geoA 유전자를 이용한 사상형 남조류(Nostocales, Oscillatoriales)의 Geosmin 생성능 검출
류희성1a,†․신라영2a․서경애3․이정호2b․김경현1b
1국립환경과학원 영산강물환경연구소
2대구대학교 생물교육전공
3국립환경과학원 자연환경연구과
Detection of Geosmin Production Capability Using geoA Gene in Filamentous Cyanobacteria (Nostocales, Oscillatoriales) Strains
Hui-Seong Ryu1a,† Ra-Young Shin2a Kyung-Ae Seo3 Jung-Ho Lee2b Kyunghyun Kim1b
1Yeongsan River Environment Research Center, National Institute of Environmental Research
2Department of Biology Education, Daegu University
3Natural Environment Research Division, National Institute of Environmental Research (Received 17 September 2018, Revised 23 November 2018, Accepted 28 November 2018)
Abstract
Geosmin is volatile metabolites produced by a range of filamentous cyanobacteria which causes taste and odor problems in drinking water. Molecular ecological methods which target biosynthetic genes (geoA) are widely adopted to detect geosmin-producing cyanobacteria. The aim of this study was to investigate the potential production capability of 8 strains isolated from the Nakdong River. Ultimately, a suggestion for a genetical monitoring tool for the identification of geosmin producers in domestic waters was to be made. Geosmin was detected using solid phase microextraction gas chromatography mass spectrometry (SPME GC-MS) in two strains of Dolichospermum plactonicum (DGUC006, DGUC012) that were cultured for 28 day. The highest concentrations during the experiment period was 17,535 ngL-1 and 14,311 ngL-1 respectively. Additionally, geoA genes were amplified using two primers (geo78F/971R and geo78F/982R) from strains shown to produce geosmin, while amplification products were not detected in any of non-producing strains. PCR product (766 bp) was slightly shorter than the expected size for geosmin producers. According to the BLAST analysis, amplified genes were at nucleotide level with Anabaena ucrainica (HQ404996, HQ404997), Dolichospermum planctonicum (KM13400) and Dolichospermum ucrainicum (MF996872) between 99 ~ 100 %.
Both strains were thus confirmed as potential geosmin-producing species. We concluded that the molecular method of analysis was a useful tool for monitoring potential cyanobacterial producers of geosmin.
Key words : Dolichospermum, Nakdong River, Odorous metabolites, Off-flavor, Pseudanabaena
1,†Corresponding author, 환경연구사(Researcher), [email protected], https://orcid.org/0000-0002-8850-3838
2 박사과정(Ph.D. Student), [email protected], https://orcid.org/0000-0001-8248-0463
3 연구원(Researcher), [email protected], https://orcid.org/0000-0002-3813-2944
4 교수(Professor), [email protected], https://orcid.org/0000-0002-1426-4555
5 소장(Director), [email protected], https://orcid.org/0000-0002-2255-0965
This is an Open-Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/
licenses/by-nc/3.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
은 화학적으로 매우 안정하여 수체 내에서 쉽게 분해되지 않으며, 인체에 대한 위해성은 없지만 맛에 대한 인간의 민감도가 10 ng L-1 이하로 매우 높아 적은 농도가 발생되 어도 불쾌감을 일으키고, 이를 처리하기 위한 비용을 발생 시킨다(Suurnäkki et al., 2015). 국내에서는 상수원으로 이 용되는 팔당호에서 1,640 ng L-1에 이르는 고농도의 geosmin 이 2011년에 검출되었으며, 이후 여름과 가을철에 지속적 으로 한강 수계의 식수 이용에 불편을 초래하였다(Byun et al., 2015; You et al., 2013).
Geosmin은 흙/곰팡이 냄새가 있는 sesquiterpene 유도체 화합물 중 하나로서, 고세균 및 방선균에서도 생성되지만 (Dickschat et al., 2007), 남조류에서는 오직 Nostocales목과 Oscillatoriales목에서만 생산되는 것으로 보고되고 있다 (Jüttner and Watson, 2007). 가스크로마토그래피 및 가스크 로마토그래프-질량분석기를 이용한 화학적 분석법은 생성 된 이취미 물질을 검출하는데 오랜 기간 사용되어 왔지만, geosmin 생성 기원을 파악하기에는 한계가 있다(Suurnäkki et al., 2015). 특히 방선균과 남조류 간의 생성기원을 구분 하기 위해서는 유전학적 분석을 통한 geosmin 생성 균주에 대한 추적연구가 필수적이다(Li et al., 2016; Watson et al., 2008). 최근 연구에서 geosmin 생합성 과정이 일부 사상형 남조류를 대상으로 밝혀지고 있다. 대표적으로 Giglio et al.
