inner area of PCR product was used for PCR-dot hybridization. 1n a total of 59 sputum samples, thirty five samples (59.3 %) were positive in nested - PCR. On the other hand, fifteen samples (25 .4 %) were positive by PCR - dot blot analysis. From the results, nested - PCR is a more simple, cost effective and sensitive method for the detec tion of M. tuberculosis than PCR - dot blot analysis.
Key words : Mvcobacterium tubercu/osis, nested - PCR , PCR - dot blot
1 . 서
료르L-
중합 효소 연쇄반응 (PCR) 이 임상 실험실의 진단 목적으로 사용되기 시작한 것은 불과 수
년 내의 일이나 그 방법의 개발과 활용도는 과
거의 어떤 방법보다 급진전하고 있다 1-5.20-22)특히 항원이나 항체를 간접적인 방법 25) 으로 검
출하던 감염 증 분야에 서 PCR의 활용은 확고
한 실험실적 진단 방법으로 자리잡고 있다. 최 근에는 분자생물학 기술의 신속한 발전과 아울 러 장비의 개발로, PCR 원리를 이용한 보다 신속하고 정밀한 검사 방법이 계속 개발되고 있다. 따라서 단순한 PCR 방법 을 이 용한 분석 보다는 검사의 목적에 따라 PCR-RFLP , nested - PCR, PCR - dot blot 등 임 상 실 험 실 에서 각종 병원 미생물을 검출하는 방법에 대 하여 많은 보고가 이루어 지고 있다 6- 9) 저자 들은 결핵균 , Chlamydia , C형 간염 등 임상 미 생물 분야에서 PCR 검사법의 유용성에 관하 여 보고하여 왔다 1.2.6- 9) 특히 객담에서 1 차 PCR법을 이용한 결핵균의 검출을 결핵균 배 양법과 비교하여 PCR의 우수성을 증명하였으 며, 소변, 척수액 등 결핵균 수가 적게 분포할 가능성이 있는 각종 체액에서 1 차 PCR 방법
2. 실험방법
1) Primer 및 probe의 합성
결핵균 DNA의 증폭을 위한 PCR primer는 M.
tuberculosis의 특이 적 인 부위 로 알려 진 186110 염 기 서열에서 설정하였다. 1 차 PCR을 위한 pnmer
로는 TB 1( 561-58이, TB2(865-884) 를 사용하 였으며, nested - PCR을 위한 pnmer로는 TB3 (588-609) , TB4(805-826) 를 사용하였다 24)
PCR - dot blot에 서 사용한 probe는 PCR 산물의 내측에 위치하는 TB5(705-754) 를 사용하였다.
본 실험에서 사용된 pnmer 및 probe의 합성은
392 DNA/RNA 합성기 (Applied Biosystem , U.
8. A.) 를 이 용하여 합성하였다.
2) DNA 추출
과 nested-PCR 방법 을 비 교하여 nested- DNA는 proteinase K와 phenol/ chlorof orm을
PCR 방법의 유용성을 입증한 바 있다 2) 최근 이용하여 추출하였다. 점성이 높은 객담을 4N
PCR을 이용한 병원균의 검출에 있어서 상품 NaOH와 동량 혼합하여 점도를 저하시킨 후 3 , 화된 kit에서는 PCR - dot blot 방법이 많이 응
용되고 있으므로, 저자들은 결핵균 검출률에 있어 서 nested-PCR과 PCR - dot blot 방법 간 의 예민도 및 정확성을 비교하기 위하여, 1 차 PCR을 시행한 뒤 얻어진 산물을 재 증폭하는
nested-PCR 방법과 l 차 PCR을 시행한 후 화학 형광 발광물질로 표식한 DNA probe로 교잡을 하는 PCR - dot blot 방법을 59 예의 임상 검체로 동시에 시행하여, 비교 분석한 후 유의한 결과를 얻었기에 보고하는 바이다.
II. 실험재료 및 방법
1. 실험재료
결핵균 표준 균주로는 M. tuberculosis( A TCC
27294) 를 사용하였으며, 임상 검체로는 결핵으 로 의심되는 환자의 객담으로서 본원에 의뢰된
59 예를 대상으로 하였다.
