발효유의 급여가 포유자돈의 성장, 장내 미생물총, 분변내 유해가스배출에 미치는 영향

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발효유의 급여가 포유자돈의 성장, 장내 미생물총, 분변내 유해가스배출에 미치는 영향

정용대¹ · 김두완¹ · 민예진¹ · 유동조¹ · 이수협^1,2 · 남기택³ · 김기현¹ · 김영화^1*

국립축산과학원 양돈과¹, 국립한국농수산대학 중소가축학과², 한경대학교 동물생명환경과학과³

Effects of Dietary Supplementation of Fermented Milk on Growth, Intestinal Microorganisms and Fecal Noxious Gas Emission in Suckling Pigs

Yong Dae Jeong¹, Doo Wan Kim¹, Ye Jin Min¹, Dong Jo Yu, SuHyup Lee^1,2, Ki Taeg Nam³, Ki Hyun Kim¹ and Young Hwa Kim^1*

1Swine Division, National Institute of Animal Science, Rural Development Administration, Cheonan 31000, Korea

2Department of Swine and Poultry Science, Natioinal College of Agriculture and Fisheries, Jeonju 54874, Korea

3Department of Animal Life and Environment Science, Hahkyong National University, Anseong 17579, Korea

ABSTRACT¹⁾

This study was conducted to investigate effects of feeding fermented milk on growth, intestinal microorganisms and fecal noxious gas emission in suckling pigs. A total of a hundred birth piglets (Landrace×Yorkshire×Duroc) were randomly assigned into feeding group and control group during suckling period that ten pigs per sow. Fermented milk contained 3.0×10⁸/g of Bacillus and 3.5×10⁸/g of Lactobacillus, and was supplied by top dressing method. Fermented milk fed to the sulking pigs indicated tendency to increase weaning body weight (p=0.052) and average daily gain (p=0.094). Total microbial flora and Escherichia coli in the feces were lower (p<0.05) in the feeding group than the non-feeding group. Reversely, Lactobacillus was higher (p<0.01) in feces of the pigs fed fermented milk than the pigs of the control group. Hydrogen sulfide emitted in feces was decreased in feeding group compared with control group (p<0.05). Similarly, fecal total mercaptans was diminished in the feeding group than the control group (p<0.01). Therefore, the fermented milk fed to the sulking pigs may improved growth and can influence positively intestinal microorganisms and fecal noxious gas emission.

(Key words: Fermented milk, Growth, Microorganisms, Noxious gas, Suckling pigs)

Ⅰ. 서론

1950년대 초부터 항생제는 질병예방의 차원으로 널리 사 용되어 왔으며 양돈산업에서도 돼지의 폐사율 및 질병발생 감소의 목적 등으로 활용되었다(Cromwell, 2002). 이외, 사

료내 항생제의 첨가급여는 돼지의 증체량 및 사료효율에 긍정적인 영향을 미친다고 보고되고 있다(Yokoyama et al., 1982; Zimmerman, 1986). 그러나, 항생제의 과다사용 에 의한 내성문제로 최근 많은 국가들은 항생제 사용을 전면 금지하고 있는 실정이다. 따라서, 항생제 미사용으

* Corresponding author: Young Hwa Kim, Swine Division, National Institute of Animal Science, RDA, Cheonan 31000, Korea. Tel:

+82-41-580-3446, E-mail: [email protected]

This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/deed.ko), which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited. The moral rights of the named author(s) have been asserted.

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로 인한 질병발생 증가 및 생산성저하가 우려되고 있다. 이에 따라, 항생제를 대체할 수 있는 후보물질에 대한 연 구가 활발히 이루어져 왔다(Choi et al., 2011; Yan et al., 2012; Lee et al., 2014).

