경기도와 제주도 야생화들로부터 효모의 분리, 동정 및 항통풍성 Xanthine oxidase 저해물질의 생산
현세희1, 문혜연2, 이향범2, 김하근1, 이종수1*
1배재대학교바이오·의생명공학과
2전남대학교응용생물공학부
Received: September 6, 2013 / Revised: September 24, 2013 / Accepted: September 27, 2013
서 론
효모는유성생식과무성생식을하며진핵세포를갖고있 는진균류로서일반적으로자낭균류와일부담자균류에속 하는유포자효모와불완전균류에속하는무포자효모로크 게구분된다
.
효모는대부분이GRAS
균주로서오래전부터 주류와장류등의발효식품제조에이용되고있고근래건 강식품소비의증가에따라효모에서항고혈압성안지오텐 신전환효소저해물질[10, 12],
항치매성β-secretase
저해물 질[14]
과acetylcholinesterase
저해물질[15],
혈전용해물질[8],
혈관신생억제물질[9],
미백성tyrosinase
저해물질[7],
정 미성리보핵산물질[16]
과같은다양한대체의약소재들이개 발되어보고되었다.
최근시판막걸리에서항고혈압활성이우수한
Pichia burtonii
등이 분리 동정되었고[21], killer toxin[17],
효소생산효모[18]
등이분리,
선별되어일부가산 업적으로이용되고있다.
또한,
효모의각종대사산물의생 성,
분비기작이규명되었고빠른생육과배양이용이한잇 점등이있어유전공학연구에서귀중한숙주로도이용되고 있다[11].
지금까지국내에서효모는주로전통발효식품이나누룩
,
곡자,
발효제등에서분리,
동정되어이들의일부가산업적 으로이용되고있을뿐우리나라자연환경에분포하고있는 야생효모들을분리,
동정하고이들을산업적으로응용하는 연구는거의실시되지않았다.
따라서필자등은전국각지 의자연환경에서식하고있는야생효모들을분리,
동정하여 다양한효모균주들을확보하기위해전보[20]
에서대전과 충남일부지역에서서식하고있는야생화들로부터효모들 을분리,
동정하여보고하였고우리나라해안근접지역과금 산군,
안동시등의일부내륙지역야생화들로부터국내미기 록효모들을분리하여특성을보고하였다[5].
본연구에서는Isolation of Yeasts from Wild Flowers in Gyonggi-do Province and Jeju Island in Korea and the Production of Anti-gout Xanthine Oxidase Inhibitor. Hyun, Se Hee
1, Hye Yeon Mun
2, Hyang Burm Lee
2, Ha-Kun Kim
1, and Jong-Soo Lee
1*.
1
Department of Biomedicinal Science and Bioechnology Paichai University, Daejeon 302-735, Korea,
2Divison of Applied Bioscience & Biotechnology, Chonnam National University, Gwangju 500-757, Korea
Several yeasts were isolated from flowers found in Gyonggi-do Province and Jeju island in Korea. They were then identified by a comparison of their PCR-amplified D1/D2 regions of 26S rDNA, internal transcribed spacer 1 and 2 inclusive of 5.8S rDNA, using the BLAST database. A total of fifty four yeast strains were isolated from wild flowers in Gyonggi-do and the genus Pseudozyma was noted as being dominant. A total of thirty two strains were isolated from Songaksan and Seongsan-ilchul- bong in Jeju island and Sporobolomyces ruberrimus was seen to be dominant. The anti-gout xanthine oxidase inhibitory activi- ties of the culture broths and cell-free extracts from eighty six yeast strains were then determined. The cell-free extracts of Pseudozyma hubeiensis 228-S-1 exhibited the highest xanthine oxidase inhibitory activity of 19.6%. The XOD inhibitor was also maximally produced when Pseudozyma hubeiensis 228-S-1 was cultured at 30
oC for 36h in YEPD medium.