(2008)는 geosmin이 farnesyl diphosphate의 고리화 과정을 통해 생합성되며, 이 과정에서 geoA 유전자에 의해 암호화 된 geosmin synthase가 주요한 기능으로 작용함을 증명하 였다. 이를 통하여 geoA 유전자가 geosmin 생성능이 있는 균주를 검출하는 특이적인 지표(molecular marker)임을 확 인하였다(Giglio et al., 2008; Kutovaya and Watson, 2014).
세계적으로 Anabaena, Planktothrix, Pseudanabaena, Phormidium, Oscillatoria, Lyngbya 속 등에 포함되는 많은 남조류 종이 geosmin을 생성하는 것으로 알려져 있으며
널리 분포되어 있으며, 생산자를 유전학적으로 검출하기 위 해서는 다양한 종 수준의 균주를 대상으로 한 연구가 필수 적이다. 그러나 국내에서 출현하는 남조류를 대상으로 이취 미 생산자 검출에 관한 유전학적 연구는 제한적이다(Kim et al., 2014).
Geosmin 생산자의 확인은 수체에서 이취미 문제의 기원 을 파악하여 궁극적으로 상수원의 효율적인 관리를 가능하 게 한다(Li et al., 2016). 본 연구는 낙동강에서 빈번하게 출현하는 사상형 남조류(Oscillatoriales, Nostocales) 7개종 을 단종으로 분리하여, 잠재적 geosmin 생성능력을 유전학 적 및 생리생태학적으로 검토하였다. 이를 통하여 국내 수 계에서 출현하는 geosmin 발생 기원의 남조류를 신속하게 모니터링 할 수 있는 기법을 모색하고자 하였다.
2. Material and Methods
2.1 시료 채수 및 균주 분리
연구에 사용된 균주는 2016년 5월부터 12월까지 낙동강 표층수를 채수하여 분리하였으며, 현장시료에서 분리된 균 주의 자원 번호(strain number)를 붙여 관리하였다. 시료 분 석은 광학현미경(ECLIPSE 80i, Nikon, Japan)을 이용하여 정확한 동정을 실시하고 사진촬영 하였으며, 촬영된 사진은 이미지 분석 프로그램(NIS-Elements F 3.0 software, Nikon, Japan)을 통해 세포의 길이와 크기를 분석하였다. 종의 형 태적 분류는 Komárek and Anagnostidis (2005)과 Komárek (2013)을 참고하였다. 현장시료를 통해 분리된 총 8개의 균 주는 선행연구(Ryu, 2017; Ryu et al., 2017; Ryu et al., 2018)를 통하여 형태학적으로 다음의 7개의 종으로 동정되 었다(Table 1, Fig. 1). Aphanizomenon flos-aquae Ralfs ex Bornet et Flahault 1888, Planktothrix agardhii (Gomont) Anagnostidis et Komárek 1988, Geitlerinema amphibium
Species Strain code Geographical origin
Isolation Date Medium
Site name Longitude Latitude
Aphanizomenon flos-aquae DGUC001 Nakdong River (Changnyeong) 35°31ʹ40.88ʺ 128°21ʹ37.20ʺ 2016-08-31 CB Planktothrix agardhii DGUC002 Nakdong River (Gumi) 36°05ʹ59.73ʺ 128°23ʹ54.90ʺ 2016-10-10 CB Geitlerinema amphibium DGUC004 Nakdong River (Sangju) 36°27ʹ21.24ʺ 128°15ʹ30.64ʺ 2016-08-04 CB Pseudanabaena mucicola DGUC005 Nakdong River (Samryangjin) 35°22ʹ55.39ʺ 128°49ʹ07.34ʺ 2016-10-27 CB Dolichospermum planctonicum DGUC006 Nakdong River (Daegu) 35°50ʹ32.66ʺ 128°27ʹ39.00ʺ 2016-05-14 CB Dolichospermum crassum DGUC011 Nakdong River (Sangju) 36°27ʹ21.24ʺ 128°15ʹ30.64ʺ 2016-11-26 CB Dolichospermum planctonicum DGUC012 Nakdong River (Daegu) 35°50ʹ32.66ʺ 128°27ʹ39.00ʺ 2016-05-14 CB Pseudanabaena westiana DGUC013 Nakdong River (Samryangjun) 35°22ʹ55.39ʺ 128°49ʹ07.34ʺ 2016-10-27 CB Table 1. Information on strains isolated in the Nakdong River
(Agardh ex Gomont) Anagnostidis 1989, Pseudanabaena mucicola (Naumann et Huber-Pestalozzi) Schwabe 1964, Dolichospermum plankctonicum (Brunnthaler) Wacklin et al., 2009, Dolichospermum crassum (Lemmermann) Wacklin et al., 2009, Pseudanabaena westiana Anagnostidis 2001.