항생제 대체제 중 생균제 및 생균제 발효산물은 분변내 유해미생물 성장 저해와 유해가스 저감 그리고 영양소소 화율 개선에 따른 생산성증가에 효과적인 것으로 알려져 있다(Pluske et al., 1996; Lessard et al., 2009; Missotten et al., 2010; Canibe and Jensen, 2012; Choi et al., 2016;

Mishra et al., 2016). 그러나, 일부 선행연구들은 생균제 및 발효산물 급여는 가축의 성장에 직접적인 효능이 없다고 보고하고 있다(Geary et al., 1999; Amezcua et al., 2007;

Wang et al., 2012). 이는 동물의 성장단계, 사양환경, 생균제 균주 종류 등 다양한 요인들에 의한 영향을 받기 때문이다. 우유는 다양한 영양소를 포함하고 있는 식품으로 섭취 시 뼈를 강건하게 하고, 소화계 및 면역계에 좋은 영향을 주며 이러한 효능은 우유내 단백질, 비타민 등에 의해 나 타난다(Hess et al., 2015; Tunick and Van Hekken, 2015).

특히, 우유 내 유당은 효소작용에 의해 올리고당으로 전환 되어 장내 미생물 성장에 긍정적인 영향을 미친다(Kwak et al., 2012). 그러나, 유당은 일부에서 소화장애를 유발하 므로 우유를 기질로 한 발효유의 섭취는 우유의 영양소 소 화 및 흡수에 유리하다. 반면에, 우유 내 풍부한 영양소함 량은 미생물 생육에 적합한 환경을 제공할 수 있고 온도에 민감하여 변질의 우려가 높다(Kim et al., 2014a). 또한, 최 근에 원유의 과잉공급으로 인해 원유가격 하락 및 잉여 원 유의 처리비용 등 낙농농가에 경제적 악영향을 미치므로 폐기되는 원유의 새로운 활용방안이 필요하다.

따라서, 유통기한이 경과되었으나 변질되지 않은 우유에 부존자원으로서의 사용가능성을 평가하기 위해 유산균을 사용해 발효한 우유의 급여가 포유자돈의 성장, 장내 미생 물총 및 분변내 유해가스 발생에 미치는 영향을 구명하고 자 실시하였다.

Ⅱ. 재료 및 방법

1. 공시동물 및 실험설계

(1) 공시동물

두록수퇘지 정액을 사용해 인공수정 시킨 모돈들 중에서 초음파검사를 통해 임신한 총 10두의 모돈(Landrace×

Yorkshire)을 공시하여, 대조구와 처리구로 각각 5두씩 나 누어 임신사에 임의로 배치하였다. 분만 후 포유개시 시점 에서 양자를 통해 모돈 당 10두의 자돈(Landrace×

Yorkshire×Duroc)을 동일하게 배치하고 총 100두의 포유 자돈을 공시동물로 사용하였다.

(2) 시험설계

처리구는 발효유 급여구(feeding group)와 비급여구 (control group)로 구성하였고 처리구당 모돈 5두(10 piglets per sow)를 배치하였다. 발효유는 Lactobacillus 및 Bacillus 를 기반으로 하는 시판 요쿠르트와 우유를 혼합하고 상온 에서 3일간 배양하여 제조하였다. 발효유에 포함된 미생물 조성은 3.0×10⁸/g Bacillus 와 3.5×10⁸/g Lactobacillus를 함 유하고 있는 것으로 분석되었다. 발효유의 급여는 분만 후 10일부터 이유 시까지 실시하였고 top dressing 방법을 통 해 1L의 발효유를 2회/일 나누어 포유자돈에게 제공하였 다. 사용된 creep feed는 시판사료를 사용하였으며 영양소 함량은 Table 1과 같다. 사양시험기간동안 모돈 및 포유자 돈은 국립축산과학원 animal guildline에 준하여 관리하였 고 사료와 음수는 자유채식하였다.

