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Characterization of Tryptamine-Producing Bacteria Isolated from Commercial Salted and Fermented Sand Lance Ammodytes personatus Sauces

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Copyright © 2016 The Korean Society of Fisheries and Aquatic Science pISSN:0374-8111, eISSN:2287-8815

서 론

전통수산발효식품인액젓은어류또는패류에고농도의 가하여원료에존재하는미생물과효소작용으로발효되기 때문에원료특유의맛과풍미가있으나비위생적인환경에 출되어유해미생물이증식하면제품에부정적인영향을미친

.

발효식품에서가장대표적인화학적위해요인인

biogenic

amines

단백질을 함유한식품이부패하거나 발효과정에서

유리아미노산이미생물의 탈탄산효소작용에 의해생성되는 질소화합물로 화학적 구조에 따라 지방족화합물

(putrescine, cadaverine, agmatine, spermine, spermidine),

방향족화합물

(tyramine, 2-phenylethylamine, noradrenaline, dopamine)

리고헤테로고리 화합물

(histamine, tryptamine, serotonin)

나뉜다

(Shalaby, 1996; Gardini et al., 2016).

신선한어류일

우에는

biogenic amines

매우낮은수준으로존재하기때문 그것이증가하면미생물의오염을의심할있으므로이를 어류의신선도또는부패정도를측정하는척도로사용될

(Fernandes-Salfuero and Mackie, 1987). Biogenic amines

체내에서

·

간접적으로중추신경전달물질로작용하고 압조절혈류등의심혈관에도영향을미치며

,

다량섭취하였 경우신진대사에이상이생기고

,

호흡곤란

,

홍조와두통

,

스꺼움

,

오한

,

설사

,

비정상적인경련등을유발한다

(Kim et al., 2012; Biji et al., 2016).

일반적으로고등어

,

꽁치

,

참치정어 등의적색육어류는백색육어류에비해

histamine

생성량 많으며

histamine

포함된식품을다량섭취하게되면

,

호흡곤란

,

발열

,

홍조

,

발한

,

심계항진

,

두통

,

구강작열통

,

,

경련

,

홍반

,

혈압상승강하

,

두드러기등이발생할있으

, scombrotoxin

유발한다

(Fritz and Baldwin, 2003). Tyra-

시판 까나리(Ammodytes personatus) 액젓에서 분리한 tryptamine 생성균의 특성

엄인선·김태옥·김희대

1

·박권삼*

군산대학교 식품생명공학과, 1충북도립대학 바이오생명의약과

Characterization of Tryptamine-Producing Bacteria Isolated from Commercial Salted and Fermented Sand Lance

Ammodytes personatus Sauces

In-Seon Um, Tae-Ok Kim, Hee-Dai Kim

1

and Kwon-Sam Park*

Department of Food Science and Biotechnology, Kunsan National University, Gunsan 54150, Korea

1

Department of Biotechnology and Biomedicine, Chungbuk Provincial College, Cheongju 28160, Korea

We isolated seven tryptamine-producing bacteria from commercial salted and fermented sand lance ( Ammodytes personatus ) sauces using an L-tryptophan decarboxylating medium. These tryptamine-producing bacteria, identified using an API kit and 16S rRNA analysis, included Lysinibacillus xylanilyticus (one strain), Lysinibacillus fusifor- mis (four strains), and Staphylococcus epidermidis (two strains). Lysinibacillus spp. produced the highest levels of tryptamine in culture broth containing 0.5% L-tryptophan, compared with 1.0% and 2.0% preparations. After 72 h of incubation, Staphylococcus epidermidis produced the highest levels of tryptamine (60.50 μg/mL and 664.86 μg/

mL) in culture broth containing 2.0% L-tryptophan. While Lysinibacillus spp. comprised the dominant tryptamine- producing bacteria in sand lance sauces, Staphylococcus epidermidis also showed high tryptamine-producing activ- ity. This is the first report on the isolation and identification of tryptamine-producing bacteria in sand lance sauces.