현장시료로부터 사상형 남조류의 균주를 분리하기 위해, 도립 현미경(DMi1, Leica, German) 400배 하에서 파스퇴르 피펫을 사용하여 멸균된 CB 배지(Shirai et al., 1989)가 담 긴 well cell culture plate로 옮겨졌으며, 이 과정을 single trichome이 분리될 때까지 반복하여 수행하였다. 분리된 균 주는 150 ml 배지가 담긴 250-ml Erlenmeyer flask에 담아 진탕배양기(HB-201SLI, Hanbaek, Korea)에서 다음 조건으 로 배양되었다; 25 °C의 온도, 80 μmol s-1m-1의 백열등 광
조건(L : D = 12 h : 12 h).
Geosmin 생성 여부를 결정하기 위해서 배양 실험은 초기 농도를 약 2.0 ×105cells mL-1가 되도록 접종하였으며, 회분 식 배양법으로 28일간 유지하였다. Geosmin 생성이 확인된 균주는 멸균된 CB medium이 담긴 250 mL Erlenmeyer flask에 전배양(pre-culture)으로 대수증식기(exponential growth phase)에 도달한 약 2.0 × 105cells mL-1의 세포를 초기 농도 로 접종하여 회분식 배양법으로 진행하였다.
2.2 DNA 추출 및 PCR 증폭
배양된 균주는 대수증식기(exponential growth phase)까지 유지되었으며, 원심분리를 통해 배양액과 균주를 분리하여 실험에 사용하였다(14,000×g, 1 min). DNA는 LaboPassTM Fig. 1. Photographs of the strains isolated in Nakdong River. Akinetes and heterocytes are indicated with
white and black arrows respectively. (a) Dolichospermum planctonicum, (b) D. crassum, (c) Aphanizomenon flos-aquae, (d) Planktothrix agardhii, (e) Geitlerinema amphibium, (f) Pseudanabaena westianam, (g) P. mucicola.
Tissue Mini (Cosmogenetech, Korea)를 사용하여 추출하였다.
PCR 반응 용액의 조성은 1.0 μL의 DNA template, 3 μL 의 10× TaKaRa Ex Taq buffer, 2.4 μL의 dNTP (10 mM), 0.5 μL의 primer (10 pmol), 0.2 μL의 TaKaRa Ex Taq poly- merase (5 Unit μL-1, TaKaRa, Ohtsu, Japan)로 구성하였으며, 전체 용량이 30 μL가 되도록 하였다. geoA유전자는 primer geo78F (Suurnäkki et al., 2015), geo971R (Giglio et al., 2008), geo982R (Suurnäkki et al., 2015)을 이용하여 증폭하 였으며(Table 2), geo78F/geo982R primer 조합은 남조류에서 geoA 유전자의 보존적 부위 905 bp를 증폭하며, Planktothrix, Cylindrospermum, Oscillatoria, Aphanizomenon, Nostoc, Calothrix 등 다양한 분류군의 균주를 대상으로 geosmin 생 산자를 검출할 수 있다(Suurnäkki et al., 2015). PCR 조건 은 초기 변성단계인 94 °C에서 2분간 1회 처리 한 후 DNA 변성단계인 94 °C에서 30초, primer 풀림단계인 55 °C에서 30초, strand 신장 단계인 72 °C에서 5분간 진행하여 총 30 회 반복하였으며, 최종 신장 단계는 72 °C에서 5분간 처리 하였다.