Table 1. Chemical compositions of experimental diet (as-fed basis)

Chemical composition g/kg

Metabolizable energy, MJ/kg 14.07

Crude protein 180

Lysine 15.6

Methionine 4.7

Calcium 7.8

Total Phosphorus 6.4

2. 조사항목 및 분석방법

(1) 증체량

분만 후 급여구 및 비급여구의 자돈의 체중을 개시체중으 로 하고 이유 시 체중을 종료체중으로 하여 실험동물의 체 중을 측정하였다. 포유기간동안 creep feed를 급여하였으 나 사료허실량이 많아 사료섭취량은 계산하지 않았다. 일 당증체량은 종료체중에서 개시체중을 차감한 후 포유기간 으로 나누어 산출하였다.

(2) 미생물균총 분석

포유기간 종료일에 신선한 분을 채취하기 위해 포유자돈

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이 배설한 직후에 분을 수집하였고 분내 일반세균, 대장균 및 유산균수를 분석하였다. 미생물수 측정을 위해 분시료 1g을 9ml의 생리식염수에 균질화하고 serial dilution을 통 해 10⁹까지 희석한 후 미생물균총분석에 사용하였다. 일반 세균측정은 Petri film(3M, Aerobic Count Plate, USA)을 이용하였고 대장균 및 유산균수는 각각 MacConkey agar (Becton Dickinson, USA) 및 Lactobacilli MRS agar(Becton Dickinson, USA)를 활용하였다. 대장균과 유산균측정을 위한 agar plates는 제조사에서 제공하는 방법에 의거하여 준비하였다. 일반세균수 측정을 위해 희석배수를 다른 희 석액을 1ml씩 film에 접종하고 37℃ 배양기에서 24시간 배 양한 후 형성된 colony를 counting하였다. 대장균 및 유산 균은 agar plate에 100ul의 희석액을 spreader를 사용해 접 종하고 37℃ 배양기에서 24시간 배양한 후 형성된 colony 를 계수하였다.

(3) 분변내 유해가스 측정

분변내 유해가스 농도측정은 Cho 등(2013)의 방법에 의 거하여 측정하였다. 채취한 분변은 200g 계량 후 2L 밀폐 형 용기에 넣고 32℃ incubator에서 30시간 배양하였다.

Gas sampling pump(Gas Tec, GV-110S, UK)에 부착된 detector tube를 분변 위 약 2cm에 위치한 후 100ml/min 로 가스를 흡입하여 가스농도를 측정하였다. 측정한 가스 는 황화수소(Gastec No. 4LK, hydrogen sulfide; H2S)와 total mercaptans(Gastec No. 70, mercaptans; CH3SH)를 측정하였다.

3. 통계분석

수집된 모든 결과는 통계프로그램 version 17.0 SPSS를 이용해 Student’t-test로 처리구간 유의성을 검증하였고 유 의성은 유의수준 0.05이하에서 인정하였다.

Ⅲ. 결과 및 고찰

Table 2는 발효유급여가 포유자돈의 성장에 미치는 영향 을 나타냈다. 급여구와 비급여구 포유자돈의 개시체중은 각각 1.42 및 1.43kg으로 처리구간 차이가 없다. 28일간 포유 후 종료체중은 급여구에서 비급여구에 비해 증가하 는 경향을 나타내었다(8.19 vs 7.68kg; p=0.052). 일당증체 량은 처리구간 유의적 차이는 없으나 급여구는 250g으로 비급여구의 232g보다 증가하는 경향을 보였다(p=0.094).

생균제와 같은 미생물제제, 생균제 발효산물의 사료내 첨 가급여는 돼지의 증체량 증가에 효과적이다(Canibe et al., 2008; Missotten et al., 2010). 또한, 포유자돈에 생균제의 직접적인 급여가 아닌 간접적인 급여도 증체량에 영향을 미친다. 분만 2주전부터 이유시까지 임신돈에 생균제 급여 는 포유자돈의 증체량개선에 긍정적인 영향을 미친다고 보고되었다(Link et al., 2016). 그 원인은 모돈의 분변과 사 육환경에 의해 포유자돈의 장내 미생물균총의 변화가 야 기되는데 생균제를 급여한 모돈의 분변을 통해 포유자돈 의 장내 유익균이 우점하게 되어 포유자돈의 설사지수를 감소시켜 증체량이 증가한 것으로 보인다(Link et al., 2016). 따라서, 발효유에 의한 직접적인 유용미생물의 급여 는 포유자돈의 성장을 촉진하여 생산성향상에 도움을 줄 것으로 사료된다.