Key words: Ammodytes personatus, Fish sauces, Biogenic amines, Tryptamine producing bacteria

This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial Licens (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

http://dx.doi.org/10.5657/KFAS.2016.0792 Korean J Fish Aquat Sci 49(6) 792-799, December 2016

Received 24 October 2016; Revised 19 November 2016; Accepted 30 November 2016

*Corresponding author: Tel: +82. 63. 469. 1822 Fax: +82. 63. 469. 7448

E-mail address: [email protected]

(2)

mine

체내에서

monoamine oxidase

의해무독화되지만 울증치료제인

MAOI (monoamine oxidase inhibitor)

같이 복용할경우에는효소활성이저해되어

‘cheese reaction’

고혈압증상과편두통을유발하기도한다

(Blackwell, 1963;

Joostern, 1988).

한국인에게

biogenic amines

섭취는대부분 김치

,

장류젓갈등의발효식품으로기인되기때문에

MAOI

복용하는사람은가급적

biogenic amines

함량이높은발효 식품섭취를자제할것을권고하고있다

(Cho et al., 2006).

미국 수산물에대해

histamine

50 mg/kg

넘지않도록규정하 있으며

(USFDA, 2011),

유럽연합은신선어류에대해

hista- mine

200 mg/kg

이하훈제어류제품은

400 mg/kg

이하로 규정하고있으며

(Yang et al., 2014),

캐나다는멸치와발효 스에대해최대

200 mg/kg,

외의어류어류가공품에대해 서는최대

100 mg/kg

으로규정하고있다

(Canadian Standards for Various Chemical Contaminants in Food, 2012).

우리나라 냉동어류

,

염장어류

,

통조림

,

건조

/

절단단순처리한식품 경우에는

histamine

함량을

200 mg/kg

이하로설정되어 으나

(KMFDS, 2016),

액젓의경우

biogenic amines

대한 또는규격은설정되어있지않아수산식품위생국민건강 위해

biogenic amines

관리의필요성이꾸준히제기되고

.

액젓에존재하는

biogenic amines

tryptamine

함량에 과거연구로는시판멸치액젓

10

제품의

tryptamine

함량 평균

70.41-482.86 mg/kg

으로측정되었다는결과

(Kim et al., 2011)

8

멸치액젓

, 8

까나리액젓과

5

새우액젓의

tryptamine

함량은

60.1-296.8, 62.0-187.2

5.3-10.6 mg/kg

으로측정되었다는결과도있다

(Cho et al., 2006).

현재액젓 외의다른발효식품의경우

biogenic amines

생성균에관한 구는다수보고되어있으나전통수산발효식품인까나리액젓 에서

biogenic amines

생성균에관한연구보고는거의없는 정이다

.

따라서논문은국내시판까나리액젓에서

biogenic amines

종류인

tryptamine

생성균을분리

,

동정특성

검토하여

tryptamine

저감화를위한기초자료로제공하고

한다

.

재료 및 방법

재료 및 시약

실험에사용한까나리액젓은대형마트도매시장에서시판 되고있는제품으로

B

(

경기인천

), C

(

경기안성

), D

(

천안

), G

(

전북부안

), H

(

충남논산

), K

(

충남홍성

), N

(

충남논산

)

7

제품을구입하여실온에보관하면서분석 사용하였다

. Tryptamine (98%), 1,7-diaminoheptane (I.S.)

dansyl chloride

Sigma-Aldrich (Switzerland)

제품을

, acetonitrile

HPLC

급을사용하였으며

, ether

등은특급시약 사용하였다

.

또한유전자증폭은

Takara (Otsu, Japan)

사의

Ex Taq polymerase

제품

,

항균제디스크는

Becton Dickinson

(BBL Sensi-Disk, Sparks, MD, USA)

사의제품각종항균 제는

Sigma (St. Louis, MO, USA)

사의제품을사용하였다

. Tryptamine 생성균의 분리

Tryptamine

생성균의분리는

Zaman et al. (2011)

방법을 약간변형하였는데까나리액젓

1 mL

탈탄산배지

[tryptone (0.5%), yeast extract (0.5%), sodium chloride (3%), glucose (0.1%), tween 80 (0.05%), MgSO

4

·7H

2

O (0.02%), CaCO

3

(0.01%), MnSO

4

·4H

2

O (0.005%), FeSO

4

·7H

2

O (0.004%), bromocresol purple (0.006%), L-tryptophan (2%) and agar (2%)]

접종하여

35℃

에서

48

시간배양한 보라색환을 띄는집락은

Luria-Bertani (tryptone 1%, yeast-extract 0.5%, NaCl 3%) broth

접종하고

35℃

에서하룻밤진탕배양 균된글리세린을최종농도

15%

되도록첨가하여

Cryovial storage box (Simport, Canada)

넣어

-80℃

보관하면서 험에사용하였다

.