증폭된 PCR 산물은 Qiaquick PCR purification kit (Qiagen, Germany)를 이용하여 정제하였으며, 염기서열 결정을 위해 서 Macrogen (Seoul, Korea)에 분석을 의뢰하였다.
2.3 geoA의 염기서열 분석 및 계통수 작성
계통학적 분석을 위하여 forward와 reverse 방향의 각 염기 서열들은 Vector NTI Advance 11 (Invitrogen Corp., USA)로 조합하였다. 분류학적 위치를 확인하기 위하여, 유전자 은 행 NCBI (National Center for Biotechnology Information, USA)의 BLAST (Basic Local Alignment Search Tool)를 이용하여 염기서열이 등록된 분류군을 선별하였다. 정렬된 염기서열은 MEGA 5.2 (Tamura et al., 2011)을 이용하여 Maximum likelihood (ML)와 Maximum parsimony (MP), Neighbor-joining (NJ) 방법으로 계통수를 작성하였고, 염기 치환 모델은 Tamura-Nei와 Subtree-prunning-regrafting (SPR) algorithm, Maximum composite Likelihood가 각각 사용되 었다. 각 분계도의 지지정도를 알아보기 위해 1,000회 반복 하여 bootstrap을 산출하였다.
본 연구에 사용된 primer가 사상형 남조류에 대하여 종특이 적임을 검토하기 위해, 본 연구에 사용된 primer를 바탕으로 NCBI 데이터베이스에서 이용가능한 남조류(Cyanophyceae), 고세균(Proteobacteria), 방선균(Actinobacteria) 생산자에 대 한 Primer-Blast 분석을 실시하였다.
2.4 이취미 물질(geosmin) 분석
Geosmin 생성여부를 결정하기 위한 시료는 각 균주별로 28일간 회분식 배양이 끝난 조체와 배지가 포함된 배양액 을 대상으로 실시하였으며, 각 성장단계별 geosmin 생산량 분석은 4일 간격으로 조체와 배지가 포함된 배양액을 대상 으로 수행하였다.
Geosmin 분석은 먹는물 수질감시항목지침(ME, 2011)에 따라 GC-MS (7890A, Agilent, USA)를 이용하여 HS-SPME (Head Space–Solid Phase MicroExtraction)법으로 분석하 였다. 본 추출법은 fiber를 이용하여 분석 대상물질을 선택 적으로 흡착시킨 후 분석하는 방법으로써 휘발성 유기화합 물질의 미량 분석에 주로 이용되는 방법이다(Chae et al., 2017). 본 연구에서 지오스민의 분석을 위해 사용한 실험조 건은 아래와 같다; Column (30 m length × 0.25 mm inside diameter × 0.25 μm film thickness), retention time (7.58 ± 0.01 min), Full scan electron impact mass spectra (50 ~ 200 m/z). geosmin의 정량 분석은 크로마토그램에서 retention time에 해당하는 위치의 peak의 면적을 구한 후, 절대 검정 곡선법을 적용하였다. 절대검정곡선은 정제수 10 mL에 표 준혼합용액(SUPELCO, German)을 0.005 ~ 0.2 μg L-1까지 단 계적으로 첨가하여 각 분석화합물의 농도(μg L-1)와 각 분 석화합물에 해당하는 peak 면적을 통해 작성하였다.
3. Results and Discussion
3.1 유전학적 분석법을 이용한 geosmin 생성능 분석 낙동강에서 분리된 균주들의 이취미(geosmin)의 잠재적 생성능을 확인하기 위하여 사용된 geosmin synthase 유전자 인 geoA는 geosmin 생성여부를 결정하는 molecular marker 로서 이취미를 생성하지 않는 균주에서는 발견되지 않는다 (Suurnäkki et al., 2015; Wang et al., 2015). geoA 유전자 가 포함된 geo gene cluster는 총 2,256 bp의 크기이며, 두 개의 cyclic nucleotid-binding (cnb) 유전자와 인접한 전사 단위에 위치하고 있다(Fig. 2).