발효유 급여에 의한 포유자돈 장내 미생물균총 변화는 Table 3과 같다. 총 일반세균은 급여구 및 비급여구에서 각 각 5.81 과 6.17log10 cfu/g로 계산되었다. 대장균은 급여구 에서 6.26log10cfu/g, 비급여구에서 6.84log10cfu/g로 측정 되었다. 그러나, 총일반세균수 및 대장균은 처리구간 유의 한 차이를 나타내지 않았다. 반면에, 급여구 자돈의 분변내 유산균수는 8.40log10 cfu/g으로 비급여구의 6.85log10

cfu/g보다 증가했다(p<0.01). 일반적으로, 총 일반세균수는 대장균과 유산균에 비해 높다. 하지만 본 연구에서는 반대 의 결과가 확인되었다. Nero 등(2008)의 연구에 의하면, 일 부 미생물 계통들은 colony forming unit의 확인을 위한 발색제중 하나인 2,3,5- trypheniltetrazolium chloride의 작

Table 2. Effects of feeding fermented milk on growth performance in suckling piglets

Control (n=50) Treatment (n=50)

Born live body weight, kg 1.42±0.03 1.43±0.09

Weaning body weight, kg 7.69±0.24 8.19±0.12

Average daily gain, g 232±7.95 250±1.41

Values are mean±standard error.

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Table 3. Effects of feeding fermented milk on fecal microbial flora in suckling piglets

Total microbial flora, log10 cfu/g 6.17±0.01 5.81±0.10

Escherichia coli, log10 cfu/g 6.84±0.13 6.26±0.50

Lactobacillus, log10 cfu/g 6.85±0.09 8.40±0.70^**

Values are presented as means of two-replicated analysis.

**p<0.01.

Table 4. Effects of feeding fermented milk on fecal noxious gas emission in suckling piglets

Hydrogen sulfide (H2S), ppm 4.13±0.41 3.02±0.57^*

Mercaptan (R-SH), ppm 3.07±0.11 0.98±0.13^**

*p<0.05; ^**p<0.01.

용을 간섭하거나 발색제에 의해 미생물의 성장이 저해된 다고 하였다. 다른 연구(Dawkins et al., 2005)에 따르면, 선 택배지에 비해 petrifilm aerobic count plates는 B. subtilis, B. licheniformis, Streptococcus group D 등과 같은 미생물들 의 liquefaction으로 인해 colony forming unit을 확인하기 어려워 일부 미생물실험에 부적합하다고 보고하였다. 또 한, petrifilm을 이용한 미생물시험은 전통적인 시험방법보 다 투입 시간 및 인력을 저감시키는 장점이 있으나 일부 미생물 실험에서 지양을 고려해야 한다(Dawkins et al., 2005; Nero et al., 2008). 본 연구는 선행연구들에서 언급한 미생물계통에 대해 분석하지 않았지만, petrifilm에 부적합 한 미생물이 분변에 포함되어 총 일반세균수가 E. coli와 Lactobacillus에 비해 감소된 것으로 생각된다.