분리 균주의 동정

균주는형태학적

,

생화학적

16S rRNA

염기서열결정등의 결과를종합하여동정하였다

.

균주를그람염색하여광학현미

(Olympus CX31, Philippines)

으로형태를관찰하였으며

,

화학적특징은

API Staph kit

API 50 CHB kit (BioMerieux,

France)

사용하여분석하였다

.

또한

16S rRNA

염기서열 석을위한

genomic DNA

추출은

Genomic DNA extraction kit

(Qiagen, USA)

사용하여정제하였으며

, 16S rRNA

증폭용

primer (Dunbar et al., 2000)

27F primer (5'-AGAGTTT-

GATCCTGGCTCAG-3')

1492R primer (5'-TACCTTGT-

TACGACTT-3')

사용하였다

. PCR

반응액은

0.5 µL (2.5 U)

Taq polymerase, 5.0 µL Taq polymerase buffer (10×), 4.0 µL

2.5 mM dNTP, 35.5 µL

증류수에

20 pmol

primer 2.0

µL

1.0 µL

주형

DNA

첨가하여총량이

50 µL

되도 준비하였다

. DNA

증폭을위한

PCR

반응조건은

95℃

3

분간

1

변성

95℃ 30

, 55℃ 30

, 72℃ 2

분을 단위로하여이를

30

반복하여

DNA

증폭하였으며유전 증폭에는

GeneAmp PCR system 9700 (Applied Biosys-

tems, USA)

사용하였다

. PCR

증폭산물은

1.5% agarose gel

(Sigma, USA)

에서전기영동

ethidium bromide

염색하여 목적

DNA

증폭여부를확인하였으며목적

DNA

QIAEX

II Gel Extraction kit (Qiagen, USA)

정제하여

pT7Blue T

Vector (Novagen, USA)

TA cloning

다음

Escherichia coli

DH5α

형질전환하였으며

plasmid DNA

QIAprep Spin

Miniprep kit (Qiagen, USA)

정제하여염기서열을결정하였

. DNA

염기서열결정은

ABI310 sequencers (Applied Bio-

systems, Foster City, CA, USA),

유전자서열분석은

DNASIS

MAX v3.0 program (Hitachi Software, Tokyo, Japan)

유전 자의상동성은

NCBI (http://www.ncbi.nim.ni h.gov/BLAST)

통하여검색하였다

.

(3)

항균제 내성 검사

각종항균제에대한감수성은

Acar and Goldstein (1991)

디스크확산법과미국

NCCLS (National Committee for Clini- cal Laboratory Standards, 2002)

준하여시험하였다

.

식염

3%

첨가된

LB broth

시험균주를접종하여

35℃

에서하룻밤 배양한멸균생리식염수로

2

세정하고농도를

McFarland No. 0.5

조정하여두께

0.4 mm

Muller Hinton agar (Mer- ck, Germany)

평판에균을도말하였다

.

여기에검사항균제 스크를고착하여

35℃

에서

16-18

시간배양한항균제에 의해형성된생육저지환의크기를측정하고표준지표에따라 감수성여부를 평가하였다

.

시험 항균제 디스크는

amikacin (AK; 30 µg), amoxicillin (AML; 10 µg), ampicillin (AMP; 10 µg), bacitracin (B, 10 unit), cefepime (FEP; 30 µg), cefotax- ime (CTX; 30 µg), cefotetan (CTT; 30 µg), cefoxitin (FOX;

30 µg), cefuroxime (CXM; 30 µg), ceftriaxone (CRO; 30 µg), cephalothin (KF; 30 µg), cephazolin (KZ; 30 µg), chloram- phenicol (C; 30 µg), ciprofloxacin (CIP; 5 µg), clindamycin (CC; 2 µg), erythromycin (E; 15 µg), gentamicin (GN; 10 µg), imipenem (IPM; 10 µg), kanamycin (K; 30 µg), nalidixic acid (NA; 30 µg), nitrofurantoin (F; 100 µg), norfloxacin (NOR;

10 µg), oxacillin (OX; 1 µg), penicillin (P; 10 µg), pipemidic acid (PIP; 20 µg), rifampin (RD; 5 µg), streptomycin (S; 10 µg), sulfamethoxazole/trimethoprim (SXT; 23.75/1.25 µg), tetracycline (TE; 30 µg), ticarcillin (TIC; 75 µg), trimethoprim (W; 5 µg), vancomycin (VA; 30 µg)

32

종을사용하여검토 하였다

.