Keywords: 26S rDNA, ITS 1/5.8S rDNA/ITS2, wild flowers, yeasts, anti-gout xanthine oxidase inhibitor
*Corresponding author
Tel: +82-42-520-5388, Fax: +82-42-520-5388 E-mail: [email protected]
© 2013, The Korean Society for Microbiology and Biotechnology
국내야생화들의효모분포상을조사하고이들효모로부터 새로운고부가가치의생리활성물질을생산하고자먼저서울
(
구로동)
을포함하는경기도지역과제주도송악산일대에서서식하고있는진달래등의야생화들로부터효모를분리하 여동정하였고이들가운데항통풍성
xanthine oxidase
저 해물질을생산하는효모를선발하여생산조건을검토하였다.
재료 및 방법
효모의 분리
경기도지역
(
서울구로동,
평택,
성남,
용인,
안성)
과제주도송악산과성산일출봉일대에서
2012
년봄에개화한꽃(
화분) 52
점들을멸균튜브에채취하여,
멸균수에넣고1
시간 진탕시킨후일정액을streptomycin (50
μg/ml
과ampicillin (50
μg/ml)
을함유한yeast extract-peptone dextrose
한천배 지에도말하여30
oC
에서48
시간배양한후생육한효모들을 분리하였다.
효모의 동정
효모의 동정은
26S rDNA
의D1/D2 region
또는ITS1/
5.8S rDNA/ITS2 region
의염기서열상동성비교법을이용 하여다음과같이실시하였다.
먼저분리한효모들의gDNA
를Genomic DNA prep kit for yeast (Sol Gent Co.)
로 추 출하여PCR
을위한주형DNA
로사용하였다.
분리한DNA
를26S rDNA
의D1/D2 region primer
로LN1 (5'GCA TAT CAA TAA GCG GAG GAA AAG 3')
과NL4(5'GGT CCG TGT TTC AAG ACG G 3')
또는ITS1/5.8S rDNA/
ITS2 region primer
로ITS1(5'TCC GTA GGT GAA CCT GCG G 3')
과ITS4 (5'TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC 3')
를이용하여PCR
하여증폭시킨후1.5% agarose gel
을이 용한 전기영동으로 확인하고 다시 이PCR
산물을Gel extraction kit (Qiagen)
로정제하고이들의염기서열을분석 하였다.
염기서열의정렬은DNAstar
를사용하여Florence Corpet
로Multiple sequence alignment
를하여염기서열을 정렬하였고, NCBI
의BLAST
의database
염기서열과의상 동성을조사하였다[20].
Xanthine oxidase 저해활성 측정
Xanthine oxidase
저해활성은먼저효모를30
oC
로2
일간YEPD
배지에서배양한후배양상등액과무세포추출물로구분하여각각동결건조시킨다음
0.1 M potassium phosphate buffer (pH7.5)
에10 mg/ml
로용해하였다.
이들시료100
μl
를1 mM xanthine
용액200
μl
와xanthine oxidase (0.1 U/ml) 100
μl
에혼합하고0.1 M potassium phosphate buffer (pH7.5) 600
μl
첨가하여1 ml
로정용한후37
oC
에서5
분간각각반응시켰다. 1 N HCl 200
μl
를가하여반응을정 지시킨후12,000 rpm
으로10
분간원심분리하여단백질을 제거한다음생성된uric acid
함량을분광분석기(UV-1601, Shimadzu)
로292 nm
에서흡광도를측정하여정량한후아 래와같이배양상등액과무세포추출물의xanthine oxidase
저해활성을계산하였고[6] 3
반복의평균값으로표시하였다.
xanthine oxidase
저해활성(%) =
[1
−{A(
시료구)
−B(
시료구Blank)/C(
대조구)}]
×100
결과 및 고찰
경기도 야생화들로부터 효모의 분리 및 동정
서울구로동과평택
,
안성,
용인,
성남등지의야생화들로 부터효모들을분리하여이들의26S rDNA
의D1/D2, ITS1/
5.8S rDNA/ ITS2
염기서열분석을통한분자생물학적유연 관계비교분석방법으로동정한결과는Table 1
과같다.