본 연구의 장내 미생물 균총의 변화는 이전 연구결과와 유사하다. 유산균을 비롯한 생균제는 장내 유해미생물의 생육을 억제시키고 유용미생물의 장내 우점을 유도하는 것으로 알려져 있다(Canibe and Jensen, 2003; Moran et al., 2006). 젖산균 계통의 미생물을 이용한 발효유의 급여 는 장내 유기산 발생을 증가시켜 장내 pH을 감소시키고 그 결과 내재 유산균의 성장을 촉진시킨다(Kim et al., 2014b). 따라서, 발효유급여는 포유자돈의 장내 유산균의 성장을 유도하여 미생물균총을 긍정적으로 변화시키는 것 으로 판단된다.

포유자돈에 발효유의 급여가 분변내 유해가스발생에 미 치는 영향은 Table 4에 나타냈다. 황화수소는 급여구에서 비급여구보다 감소하였다(p<0.05). 또한, total mercaptans

의 농도는 비급여구에 비해 급여구에서 통계적으로 감소 하였다(p<0.01). 돼지의 분변으로부터 발생되는 유해가스 는 영양소소화율 및 장내 미생물균총과 직접적인 관계가 있다. 생균제의 급여에 따른 장내 유기산함량의 증가는 단 백질의 소화율을 향상시킬 수 있고 소화효소의 활성을 증 가시켜 영양소소화율을 개선시키는 효과를 가진다(Giang et al., 2011). 장내 유해가스는 대장에서 발효과정을 통해 생성되는데 섭취한 영양소의 소화율이 개선되면 발효에 필요한 기질이 감소하여 분변에서 생성되는 유해가스의 발생을 억제할 수 있다(Yan et al., 2012). 그러므로 발효유 의 급여는 양농농가에서 문제가 되고 있는 악취저감에 도 움이 될 것으로 사료된다.

따라서 포유자돈에서 발효유의 급여는 성장을 촉진시키 고, 장내 미생물 조성에 긍정적인 영향을 미치며 분변으로 부터 발생되는 악취발생 감소에 효과적인 것으로 나타났 다. 또한, 본 시험결과는 돼지의 성장단계 중 포유부터 이 유시점까지 수행한 결과로 추후 출하체중까지의 영향을 구명하는 추가 연구가 필요하다.

Ⅳ. 요약

본 연구는 유통기한이 경과되었으나 변질되지 않은 우 유의 활용방안모색 및 사료로서 가치를 구명하고 위해 포 유자돈의 성장, 장내 미생물균총 그리고 분변 내 유해가스 발생량에 미치는 영향을 알아보고자 실시하였다. 발효유

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제조는 시판 요쿠르트와 1L의 우유를 혼합하고 상온에서 배양한 후 사양시험에 사용하였다. 발효유내Bacillus와 Lactobacillus는 각각 3.0×10⁸/g 및 3.5×10⁸/g 함유되어 있는 것으로 분석되었다. 사양시험을 위해 2원교잡종(Landrace×

Yorkshire) 모돈 10두를 수정적기에 두록 수퇘지 정액을 이용해 인공수정시킨 뒤 임신사에 배치하고 임의로 발효 유 급여구(n=5)와 비급여구(n=5)로 나누었다. 분만 후 포유 개시 시점에 양자를 통해 모돈 당 10두씩 포유자돈을 배치 하여 총 100 두의 포유자돈(Landrace×Yorkshire×Duroc)을 공시동물로 사용하였다. 발효유는 top dressing방법을 통 해 포유자돈에게 1L씩 1일 2회로 나누어 분만 후부터 28일 동안 급여하였다. 포유종료 시 자돈의 체중 및 일당증체량 은 처리구간 통계적인 차이는 없지만 발효유 급여구는 비 급여구에 비해 증가하는 경향을 나타냈다. 발효유 급여에 따른 분변내 총일반세균 및 대장균수는 유의한 차이는 나 타내지 않지만 급여구에서 비급여구보다 약간 감소하였다. 유산균수(Lactobacillus)는 비급여구에 비해 급여구에서 유 의하게 높게 측정되었다(p<0.05). 또한, 분변내 황화수소 및 total mercaptans 배출량은 비급여구보다 급여구에서 유의하게 감소하였다(p<0.05). 이와 같이 본 연구의 결과들 을 종합해 보면 발효유의 급여는 포유자돈의 성장을 향상 시키는 것으로 나타났으며 장내 미생물균총의 긍정적인 변화를 유도하였고 분변내 유해가스배출을 저감시켜 발효 유의 사료로서의 사용가능성을 시사하였다. 따라서, 발효 유 급여는 포유자돈의 생산성 개선에 도움이 되는 것으로 사료된다.