항균제 최소발육억제농도(Minimum Inhibitory Con- centration, MIC)의 측정

내성을 나타내는 항균제에 대한 최소발육억제농도는 미국

NCCLS (National Committee for Clinical Laboratory Stan- dards, 2002)

기초하여변법으로측정하였다

.

멸균된

Muller- Hinton broth (Merck, Germany)

2,048 µg/mL

에서

1 µg/mL

까지절반씩농도를달리한검사항생제를첨가한멸균된 형시험관에배지를

2 mL

분주하고여기에식염이

3%

첨가

LB broth

에서하룻밤배양한균액

2 μL

접종하여

35℃

에서

16

시간정치배양증식여부는육안으로확인하여 소발육억제농도를측정하였다

.

효소활성 측정

Tryptamine

생성하는균주가생산하는효소효소활성은

API ZYM kit (BioMerieux, France)

사용하여측정하였다

.

시험균주는

LB agar (NaCl 3%)

에서하룻밤배양한균체를 회수하여

PBS (phosphate buffered saline, 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na

2

HPO

4

·2H

2

O, 2.0 mM KH

2

PO

4

, pH 7.4)

현탁하여

Mcfarland

탁도

5-6

으로조정하였다

.

조정된균은

API ZYM kit

cupule

65 µL

접종하고

37℃

에서

4

배양하여색깔변화로효소활성을측정하였다

.

Tryptamine 생성량의 측정

Tryptamine

생성량은

Mah et al. (2003)

방법을변형하여 정하였다

.

배지

[LB broth (NaCl 3%)

tryptophan

0.5%, 1.0%

2.0%

첨가하고

pH

5.8

맞춘

pyridoxal-HCl 0.0005%

첨가

] 5 mL

하룻밤배양한시험균주배양액

50 μL

접종하여

35℃

에서진탕하면서배양

24, 48

72

시간 후의상층액을

0.45 μm syringe filter

여과하여배지에생성

tryptamine

량은

HPLC

측정하였다

. Tryptamine

표준 질은

0.1N HCl

녹여최종농도를

500 μg/mL

조정하였으

,

내부표준물질

(1,7-diaminoheptane)

0.1N HCl

녹여 농도를

100 μg/mL

조정하여표준용액으로사용하였다

.

Tryptamine

생성능측정은식품공전에수록된수산물에대한

규격

(KMFDS, 2016)

준하여실시하였다

.

표준용액

용액

(

배양액

) 1 mL

시험관에취하고여기에내부표준용

0.1 mL,

포화탄산나트륨용액

0.5 mL

1% dancyl chloride

용액

0.8 mL

가하여충분히혼합한마개를하여

45℃

1

시간유도체화하였다

.

여기에

10% proline

용액

0.5 mL

ether 5 mL

가하여

10

분간진탕하고상층액을취하여질소 가스로농축한

acetonitrile 1 mL

가하여녹이고

0.2 μm syringe filter

여과하여

HPLC system (YL 9100, YoungLin Instrument Co., Ltd., Korea)

으로분석하였으며

,

분석조건은

Table 1

같다

.

결과 및 고찰

시판 까나리액젓에서 tryptamine 생성균의 분리 Biogenic amines

저감화를위한방안을강구하기위하여 Table 1. Instrument condition for HPLC analysis of tryptamine

Parameter Conditions

Detector UV

Column Carbamate Column C18

(4.6×250 nm×5 μm)

Column temp 40℃

Flow rate 1 mL/min

Run time 35 min

Wavelength 254 nm

Gradient elution (min) ACN1 (%) H2O (%)

0 55 45

15 65 35

25 80 20

35 90 10

1ACN, acetonitrile.