각기다른
31
점의야생화들로부터26
종의효모들을54
균 주분리하였다.
이들지역의야생화들로부터Pseudozyma rugulosa
를포함하는Pseudozyma sp.
가13
균주분리되어이 들지역에서는이균주들이우점균이었고Cryptococcus aureus
균주를 포함한Crytococcus sp.
가7
균주, Rhodosporidium sp.
와Rhodotonula sp.
가각각4
균주, 5
균주가분리되었다.
이밖에도Sporobolomyces sp.
과Metschnikowia sp.
등이 분리되었다.
또한일반적으로전통발효식품등에서유용균 주로알려진Saccharomyces cerevisiae
종이4
균주분리되었 다.
이들중우점균들에대한최근연구로Morita
등[22]
은 당지질성생계면활성제인mannosylerythritol(MEL)
생산능 력이우수한Pseudozyma rugulosa
를분리하여동정한후MEL
최적생산조건을보고하였고, Pseudozyma fusiformata
를 포함하는몇종의Pseudozyma sp.
들역시MEL
생성능이우 수함을보고하였다[23].
또한, Cao
등[1]
은해양효모로알려 진Cryptococcus aureus HYA
가갖고있는insulin
분해효소 유전자인INU1
을Pichia pastoris X-33
에클로닝시켜대량 발현시킨 후 이들의 특성을 보고하였고, Gao
등[4]
은Cryptococcus aureus G7
이Jerusalem artichoke
추출물에 서단세포단백질을많이생산하였음을보고하였다.
제주도 야생화들로부터 효모의 분리 및 동정
제주도송악산과성산일출봉지역산과밭등지의
21
점 의꽃들로부터효모들을분리하여동정한결과모두14
종에 속하는 효모들을32
균주 분리하였다(Table 2).
이들 중Sporobolomyces ruberrimus
가6
균주, Pseudozyma aphidis
4
균주를포함한Pseudozyma sp.
가8
균주, Candida sp.
가5
균주등으로우점균을이루고있었다. Fell
등[3]
은D1, D2
Table 1. Yeasts species from wild flowers in Gyonggi-do including Guro-dong, Seoul.
No. Putative species Isolated
No.
Related Genbank sequence
Identity (%)
Collected area
1 Cryptococcus aureus 225-S-2 EU304246.1 598/600 (99%)
Seoul Guro-dong
2 Cryptococcus laurentii 222-S-2 HQ327003.1 578/588 (98%)
3 Lachancea thermotolerans 225-S-1 CU928180.1 578/581 (99%)
227-S-2 CU928180.1 577/581 (99%)
4 Pseudozyma hubeiensis 222-S-1 AB566327.1 605/607 (99%)
228-S-1 AB566327.1 609/615 (99%)
5 Rhodotorula glutinis 222-S-3 JQ917424.1 570/576 (99%)
6 Sporobolomyces carnicolor 228-S-2 JQ964222.1 497/503 (99%)
7 Sporobolomyces carnicolor 226-S-1 JN940713.1 604/604 (100%)
8 Sporobolomyces phaffii 224-S-2 AY070011.1 600/601 (99%)
223-S-3 AY070011.1 601/601 (100%)
9 Candida sp. 277-GG1-2 AY740171.1 647/648 (99%)
Pyeongtaek city
10 Cryptococcus aureus 282-GG1-3 EU304246.1 600/602 (99%)
11 Cryptococcus flavus 274-GG1-1 FJ743627.1 638/640 (99%)
12 Metschnikowia koreensis 277-GG1-1 AF296438.1 532/532 (100%)
13 Pseudozyma rugulosa 269-GG1-1 JN940523.1 604/607 (99%)
269-GG1-2 JN940523.1 604/607 (99%) 269-GG1-3 JN940523.1 613/618 (99%) 270-GG1-1 JN940523.1 605/607 (99%) 271-GG1-1 JN940523.1 648/648 (100%) 14 Rhodosporidium fluviale 281-GG1-1 FJ515261.1 612/616 (99%)