사사

본 연구는 농촌진흥청 공동연구사업 (과제번호: PJ01198001) 지원 및 2017년도 농촌진흥청 국립축산과학원 전문연구원 과정 지원사업에 의해 수행되었습니다.

Ⅴ. REFERENCES

1. Amezcua, M. D. R., Friendship, R., Dewey, C., Weese, J. S., de Lange, C. and Reid, G. 2007. Effects on growth performance, feed efficiency, and health of weanling pigs fed fermented liquid whey inoculated with lactic acid bacteria that inhibit Escherichia coli in

vitro. J. Swine Health Prod. 15:320-329.

2. Canibe, N. and Jensen, B. B. 2012. Fermented liquid feed—Microbial and nutritional aspects and impact on enteric diseases in pigs. Anim. Feed Sci. Technol.

173:17-40.

3. Cromwell, G. L. 2002. Why and how antibiotics are used in swine production. Anim. Biotechnol. 13:7-27.

4. Cho, J. H., Zhang, Z. F. and Kim, I. H. 2013. Effects of fermented grains as raw cereal substitutes on growth performance, nutrient digestibility, blood profiles, and fecal noxious gas emission in growing pigs. Livest.

Sci. 154:131-136.

5. Choi, J. Y., Kim, J. S., Ingale, S. L., Kim, K. H., Shinde, P. L., Kwon, I. K. and Chae, B. J. 2011. Effect of potential multimicrobe probiotic product processed by high drying temperature and antibiotic on performance of weanling pigs. J. Anim. Sci. 89:1795- 1804.

6. Choi, Y. H., Hosseindoust, A., Lee, S .H., Kim, M. J., Kim, Y. H. and Chae, B. J. 2016. Effects of dietary supplementation of fermented potato protein on reproductive performance, blood profile and milk composition of lactating sows. Ann. Anim. Resour.

Sci. 27:17-26.

7. Dawkins, G. S., Hollingsworth, J. B. and Hamilton, M.

A. 2005. Incidences of problematic organisms on petrifilm aerobic count plates used to enumerate selected meat and dairy products. J. Food Prot.

68:1506-1511.

8. Geary, T. M., Brooks, P. H., Beal, J. D. and Campbell, A. 1999. Effect on weaner pig performance and diet microbiology of feeding a liquid diet acidified to pH 4 with either lactic acid or through fermentation with Pediococcus acidilactici. J. Sci. Food Agric. 79:633-640.

9. Giang, H. H., Viet, T. Q., Ogle, B. and Lindberg, J. E.

2011. Effects of supplementation of probiotics on the performance, nutrient digestibility and faecal microflora in growing-finishing pigs. Asian-Australas.

J. Anim. Sci. 24:655-661.

10. Hess, J. M., Jonnalagadda, S. S. and Slavin, J. L. 2015.

Dairy foods: current evidence of their effects on bone, cardiometabolic, cognitive, and digestive health. Comp. Rev. Food Sci. Food Safe. 15:251-268.

(6)

www.earticle.net

11. Kim, K. H., Park, B. Y., Oh, M. H. and Kim, H. W.

2014a. Effect of storage temperature on growth and toxin production of Staphylococcus aureus in milk.

Korean J. Dairy Sci. Technol. 32:105-109.

12. Kim, K. H., Ingale, S. L., Kim, J. S., Lee, S. H., Lee, J. H., Kwon, I. K. and Chae, B. J. 2014b.

Bacteriophage and probiotics both enhance the performance of growing pigs but bacteriophage are more effective. Anim. Feed Sci. Technol. 196:88-95.