(4)

까나리액젓에서

tryptamine

생성균의 분리를시도하였다

. Tryptamine

생성균은 분리 배지에전구체인

L-tryptophan

존재하면

amino acid decarboxylase

작용에의해

L-trypto- phan

tryptamine

으로전환되며이때배지의

pH

알칼리성

으로바뀌어분리배지에존재하는지시약에의해

colony

주변

에는보라색또는자주색환이형성된다

. 7

종의시판까나리액

1 mL

분리배지에접종하여배양한결과

,

배지에형성 전체균수는

5.0×10

0

CFU/mL

에서

1.0×10

2

CFU/mL

이로대체로적었으며

colony

주위에보라색환을형성

하여

tryptamine

생성균주로추정되는

7

균주는순수분리하여

-80℃ deep freezer

보관하면서실험에사용하였다

. 분리 균주의 동정

Tryptamine

생성균주로추정되는

7

균주는형태학적

,

생화학 유전학적방법을사용하여동정하였다

.

그람염색결과

, 5

균주는형태학적으로그람양성간균이며나머지

2

균주는 양성구균으로확인되었다

.

그람양성간균은

API 50 CHB kit

생화학적특성을검토한결과

, 5

균주모두

Bacillus non- reactive (65.7-87.5%

상동성

)

동정되었다

.

또한그람양성 구균의

2

균주를

API Staph kit

생화학적특성을분석한

, 2

균주는

Staphylococcus epidermidis

84.9%

97.9%

상동성을보였다

(Table 2).

분리균주의

16S rRNA

유전자 염기서열을결정하기위하여

Dunbar et al. (2000)

제안

universal primer set (27F

1492R)

사용하여

PCR assay

결과

,

모든균주에서

1,500 bp

전후의증폭산물을 있었다

(

자료미제시

). 16S rRNA

유전자염기서열결과

NCBI

BLAST

통하여상동성을 검색한결과

,

그람양 간균

5

균주

4

균주는

Lysinibacillus fusiformis strain L84 (98.14-99.21%

상동성

)

1

균주는

Lysinibacillus xylani- lyticus strain B85 (97.32%

상동성

)

동정되었다

.

또한 화학적분석에서

Staphylococcus epidermidis

상동성을나타

2

균주의

16S rRNA

유전자염기서열결과는

Staphylococ- cus epidermidis strain L29

99.27

99.34%

상동성을

였다

(Table 2).

결과적으로 시판 까나리액젓에서

tryptamine

생성하는우점종은

Lysinibacillus spp.

Staphylococcus spp.

확인되었다

.

연구에서분리한

L. fusiformis

L. sp-

hearicus

균주의병원성에관한연구결과는전혀검색되지

으며

, S. epidermidis

사람피부의상재균으로정상숙주에서 병원성이낮지만면역력이약화되면심내막염

,

각막염 드름을유발하는기회병원균으로알려져있다

(Otto, 2012).

Moon et al. (2013)

멸치까나리액젓에서히스타민 성균으로

Bacillus licheniformis A7

B. coagulans SL5

리하였다는 보고가있으며

,

멸치젓에서분리한

Paenibacillus tyraminigenes

tyramine

생성능이우수한것으로보고

(Mah et al., 2008)

되어있으나까나리액젓에서

tryptamine

생성균의 분리동정에관한연구는아직없는실정이다

.

항균제 내성 및 최소발육억제농도(Minimum Inhibi- tory Concentration, MIC)의 검토

까나리액젓에서

tryptamine

생성균주로분리한

7

균주를대상 으로

32

종의항균제에대한내성감수성을디스크확산법으 검토한결과

, 32

종의항균제

nalidixic acid

bacitracin

제외한나머지

30

종의항균제에는

7

균주모두감수성을 였다

(

자료미제시

). 3

균주는

nalidixic acid

내성을나타내

MIC

128 μg/mL

측정되었다

. Bacitracin

내성을 타내는균주는

1

, 2

4

균주였으며

MIC

3

균주모두

512 μg/mL

이였다

. Tryptamine

생성하는

7

균주모두대부분 항균제에감수성을나타내는이유는연구대상식품의 료인까나리가항균제에노출될기회가전혀없었거나적었기 때문인것으로판단된다

.

Tryptamine 생성 균주의 효소활성검토

Biogenic amines

단백질을함유한식품에서 세균의탈탄 효소작용에의해생성되기때문에탈탄산효소를포함한 활성의검토는분리균주의효소학적특성을파악하는데 요하며

,

또한연구에서분리한

(Species)

대한효소 Table 2. Identification of tryptamine producing bacteria

Characters Strain No.