15 Rhodotorula graminis 282-GG1-1 EU563930.1 617/617 (100%)
16 Saccharomyces cerevisiae 272-GG1-1 JX103177.1 607/608 (99%) 274-GG1-2 JX103177.1 608/608 (100%) 17 Sporidiobolus pararoseus 270-GG1-2 FJ755245.1 574/577 (99%) 18
Hanseniaspora uvarum319-GS-1 AM160628.1 614/615 (99%)
Seongnam city 325-GS-1 AM160628.1 615/615 (100%)
326-GS-1 AM160628.1 615/615 (100%) 327-GS-1 AM160628.1 613/615 (99%)
19 Metschnikowia reukaufii 324-GS-1 JX067756.1 545/557 (98%)
20 Metschnikowia viticola 326-GS-2 JN544019.1 443/529 (84%)
21 Pichia guilliermondii 321-GS-1 FJ432597.1 613/613 (100%)
22 Pseudozyma rugulosa 323-GS-1 JN940523.1 648/648 (100%)
23 Saccharomyces cerevisiae 322-GS-2 JX103177.1 607/608 (99%) 24 Sporidiobolus pararoseus 323-GS-2 JQ219312.1 575/576 (99%) 25 Cryptococcus flavescens 330-GY-1 FJ743610.1 640/640 (100%)
Yongin city
26 Pichia fermentans 331-GY-2 DQ377652.1 598/599 (99%)
27 Pseudozyma rugulosa 328-GY-3 JN940523.1 644/644 (100%)
329-GY-2 JN940523.1 644/644 (100%) 330-GY-2 JN940523.1 647/648 (99%) 28 Rhodosporidium paludigenum 328-GY-1 HQ670686.1 617/617 (100%)
329-GY-1 FJ794995.1 617/617 (100%
29 Rhodotorula mucilaginosa 331-GY-4 HQ871906.1 576/577 (99%)
30 Rhodotorula sp. 332-GY-2 EU678938.1 622/627 (99%)
31 Saccharomyces cerevisiae 328-GY-2 JX103177.1 605/608 (99%) 32 Sporisorium loudetiae-pedicellatae 332-GY-3 AY740106.1 645/649 (99%)
33 Candida sp. 333-GW-1 AY833088.1 647/648 (99%)
Anseong city 334-GW-1 AY833088.1 647/648 (99%)
34 Cryptococcus sp. 339-GW-1 FM178286.1 606/607 (99%)
337-GW-1 GQ181170.1 633/639 (99%)
35 Pseudozyma rugulosa 335-GW-1 JN940523.1 604/607 (99%)
337-GW-2 JN940523.1 604/607 (99%)
36 Rhodosporidium fluviale 340-GW-2 FJ515261.1 612/616 (99%)
37 Rhodotorula mucilaginosa 340-GW-1 JX310560.1 607/613 (99%)
와
ITS
영역에있는rDNA
염기조성과형태적특성등을토 대로Sporobolomyces ruberrimus
를분리,
동정하여보고하 였고, Razavi
등[26]
은Sporobolomyces ruberrimus
로부터 글리세롤과암모니움아세테이트를사용하여카로티노이드 와 지방산 등을 생산한 연구결과를 보고하였다.
또한Pseudozyma aphidis
균에대하여최근Parahym
등[24]
은 폐감염균종으로, Chen
등[2]
은다리감염균종으로각각보 고하였다.
한편
,
필자등[20]
은대전지역공단주위와야산의야생화 로부터희귀성균주들인Metschnikowia sp.
와Starmerella sp.
들이Sporobolomyces rubberimus, Cryptococcus magnus
등을분리,
보고하였는데위와같이동일한야생화라도경기 도,
대전,
제주도등지역간의기후적차이와이로인한개 화시기차이등에의해일부다른효모들이분포하고있는것으로사료된다
.