13. Kwak, H. S., Lee, W. J. and Lee, M. R. 2012.

Revisiting lactose as an enhancer of calcium absorption. Int. Dairy J. 22:147-151.

14. Lee, S. H., Ingale, S. L., Kim, J. S., Kim, K. H., Lokhande, A., Kim, E. K., Kwon, I. K., Kim, Y. H.

and Chae, B. J. 2014. Effects of dietary supplementation with Bacillus subtilis LS 1–2 fermentation biomass on growth performance, nutrient digestibility, cecal microbiota and intestinal morphology of weanling pig. Anim. Feed Sci.

Technol. 188:102-110.

15. Lessard, M., Dupuis, M., Gagnon, N., Nadeau, E., Matte, J. J., Goulet, J. and Fairbrother, J. M. 2009.

Administration of pediococcus acidilactici or Saccharomyces cerevisiae boulardii modulates development of porcine mucosal immunity and reduces intestinal bacterial translocation after Escherichia coli challenge 1, 2. J. Anim. Sci. 87:922.

16. Link, R., Reichel, P. and Kyzeková, P. 2016. The Influence of probiotics on reproductive parameters of sows and health of their sucklings. Folia Veterinaria 60:43-46.

17. Mishra, D. K., Verma, A. K., Agarwal, N. and Singh, P. 2016. Effect of probiotics on blood biochemical profile, immunity and small intestine morphology in growing finishing pigs. Agric. Res. 5:407-412.

18. Missotten, J. A., Michiels, J., Ovyn, A., De Smet, S.

and Dierick, N. A. 2010. Fermented liquid feed for pigs. Arch. Anim. Nutr. 64:437-466.

19. Moran, C. A., Scholten, R. H. J., Tricarico, J. M.,

Brooks, P. H. and Verstegen, M. W. A. 2006.

Fermentation of wheat: Effects of backslopping different proportions of pre-fermented wheat on the microbial and chemical composition. Arch. Anim.

Nutr. 60:158-169.

20. Nero, L. A., Rodrigues, L. A., Vicosa, G. N. and Ortolani, M. B. T. 2008. Performance of petrifilm aerobic count plates on enumeration of lactic acid bacteria in fermented milks. J. Rapid Methods Autom. Microbiol. 16:132-139.

21. Pluske, J. R., Williams, I. H. and Aherne, F. X. 1996.

Maintenance of villous height and crypt depth in piglets by providing continuous nutrition after weaning. Anim. Sci. 62:131-144.

22. Tunick, M. H. and Van Hekken, D. L. 2015. Dairy products and health: recent insights. J. Agric. Food Chem. 63:9381-9388.

23. Wang, J. Q., Yin, F. G., Zhu, C., Yu, H., Niven, S. J., De Lange, C. F. M. and Gong, J. 2012. Evaluation of probiotic bacteria for their effects on the growth performance and intestinal microbiota of newly-weaned pigs fed fermented high-moisture maize. Livest. Sci. 145:79-86.

24. Yan, L., Hong, S. M. and Kim, I. H. 2012. Effect of bacteriophage supplementation on the growth performance, nutrient digestibility, blood characteristics, and fecal microbial shedding in growing pigs.

Asian-Australas. J. Anim. Sci. 25:1451-1456.

25. Yokoyama, M. T., Tabori, C., Miller, E. R. and Hogberg, M. G. 1982. The effects of antibiotics in the weanling pig diet on growth and the excretion of volatile phenolic and aromatic bacterial metabolites.

Am. J. Clin. Nutr. 35:1417-1424.

26. Zimmerman, D. R. 1986. Role of subtherapeutic levels of antimicrobials in pig production. J. Anim.

Sci. 62:6-16.

(Received 05 June 2017, Revised 18 July 2017, Accepted 18 July 2017)