800 rpm에서 원심분리 하였다. 상충액을 제거 한 침전물을 세포 완충 용액 (50 mM Tris- HCl pH 7.5 , 1 mM EDTA , 1 % Triton X- 100) 200 띠에 부유시킨 후 proteinase K를 최 종 농도가 400 명Iml 되도록 혼합하였다. 37
0C
에서 1 시간 반응시킨 후 phenol/ chlorof orm을 동량 넣 은 다음 1 분간 혼합하여 12 , 000 rpm에 서 10 분간 원심분리 한 후 상충액을 취해 chloroform을 동량 넣고 12 , 000 rpm에서 10 분 간 원심분리 하였다. 원심분리 후 상충액을 취 하여 최 종 농도 0.2 M sodium acetate와 2배 부피의 100% 에탄올을 넣어 혼합하였다. -20
℃에서 1 시간 이상 방치한 후 18 , 000 rpm에서 20 분간 원심분리하여 침전물을 70% 에탄올에 세척하고 건조시켰다. 건조된 침전물은 TE buffer(Tris EDTA , pH 7.6) 에 재 용해시키고 이 중 일부를 PCR 반응에서 주형으로 사용하
였다 15)
3) 중합 효소 연쇄 반웅 및 전기영동
PCR 반응액 조성 은 다음과 같다. 총부피 20
t1l에 10 x buffer(50 mM KCl , 10 mM Tris- HCl pH 8.8 , 1. 5 mM MgC lz, 0.1 % Triton X- 100) , 0.5 unit Taq DNA polymerase , 0.2 mM dNTP , 20 pmol primer와 주형을 넣었다. 1 차 PCR에서는 DNA 추출물 중에서 5 띠를 주형으 로 사용하였고 nested-PCR에서는 1 차 PCR
산물 중에서 1 띠를 주형으로 이용하였다. 1 차
PCR 반응은 95
0C 에서 3분간 가열한 후 94
0C 에 서 denaturation 1. 5분, 62
0C 에서 annealing 1. 5 분, 72t 에 서 extension 2 분을 1 주기 로 하여 35회 반복하였고 nested-PCR에서는 95
0C 에서
3 분간 가열한 후 94
0C 에서 1 분, 68
0C 에서 l
분, 72
0C 에서 1 분을 1 주기로 하여 28 회를 자동 thermal cycler( GeneAmp PCR system 9600 , Perkin Elmer Cetus 1nc.) 를 이 용하여 실 행하였다. PCR을 시행한 후 반응의 확인을 위 하여 증폭된 DNA에 6 x loading buffer(0.25%
bromophenol blue , 0.25% xylene cyanol FF , 15 % Ficoll 400 ) 를 넣 어 2 % agarose gel에 서 전기영동을 한 후 ethidium bromide로 염색하 여 UV 상에서 PCR에 의해 증폭된 DNA를 확
인하였다 23)4) PCR 산물의 제한 효소 분석
PCR 산물의 결핵균 특이성을 확인하기 위하여
nested-PCR 산물 10 띠에 제한 효소 (AsuI,
Hh al) 10 unit를 넣은 후 3TC 에서 6 시간 이상 반응시키고, 12% polyacrylamide gel에서 전기 영동을 하여 증폭된 DNA 단편을 분석하였다.
5) PCR - dot blot
CD Nylon membrane상에 DNA 고정 1 차 PCR 산물을 알칼리 변성 (0.4 M NaOH , 10 mM EDTA) 한 후, 냉장 보관된 2M am- monium acetate(pH 7.0) 를 넣은 다음 dot blot- ter(Bio- Rad , Bio- Dot Microfiltration Appa- ratus , U.S.A.) 를 이 용하여 nylon membrane 상 에 DNA를 옮긴 후 80
0C 에서 2 시간 동안 건 조시켜 고정하였다.
@ Hybridization
Biotin으로 표식한 probe( 50 ng/ml)를 95
0C
에 서 10분간 변 성 시 켜 hybridiza tion 용액
(1 mM EDT A , 7 % SDS , 0.25 M disodium phosphate pH 7.2 , 5% dextran sulfate) 과 혼 합한 후 hybridizer(Techne Ltd. , U. K.) 를 이 용하여 65
0C 에 서 2 시 간 동안 hybridiza tion 하 였다. Hybridization 과정을 거친 membrane을 실온에서 2 x SSC( 0.3 M sodium chloride , O.
03 M sodium citrate dihydrate pH 7.0) , 1. 0%
SDS 로 세척하고 65
0C 에서 1 x SSC , 1 % SDS
로 세척한 후 다시 실온에서 1 x SSC로 세척
하였다 18)
@ 화학 형광 발광 물질의 검출
Hybridization한 membrane을 blocking 완충 액 (0.2 % 1 - Block reagent , 1X PBS , 0.5%
SDS) 으로 세척한 다음 blocking 완충액에
AVIDx- AP(Tropix , 1nc. Massachusetts , U.S.
A.) 를 1 : 5, 000으로 희석한 용액에 20 분간 섞 어 준 후 blocking 완충액, 세척 완충액 (1 x PBS , 0.5 % SDS) , assay 완충액 (0.1 M die- thanolamine , 1 mM MgC1 2 ) 으로 각각 2 회 씩 세 척한 다음 membrane을 화학 형광 발광 기질액
(0.1 M diethanolamine, 1 mM MgClz, 0.25 mM CSPD ; Tropix, Inc. Massachusetts, U. S. A. )
으로 골고루 섞어 주었다. 모든 과정이 끝난 membrane은 건 조되 지 않게 plastic wrap에 싸 서 X-ray 필름 상에 20 분간 노출시킨 후 현
상하였다 11 , 13)