항통풍성 xanthine oxidase 저해물질 생산 균주의 선발 경기도와제주도야생화들로부터분리
,
동정한86
균주들 에대한배양상등액과무세포추출물들의xanthine oxidase
저해활성을측정한결과는Table 3
과같다.
먼저86
균주중26
균주들의배양상등액에서xanthine oxidase
저해활성을 보였고,
이들중특히Rhodosporidium paludigenum 328- GY-1
의배양상등액이18.1%
로가장높은활성을보였다.
무세포추출물의경우모두
24
효모균주들에서저해활성 을보였고특히Pseudozyma hubeiensis 228-S-1
의무세포 추출물이19.6%
로가장높아최종적으로항통풍성xanthine oxidase
저해물질생산균주로선발하였다.
항통풍성
xanthine oxidase
저해물질생산균주로선발된Table 2. Yeasts species from wild flowers in Songak Mt. and Sungsan-ilchulbong of Jeju island, Korea.
No. Putative species Isolated
No.
Related Genbank
sequence Identity (%)
1 Candida parapsilosis 78-J-1 HE605209.1 612/613(99)
2 Candida sp. 80-J-3 DQ655679.1 588/592 (99)
90-J-1 HM222574.1 530/531 (99)
78-J-2 HM222578.1 529/530 (99)
67-J-1 AY740167.1 404/424 (95)
3 Cryptococcus aureus 86-J-3 HQ832810.1 528/529 (99)
4 Debaryomyces hansenii 80-J-2 JQ026331.1 321/327 (98)
89-J-2 JQ026331.1 321/327 (98)
5 Metschnikowia reukaufii 67-J-3 FJ455114.1 550/554(99)
6 Metschnikowia pulcherrima 66-J-1 AY235809.1 332/338 (99)
7 Nakazawaea holstii 63-J-1 AB449811.1 628/643 (97)
83-J-1 AB449811.1 628/643 (97)
8 Pichia guilliermondii 89-J-1 EU568971.1 603/607 (99)
9 Pseudozyma aphidis 66-J-2 HQ832804.1 440/440 (100)
77-J-1 JN942666.1 439/441 (99)
64-J-1 N942666.1 439/441 (99)
94-J-3 JN942666.1 439/441 (99)
10 Pseudozyma rugulosa 84-J-1 JN942670.1 726/737 (98)
86-J-2 AF294697.1 718/742 (96)
90-J-2 AF294697.1 726/728 (99)
11 Pseudozyma sp. 71-J-1 AM160637.1 441/442 (99)
12 Rhodosporidium paludigenum 86-J-1 HQ670676.1 605/607 (99)
89-J-3 HQ670676.1 607/607 (100)
92-J-2 HQ670676.1 605/607 (99)
94-J-2 HQ670676.1 607/607 (100)
13 Sporobolomyces ruberrimus 63-J-2 AY015439.1 595/598 (99)
65-J-1 AY015439.1 588/602 (97)
70-J-1 AY015439.1 588/602 (97)
87-J-1 AY015439.1 588/602 (97)
94-J-1 AY015439.1 588/602 (97)
95-J-2 AY015439.1 588/602 (97)
14 Starmerella bombicola 80-J-1 HQ111046.1 504/506(99)
Table 3. Xanthine oxidase (XOD) inhibitory activities of the isolated yeasts. (Unit: %) Yeast strains Extracelluar XOD inhibitory activity Intracelluar XOD inhibitory activity