낙동강 현장시료에서 분리된 8개 균주 중 목표 유전자인 geoA 유전자가 DGUC006, DGUC012에서 각각 826 bp와 766 bp의 길이로 증폭되었으며, 766 bp로 정렬되었다. 사 용된 primer는 두 개 균주에서 모두 반응하였으나, geo78F/
geo982R primer 조합의 서열화 산물이 크로마토그램 분석에 서 보다 명확하였다. target gene의 염기서열을 NCBI 유전자 은행에서 BLAST 한 결과, Anabaena ucrainicum CHAB1432 (Accession no.: HQ404996)와 100 %, Dolichospermum planctonicum
CHAB3501 (Accession no.: KM013400)와 99.7%, Dolichose- permum ucrainicum UOM59 (Accession no.: MF996872)와 99.5 %의 상동성을 보였다(Table 3). 이를 통하여 낙동강에 서 분리된 7개 속의 균주들 중 Dolcihspermum planctonicum 만이 geosmin의 생합성 여부를 결정하는 목표 유전자(target gene)를 가지고 있는 것으로 분석되었다(Table 4). 두 개 균 주의 유전자 정보는 유전자은행 NCBI (National Center for Biotechnology Information, USA)에 등록되었으며, MF807215, MF807216의 Accession no.을 각각 부여받았다. 낙동강 수 계에서 출현하는 남조류를 대상으로 geosmin 생성 유전자
검출에 대한 연구는 최초로 수행되었다.
고세균(proteobacteria), 방선균(Actinobacteria), 남조류(Cya- nophyceae)의 geoA 유전자를 바탕으로 계통분석을 실시한 결과, 남조류의 geo synthase gene가 하나의 cluster로 그룹 화되는 반면, 방선균 및 고세균의 cluster와는 뚜렷하게 분 리되는 형태를 보였다. 특히 고세균으로부터 추정된 geoA 의 염기서열이 방선균으로부터 분리된 것보다 계통학적으 로 남세균에 더 가까운 것으로 확인되었으며(Fig. 3), 이러 한 특징은 선행연구에서도 유사하게 확인되었다(Suurnäkki et al., 2015). 일반적으로 고세균은 geosmin과 2-MIB와 같 은 이취미 물질을 생산하는 것으로 알려져 있지만, 이에 대 한 연구는 매우 제한적이다(Dickschat et al., 2005; Dickschat et al., 2007).
한편 Primer-BLAST 분석을 통해, 본 연구에 사용된 primer 가 오직 geosmin 생성자인 남조류 유전자 서열만 증폭하는 것을 확인하였으며, 계통분석에 사용된 고세균과 방선균 등 의 geosmin synthase 유전자 서열은 인식하지 못하였다.
본 연구에 사용된 2개 균주(DGUC006, DGUC012)와 NCBI 에 등록된 Dolichospermum 속들은 단일 cluster로 다른 남 조류와 99 ~ 100 %의 bootstrap value로 분지가 지지되었다.
반면, 이형세포를 가지는 사상형 남조류와 이형세포를 가지 지 않는 사상형 남조류는 계통학적으로 뚜렷하게 분리되지 않았는데, 이러한 특징은 16s rRNA 유전자 기반의 계통수 에 의해 밝혀진 내용과는 차이를 보였다(Wang et al., 2015).
Fig. 2. Gene cluster responsible for the synthesis of geosmin in two strains of D. ucrainicum. Upper: strain CHAB 1432; Lower: strain CHAB 2155 (after Wang et al., 2015).
Strain no. Species name BlastN
Species name Accession number Query cover Identity
DGUC006
Dolichospermum plactonicum
Anabaena ucrainica HQ404996 100 % 100.0 %
Anabaena ucrainica HQ404997 100 % 99.9 %
Dolichospermum ucrainica MF996872 100 % 99.5 %
DGUC012
Dolichospermum ucrainica MF996871 100 % 99.2 %
Dolichospermum planctonicum KM134000 47 % 99.7 %
Dolichospermum circinale KM134001 47 % 99.4 %
Table 3. Blast analysis using the geoA gene. The library with the highest similarity was presented by the GenBank (National Center for Biotechnology Information, USA).
Strain no. Species name GC-MS PCR Fragment length (bp) Accession no.
DGUC001 Aphanizomenon flos-aquae - -
DGUC002 Panktothrix agardhii - -
DGUC004 Geitlerinema amphibium - -
DGUC005 Pseudanabaena mucicola - -
DGUC006 Dolichoseprmum planctonicum + + 826 MF807215
DGUC011 Dolichoseprmum crassum - -
DGUC012 Dolichoseprmum planctonicum + + 766 MF807216
DGUC013 Pseudanabaena westiana - -
Only the production confirmed in isolated strains is included.