1 2 3 4 5 S1 S2

Gram stain + + + + + + +

Morphology rod rod rod rod rod cocci cocci

API test API 50CHB API STAPH

BNR1 BNR BNR BNR BNR S. epidermidis S. epidermidis

Identity (%) 65.7 65.7 65.7 87.5 65.7 84.9 97.9

16S rRNA Ly. xylanilyti-

cus2 Ly. fusiformis3 Ly. fusiformis Ly. fusiformis Ly. fusiformis S. epidermi-

dis4 S. epidermidis

Identity (%) 97.32 99.08 98.26 99.21 98.14 99.27 99.34

1BNR, Bacillus non-reactive; 2Ly. xylanilyticus, Lysinibacillus xylanilyticus; 3Ly. fusiformis, Lysinibacillus fusiformis; 4S. epidermidis, Staphylococcus epidermidis.

(5)

성의연구결과가없다는점도검토의필요성으로대두되었다

.

따라서

tryptamine

생산하는

7

균주에대한효소활성은

API ZYM Kit

사용하여검토하였다

(Table 3). 20

종류의모든 활성이확인되지않은균주는

3

균주이며

,

나머지

6

균주도

1-3

종류의일부효소에서만활성을나타내어전체적으로활성 나타내는효소는적었다

. Lysinibacillus fusiformis (2

, 4

5

균주

)

esterase (C4)

esterase lipase (C8)

5 nmol

정도의활성을보였고

, Lysinibacillus xylanilyticus (1

균주

)

esterase (C4), esterase lipase (C8)

α-chymotrypsin

활성은

5 nmol

정도로확인되었다

.

또한

Staphylococcus epidermidis (S1

S2

균주

)

acid phosphatase

에서

20 nmol

정도의효소활성을나타낼다른종류의효소활성은확인되 않았다

(Table 3).

결과적으로효소활성을나타내는

6

균주 효소활성결과를보고되어있는유산균

Pediococcus pen- tosaceus SH-10 (Shin et al., 2012)

Lactobacillus salivarius CPM-7 (Lim et al., 2007)

비교해보면활성을나타내는효소 종류가적고효소활성도유산균에비해현저하게낮은것으 파악되었는데

,

이는비교대상의균주와는

(Genus)

르기때문인것으로판단된다

.

조건에 따른 분리 균주의 tryptamine 생성량 측정 Tryptamine

표준물질의농도에따른검량선은

R

2값이

0.9987

거의직선이며

, retention time (RT)

17.43

분에분리된 피크를확인하였다

(Fig. 1A

1B). Tryptamine

생성

7

균주 전구체인

L-tryptophan

0.5%, 1.0%

2.0%

첨가된

LB broth (NaCl 3%) 5 mL

접종하여

24, 48

72

시간배양 배지에생성된

tryptamine

량은

HPLC

측정하였다

(Table 4).

Table 4

나타낸바와같이

1

번에서

5

균주까지

5

균주는 지에

L-tryptophan

0.5%

첨가한배지에서

tryptamine

생성 량이가장높았으며

L-tryptophan

첨가량이많아질수록

trypt-

amine

생성량은감소하는경향을보였다

.

결과는배지에

전구체인

L-tryptophan

함량이높아질수록증식을저해하 거나또는탈탄산효소의작용을억제하기때문인것으로판단 되어증식을흡광도로측정한결과

,

증식은

L-tryptophan

0.5%

첨가한배지조건에서가장빠른것으로확인되었다

(

결과미제시

).

배양시간에따른

tryptamine

생성량은균주에 따라달랐는데

24

시간배양에서생성량이가장많은균주는

2

균주

(1

5

번균주

), 48

시간배양가장생성량이많은균주

1

균주

(4

번균주

)

72

시간배양가장생성량이많은

2

균주

(2

Table 3. Enzymatic activities of tryptamine producing bacteria by API ZYM analysis

Enzyme Strain No.