1 Candida parapsilosis 78-J-1 4.4(±0.5) n.d
a2 Candida sp. 277-GG1-2 n.d n.d
333-GW-1 n.d n.d
334-GW-1 n.d n.d
67-J-1 n.d n.d
78-J-2 10.4(±0.6) n.d
80-J-3 5.6(±0.8) n.d
90-J-1 n.d 4.7(±0.7)
3 Cryptococcus aureus 86-J-3 n.d n.d
225-S-2 n.d n.d
282-GG1-3 n.d n.d
4 Cryptococcus flavescens 330-GY-1 n.d n.d
5 Cryptococcus flavus 274-GG1-1 7.3(±0.2) n.d
6 Cryptococcus laurentii 222-S-2 6.2(±0.6) 8.7(±0.5)
7 Cryptococcus sp. 337-GW-1 7.8(±0.9) n.d
339-GW-1 n.d n.d
8 Debaryomyces hansenii 80-J-2 n.d n.d
89-J-2 n.d n.d
9 Hanseniaspora uvarum 319-GS-1 5.2(±0.2) n.d
325-GS-1 n.d n.d
326-GS-1 12.5(±0.3) n.d
327-GS-1 n.d n.d
10 Lachancea thermotolerans 225-S-1 13.4(±0.4) 9.7(±0.8)
227-S-2 9.9(±0.5) 8.5(±0.4)
11 Metschnikowia koreensis 277-GG1-1 16.8(±0.9) n.d(±0.6)
12 Metschnikowia pulcherrima 66-J-1 6.8(±0.3) n.d
13 Metschnikowia reukaufii 67-J-3 n.d n.d
324-GS-1 n.d n.d
14 Metschnikowia viticola 326-GS-2 13.1(±0.5) 17.8(±0.9)
15 Nakazawaea holstii 63-J-1 n.d n.d
83-J-1 n.d n.d
16 Pichia fermentans 331-GY-2 n.d n.d
17 Pichia guilliermondii 89-J-1 n.d n.d
321-GS-1 n.d n.d
18 Pseudozyma aphidis 64-J-1 n.d n.d
66-J-2 9.4(±0.5) n.d
77-J-1 15.2(±0.6) n.d
94-J-3 n.d
19 Pseudozyma hubeiensis 222-S-1 n.d n.d
228-S-1 n.d 19.6(±0.8)
20 Pseudozyma rugulosa 269-GG1-1 n.d 4.1(±0.3)
269-GG1-2 n.d n.d
269-GG1-3 n.d n.d
270-GG1-1 n.d 7.5(±0.5)
271-GG1-1 n.d 12.4(±0.7)
323-GS-1 5.1(±0.5) 17.8(±0.5)
328-GY-3 n.d n.d
329-GY-2 n.d n.d
330-GY-2 n.d n.d
335-GW-1 12.9(±0.8) 15.8(±0.6)
337-GW-2 n.d n.d
84-J-1 n.d n.d
86-J-2 1.8(±0.9) 9.5(±0.9)
90-J-2 n.d n.d
Pseudozyma hubeiensis 228-S-1
은필자등이국내미기록 효모로보고[5]
한균주로서국내에서는이균의특성이나산 업적응용성에관한연구는실시되지않았고다만Takahashi
등[27]
이Pseudozyma hubeiensis
의대두유배양물에함유된mannosylerythritol
과이들의유도체가항산화활성과SOD
활성이우수하였음을보고하였을뿐이다.
Xanthine oxidase 저해물질 생산조건
Pseudozyma hubeiensis 228-S-1
의xanthine oxidase
저 해물질생산에미치는배양시간의영향을조사한결과는Fig.
1
과같다. Pseudozyma hubeiensis 228-S-1
을YEPD
배지에 접종하여30
oC
에서배양하였을때생육은48
시간에최고를보였으나항통풍성
XOD
저해물질은대수기말기인36
시간배양한무세포추출물에서제일높았다
. Table 3. Continued.