'+' = detected in GC-MS or PCR, '-' = not detected in GC-MS or PCR, 'NA' = not analyzed.
Table 4. Strains used in this study for PCR and sequencing geoA, detecting geosmin. PCR was performed with primer pair geo78F/971R and geo78F/982R.
3.2 화학적 분석법을 이용한 geosmin 생성능 분석 낙동강에서 분리된 8개 중 2개 균주(strain no.: DGUC002, DGUC006)에서만 geosmin이 최고 농도 17,535 ng L-1로 검 출되었으며, 이들 균주는 모두 Dolichospermum plantonicum 으로 확인되었다. 2개 균주의 배양액에서 geosmin의 검출 농 도는 최초접종 4일 이후에 평균 11 ng L-1로 확인되었으며, 이 후 배양시작 24일차까지 빠르게 증가하는 양상을 보였으나, 28일에 다소 감소하였다(Fig. 4). 그 밖에 Aphanizomenon속 및 Planktothrix속, Pseudanabaena속은 이취미를 생성하는 분류군으로 보고되고 있으나(Acinas et al., 2009; Izaguirre and Taylor, 2004; Suurnäkki et al., 2015; Zhang et al., 2009), 낙동강에서 분리된 분류군에서는 geosmin이 생성되지 않았다. 특히 Microcystis 속의 군체에서 분리한 Pseudanabaena
westiana (strain no.: DGUC013)에서도 배양기간 동안 geosmin 이 생성되지 않았다. Microcystis에 의한 녹조 현상에서 발 생하는 이취미의 기원은 Microcystis 군체 내에 공존하는 Pseudanabaena일 것으로 예상하였으나, Pseudanabaena 단 일 세포 배양을 통한 본 실험의 결과는 이와 상이하였다.
Suurnäkki et al. (2015)는 다른 유기체와의 상호 작용에 의 한 2차 대사산물의 생성 가능성을 제시하였으며, 이러한 가능성에 대한 이해는 공존 배양 실험이 필수적이다. 향후 Microcystis속과 Pseudanabaena속의 추가적인 배양 실험이 필요할 것으로 판단되었다.
한편, 동일 Dolichospermum속의 D. planctonicum은 geosmin을 생성하였으나, D. crassum은 geosmin을 생성하 지 않았다(Table 3). 선행 연구를 통해, geosmin 생성종으 Fig. 3. Maximum likelihood tree based on the sequences of putative geosmin synthase from cyanobacteria,
proteobacteria and actinobacteria. The strains of study are marked by shading. Numbers at the nodes are levels of bootstrap support. Scale bar indicates 5% sequence divergence. Cluster I and Cluster II denote Order Oscillatoriales and Order Nostocales, respectively.
로 확인된 분류군은 국내 수계에서 Anabaena circinalis가, 국외 수계에서 D. flos-aquae, D. laxum, D. lemmermannii, D. ucrainicum이 각각 조사되었다(Giglio et al., 2008;
Kutovaya and Watson, 2014; Park et al., 2017). 이러한 결 과는 2차 대사산물이 종특이적임(species specificity)을 확인 한 선행연구와 일치하였다(Kakimoto et al., 2014).
국내 먹는물감시기준인 20 ng L-1에 기초하여, 낙동강에서 Dolichospermum planctonicum의 geosmin 최대 생산량은 평 균 2.8 × 10-5ng cell-1로, 세포수가 7.1 × 102cells mL-1 이상 일 때 이취미 문제가 발생할 우려가 있는 것으로 확인되었 다. 중국 Dianchi와 Erhai호에서 분리된 Anabaena ucrainica 균주들의 geosmin 최대 생산량은 평균 2.4 × 10-5ng cell-1로 8.3 × 102cells mL-1 이상일 때, 이취미 문제를 유발할 수 있 는 것으로 조사되어 본 연구와 유사한 경향을 보였다(Wang et al., 2015). 반면, 국내 팔당호에서 분리된 Anabaena circinalis의 geosmin 최대 생산량은 약 18.8 × 10-5ng cell-1 로 6배 높게 나타났다(Park et al., 2017). 이취미의 발생량 은 세포 농도뿐만 아니라, 효소활성 혹은 유전자 발현 수 준 등의 요인에 의해서 변화될 수 있으며(Kakimoto et al., 2014), 특히 다양한 생육환경 및 성장단계에 따라 변화한다 (Kim et al., 2015; Park et al., 2017).