1 2 3 4 5 S1 S2

Control 01 0 0 0 0 0 0

Alkaline phosphate 0 0 0 0 0 0 0

Esterase (C4) 1 1 0 1 1 0 0

Esterase Lipase (C8) 1 1 0 1 1 0 0

Lipase (C14) 0 0 0 0 0 0 0

Leucine arylamidase 0 0 0 0 0 0 0

Valine arylamidase 0 0 0 0 0 0 0

Crystine arylamidase 0 0 0 0 0 0 0

Trypsin 0 0 0 0 0 0 0

α-chymotrypsin 1 0 0 0 0 0 0

Acid phosphatase 0 0 0 0 0 3 3

Naphtol-AS-BI-phosphohydrolase 0 0 0 0 0 0 0

α-galactosidase 0 0 0 0 0 0 0

β-glucuronidase 0 0 0 0 0 0 0

β-glucosidase 0 0 0 0 0 0 0

α-glucosidase 0 0 0 0 0 0 0

β-glucosidase 0 0 0 0 0 0 0

N-acetyl-β-glucosaminidase 0 0 0 0 0 0 0

α-mannosidase 0 0 0 0 0 0 0

α-fucosidase 0 0 0 0 0 0 0

10, 0 nmol; 1, 5 nmol; 2, 10 nmol, 3, 20 nmol.

(6)

3

균주

)

확인되었다

.

또한

Staphylococcus epidermidis strain L29

상동성이높은

S1

S2

균주는배지에전구체 농도가높아질수록또한배양시간이길어질수록

tryptamine

생성량은증가하는것으로확인되었다

(Table 4).

증식을 광도로측정한결과

,

전구체의농도와관계없이배양

24

시간 흡광도값은가장높았으며시간경과에따라흡광도값은 서서히감소하는경향을보였다

(

결과미제시

).

균주의

trypt- amine

생성량에는차이가매우심하여배양

72

시간후에는

11

이상의차이가있었는데이유를정확하게설명할 없기때문에추후수행해야연구과제의하나라고판단된다

.

또한배지에전구체의양을달리하여

biogenic amines

생성량 비교검토한기존의연구결과가없어정확히설명할수는 지만배지에첨가한전구체의농도에의해

biogenic amines

성에영향을미치는근본적인원인에관한연구도필요하다고 판단된다

. Lysinibacillus spp.

주로

lysine

ornithine decar-

boxylase

생성한다는연구가다수발표되어있으나

(Lee et al., 2010; Coorevits et al., 2012; Duan et al., 2013), tryptophan decarboxylase

관련한논문은없기에앞으로많은연구가 요하다고판단된다

.

그런점에서연구는다른발효식품에 연구가미진한우리나라전통수산발효식품인까나리액젓 에서

tryptamine

생성균주의분리

,

동정특성을검토함으로

biogenic amines

모니터링저감화를위한기초자료를 제공한다는점에서연구의의의가있다고판단된다

.

사 사

논문은

2016

년도 호남씨그랜트센타 연구개발사업

(

국내

시판용까나리액젓의바이오제닉아민정량생성균의분리 동정

)

과제지원으로수행된연구임

.

Fig. 1. Calibration curve for concentrated of tryptamine (A) and HPLC chromatograms of tryptamine (B).

17.43 3,000

2,000

1,000

0

0 10 20 30 40

Voltage (mV)

Time (min)

y = 0.078x - 0.0361

R² = 0.9987

0

0 20 40 60 80 100 120

1 2 5 4 6 7

3

Concentration (mg/L)

(A) (B)

Area

Table 4. Production of tryptamine of tryptamine producing bacteria in LB broth by incubation time and concentration of L-tryptophan

Strain No.

Incubation time

24 h 48 h 72 h

L-tryptophan concentration

0.5% 1% 2% 0.5% 1% 2% 0.5% 1% 2%

1 75.67 12.84 4.76 66.40 32.87 17.94 52.69 30.79 22.73

2 6.76 5.26 4.09 12.20 6.52 3.50 17.17 16.94 10.36

3 0.24 0.18 0.15 3.24 2.66 1.57 4.50 2.41 1.86

4 16.74 4.58 3.72 31.36 10.47 3.92 26.32 13.06 0.41

5 97.67 24.81 17.51 91.24 47.18 41.17 66.62 59.63 47.57

S1 66.85 79.42 148.01 136.58 151.09 361.44 171.98 293.20 664.86

S2 9.25 11.37 18.99 19.59 27.53 38.84 10.07 33.43 60.50

(7)

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수치

Table 4. Production of tryptamine of tryptamine producing bacteria in LB broth by incubation time and concentration of L-tryptophan

참조

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