Yeast strains Extracelluar XOD inhibitory activity Intracelluar XOD inhibitory activity
21 Pseudozyma sp. 71-J-1 n.d n.d
22 Rhodosporidium fluviale 281-GG1-1 7.4(±0.5) n.d
340-GW-2 n.d 10.2(±0.4)
23 Rhodosporidium paludigenum 86-J-1 n.d n.d
89-J-3 16.5(±0.6) n.d
92-J-2 n.d 3.8(±0.9)
94-J-2 n.d n.d
328-GY-1 18.1(±0.5) n.d
329-GY-1 n.d 7.3(±0.9)
24 Rhodotorula glutinis 222-S-3 6.1(±0.5) n.d
282-GG1-1 9.1(±0.6) n.d
25 Rhodotorula mucilaginosa 331-GY-4 n.d 12.0(±0.7)
340-GW-1 n.d n.d
26 Rhodotorula sp. 332-GY-2 4.4(±0.3) 3.2(±0.9)
27 Saccharomyces cerevisiae 272-GG1-1 n.d 1.9(±0.2)
274-GG1-2 n.d 2.4(±0.1)
322-GS-2 n.d 2.7(±0.6)
328-GY-2 n.d 1.9(±0.9)
28 Sporidiobolus pararoseus 270-GG1-2 11.8(±0.9) 7.7(±0.8)
323-GS-2 n.d n.d
29 Sporisorium loudetiae-pedicel-
latae 332-GY-3 n.d 18.6(±0.5)
30 Sporobolomyces carnicolor 226-S-1 n.d n.d
228-S-2 9.8(±0.9) n.d
31 Sporobolomyces phaffii 223-S-3 n.d n.d
224-S-2 n.d n.d
32 Sporobolomyces ruberrimus 63-J-2 n.d
65-J-1 n.d n.d
70-J-1 n.d n.d
87-J-1 n.d n.d
94-J-1 n.d n.d
95-J-2 n.d n.d
33 Starmerella bombicola 80-J-1 n.d 17.8(±0.9)
a
n.d; not detected.
Fig. 1. Effect of cultural time on the xathine oxidse (XOD)
inhibitory activity of Pseudozyma hubeiensis 228-S-1.
항통풍성
XOD
저해활성물질에관한주요연구로Song
등[25]
은Phellinus linteus
버섯자실체의70%
에탄올추출 물이XOD
저해활성을보였다고보고하였고서등[19]
은청 미래덩굴잎발효차의에탄올추출물에서,
김등[13]
은주박(
술지게미)
의열수와에탄올추출물에서XOD
저해활성이있 었음을보고하였다.
그러나아직까지이들의생산과산업적 이용및물질특성에관한연구는실시되지않았고따라서 최근증가하고있는통풍질환을예방하기위해배양이용 이하고단시간에대량배양이가능한본연구의선발균주를 이용한항통풍성건강소재개발에관한연구가현재진행되 고있다.
요 약
국내야생화들로부터효모를분리하여이들을고부가가치 의의약이나건강식품산업에응용하기위한연구의일환으 로경기도와제주도일부지역의야생화들을채집하여효모
들을 분리
,
동정하고 이들 가운데 항통풍성xanthine
oxidase
저해물질생산균주를선발한후생산조건을검토하였다
.
서울구로동과일부경기도지역야생화31
점에서26
종, 54
균주의 효모들을 분리,
동정하였고 이들 중Pseudozyma sp.
가13
종으로가장많이분리되었다.
제주도 송악산과성산일출봉지역의야생화21
점에서모두14
종, 32
균주의 효모들을 분리,
동정하였고,
이들 균 중에서Sporobolomyces ruberrimus
가6
종으로가장 많이분리되 었다.
86
효모균주들을YEPD
배지에서2
일간배양하여각각의 배양상등액과무세포추출물을제조한후이들의항통풍성Xanthine oxidase
저해활성을 측정한 결과, Pseudozyma hubeiensis 228-S-1
의무세포추출물이19.5%
의가장높은Xanthine oxidase
저해활성을 보였다.
또한Pseudozyma hubeiensis 228-S-1
을YEPD
배지에 접종하여30
oC
에서36
시간배양하였을때,
세포내항통풍성xanthine oxidase
저해물질을가장많이생산하였다.
Acknowledgments
This study was funded by the project on survey and excavation of Korean indigenous species of NIBR under the Ministry of Envi- ronment, Republic of Korea.
References