결과적으로 geosmin 발생 예측에 대한 연구는 종 수준의 분리된 균주를 이용하여 다양한 환경조건에서의 연구결과 가 축적될 때, 보다 정밀한 정량적 예측이 가능할 것으로 판단되었다.
4. Conclusion
낙동강에서 빈번하게 출현하는 사상형 남조류(Oscillatoriales, Nostocales)의 7개 종을 대상으로 잠재적 geosmin 생성능력 을 유전학적 및 생리생태학적으로 검토하여 다음과 같은 결론을 도출하였다.
(1) Dolichospermum planctonicum(strain no.: DGUC006, DGUC012)에서만 geoA 유전자가 증폭되었으며, GC-MS 분
석을 통해 geosmin이 생성됨을 확인하였다.
(2) Microcystis 속의 군체에 공존하는 Pseudanabaena westiana(strain no.: DGUC012)는 유전학적 및 화학적 분석 에서 geosmin을 생성하지 못 하는 것으로 확인되었다.
(3) 연구에 사용된 2개의 primer pair는 고세균과 방선균 및 geosmin 비생성 균주의 geosmin synthase 유전자에 대 해서는 인식하지 못하였으나, geosmin을 생성하는 균주에 서는 목표 유전자를 증폭하였다. 이를 통해 본 연구에 사 용된 primer가 국내 출현하는 geosmin 생성 남조류를 검출 하기 위한 유용한 도구임을 확인하였다.
Acknowledgement
본 논문은 환경부의 재원으로 국립환경과학원의 지원을 받아 수행하였습니다(NIER-2018-03-03-002).
References
Acinas, S. G., Haverkamp, T. H., Huisman, J., and Stal, L. J.
(2009). Phenotypic and genetic diversification of Pseudanabaena spp. (cyanobacteria), The ISME Journal, 3, 31-46.
Byun J. H., Hwang, S. J., Kim, B. H., Park, J. R., Lee, J. K., and Lim, B. J. (2015). Relationship between a dense population of cyanobacteria and odorous compounds in the Han river system in 2014 and 2015, Journal of Korean Society on Water Environment, 48, 263-271. [Korean Literature]
Chae, A. N., Shin, J. W., Jo, K. W., Lee B. C., and Song, K.
G. (2017). Removal of geosmin and 2-methylisoborneol in dringking water by powdered activated carbon, Journal of the Korean Society of Civil Engineers, 37, 475-483. [Korean Literature]
Dickschat, J. S., Bode, H. B., Mahmud, T., Müller R., and Schulz, S. (2005) A novel type of geosmin biosynthesis in myxobacteria, The Journal of Organic Chemistry, 70, 5174- 5182.
Dickschat, J. S., Thorben, N., Thiel, V., Kunze, B., Müller, R., and Schulz, S. (2007). Biosynthesis of the off-flavor 2- methylisoborneol by the myxobacterium Nannocystis exedens, Angewandte Chemie International Edition, 46, 8287-8290.
Giglio, S., Jiang, J., Saint, C. P., Cane D. E., and Monis, P. T.
(2008). Isolation and characterization of the gene associated with geosmin production in cyanobacteria, Environmental Science and Technology, 42, 8027-8032.
Izaguirre, G. and Taylor, W. D. (2004). A guide to geosmin- and MIB-producing cyanobacteria in the United States, Water Science and Technology, 49, 19-24.
Jüttner, F. and Watson, S. B. (2007). Biochemical and ecological control of geosmin and 2-methylisoborneol in source waters, Applied and Environmental Microbiology, 73, 4395-4406.
Kakimoto, M., Ishikawa, T., Miyagi, A., Saito, K., Miyazaki, M., Asaeda, T., Tamaguchi, M., Uchimiya, H., and Kawai- Yamada, M. (2014). Culture temperature affects gene expression and metabolic pathways in the 2-methylisoborneol-producing Fig. 4. Changes of cell growth and geosmin production in
Dolichospermum plactonicum (strain no.: DGUC006) strain culture. The curve graph represents a mean value of cell densities and vertical bars represent standard deviation. The bar graphs represent a mean value of geosmin concentraion.
Literature]
Kim, Y. J., Youn, S. J., Kim, H. N., Hwang, M. Y., Park, J. R., Lee, B. C., and Lee, J. K. (2015). Formation of phytoplankton community and occurences of odorous compounds for sediment incubation by water temperature, Journal of Korean Society on Water Environment, 31, 460-467. [Korean Literature]
Komárek, J. (2013). Cyanoprokaryota 3. Teil / 3rd part:
Heterocytous Genera, In: B. Bübel, G. Gärtner, L. Krienitz and M. Schager l (eds.), SüBwasser flora von Mutteleuropa, 19/3, Springer Spektrum, 1131.
Komárek, J. and Anagnostidis, K. (2005). Cyanoprokaryota 2.
Teil/2nd Part: Oscillatoriales, In: Büdel, B., Krienitz, L., Gärtner, G. and M. Schagerl, (eds.) Süßwasserflora von Mutteleuropa, 19/2, Elsevier/Spektrum, Heidelberg, 759.
Kutovaya, O. A. and Watson, S. B. (2014). Development and application of a molecular assay to detect and monitor geosmin-producing cyanobacteria and actinomycetes in the great lakes, Journal of Great Lakes Research, 40, 404-414.
Ministry of Environment (ME). (2011). Standard method for water pollutants, Ministry of Environment. [Korean Literature]
Shirai, M., Matumaru, K., Ohotake, A., Takamura, Y., Aida, T., and Nakano, M. (1989). Development of a solid medium for growth and isolation of axenic Microcystis strains (Cyano- bacteria), Applied and Environmental Microbiology, 55, 2569-2571.
Li, X., Dreher, T. W., and Li, R. (2016). An overview of diversity, occurence, genetics and toxin production of bloom-forming Dolichospermum(Anabaena) species, Harmful algae, 54, 54-68.
Park, H. J., Park, M. H., Shim, Y. B., Im, J. K., and Hwang, S.
J. (2017). Geosmin production potential of cyanobacterium, Anabaena circinalis isolated from lake Paldang, Korea, Korean Journal of Ecology and Environment 50, 363-373.
[Korean Literature]
Ryu, H. S. (2017). Taxonomy and toxigenecity of bloom-forming
s41610-016-0021-0
Ryu, H. S., Shin, R. Y., Seo, K. A., Lee, J. H., and Kim, K. H.
(2018). Succession of cyanobacterial species and taxonmical characteristics of Dolichospermum spp. (Nostocales, Cyano- phyceae) in weir region of the Nakdong river, Journal of Korean Society on Water Environment, 34, 503-513. [Korean Literature]
Su, M., Gaget, V., Giglio, S., Burch, M., An, W., and Yang, M.
(2013). Establishment of quantitative PCR methods for the quantification of geosmin producing potential and Anabaena sp.
in freshwater systems, Water Research, 47, 3444-3454.
Suurnäkki S., Gomez-Saez, G. V., Rantala-Ylinen, A., Jokela, J., Fewer, D. P., and Sivonen, K. (2015). Identification of geosmin and 2-methylidoborneol in cyanobacteria and molecular detection methods for the producers of these compounds, Water Research, 68, 56-66.
Tamura, K. Peterson, D., Peterson, N., Stecher, G., Nei, M., and Kumar, S. (2011). MEGA 5: Meolecular Evolutionary Genetics Analysis, Arizona: Center for Evolutionary Functional Genomics The Biodesign Institute.
Wang Z., Shao, J., Xu, Y., Yan, B., and Li, R. (2015). Genetic basis for geosmin production by the water bloom-forming cyanobacterium, Anabaena ucrainica, Water, 7, 175-187.
Watson, S. B., Ridal, J., and Boyer, G. L. (2008). Taste and odour and cyanobacterial toxins: impairment, prediction, and management in the great lakes, Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 65, 1779-1796.
You, K. A., Byeon, M. S., Youn, S. J., Hwang, S. J., and Rhew, D. H. (2013). Growth characteristics of blue-green algae (Anabaena spiroides) causing tastes and odors in the North-Han river, Korea, Korean Journal of Ecology and Environment 46, 135-144. [Korean Literature]
Zhang T, Li, L., Song, L., and Chen, W. (2009) Effects of temperature and light on the growth and geosmin production of Lyngbya kuetzingii (Cyanophyta), Journal of Applied Phycology, 21, 279-85.